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Artigo de método

Injeções intracerebroventriculares à mão livre em camundongos

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DOI:

10.3791/65324

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12 de janeiro de 2024

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Neste artigo

Resumo

Aqui, uma abordagem simples e rápida para a realização de injeções intracerebroventriculares em camundongos usando uma abordagem à mão livre (ou seja, sem um dispositivo estereotáxico) é descrita.

Resumo

A investigação de sistemas neuroendócrinos muitas vezes requer a entrega de drogas, vírus ou outros agentes experimentais diretamente no cérebro de camundongos. Uma injeção intracerebroventricular (ICV) permite a entrega generalizada do agente experimental em todo o cérebro (particularmente nas estruturas próximas aos ventrículos). Aqui, métodos para fazer injeções de ICV à mão livre em camundongos adultos são descritos. Usando pontos de referência visuais e táteis nas cabeças de camundongos, as injeções nos ventrículos laterais podem ser feitas de forma rápida e confiável. As injeções são feitas com uma seringa de vidro mantida na mão do experimentador e colocada a distâncias aproximadas dos pontos de referência. Assim, esta técnica não requer um quadro estereotáxico. Além disso, essa técnica requer apenas uma breve anestesia com isoflurano, o que permite a avaliação subsequente do comportamento e/ou fisiologia de camundongos em camundongos acordados e com comportamento livre. A injeção de ICV à mão livre é uma ferramenta poderosa para a entrega eficiente de agentes experimentais no cérebro de camundongos vivos e pode ser combinada com outras técnicas, como amostragem frequente de sangue, manipulação de circuitos neurais ou gravação in vivo para investigar processos neuroendócrinos.

Introdução

A entrega de agentes experimentais, como drogas1, vírus2 ou células3, ao cérebro é muitas vezes necessária para a pesquisa neuroendócrina. Se o agente não atravessar prontamente a barreira hematoencefálica ou o objetivo experimental for testar especificamente os efeitos centrais do agente, é importante ter um método confiável para administrar injeções no cérebro. Além disso, a injeção no espaço intracerebroventricular (ICV) oferece a oportunidade de distribuir amplamente o agente no cérebro e fornece uma grande área alvo, aumentando assim a probabilidade de injeção bem-sucedida2<....

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Protocolo

Todos os procedimentos foram aprovados pelos Comitês Institucionais de Cuidados e Uso de Animais da Colorado State University (#3960) e da University of California San Diego, onde os dados representativos foram coletados (S13235, PI Kellie Breen Church). Os dados de cinco camundongos adultos fêmeas e dois machos adultos C57/BL6 (9-16 semanas de idade) são mostrados na seção de dados representativos. Camundongos fêmeas foram ovariectomizados 3-4 semanas antes da injeção de ICV e coleta de sangue, como descrito anteriormente7. Antes da experimentação, esses camundongos foram alojados com um ciclo de luz de 12 h / 12 h de luz escura e tiveram livr....

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Resultados

Quando realizada com sucesso, essa técnica permite a rápida liberação de um agente experimental no sistema ventricular. Um perfil de pulso do hormônio luteinizante (LH) de uma camundongo ovariectomizada que recebeu uma injeção ICV de 3 μL de solução salina isotônica estéril, o veículo para muitos compostos farmacológicos, é mostrado na Figura 2A. Este exemplo demonstra que a breve exposição à anestesia gasosa e a injeção isolada de 3 μL de líquido no sistema ventricular não alteraram a secre.......

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Discussão

Aqui, um meio simples e eficaz para fazer injeções de ICV em camundongos é descrito. Uma vez que esta técnica não requer uma estrutura estereotáxica, esta abordagem para a entrega central de drogas e agentes experimentais é acessível a mais pesquisadores. Além disso, essa abordagem é relativamente alta, uma vez que o procedimento de preparação e injeção pode ser realizado rapidamente.

Como esse procedimento requer a manipulação manual de agulhas e seringas de vidro utilizando distâncias aproxi.......

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Divulgações

Os autores não têm nada a revelar.

Agradecimentos

Gostaríamos de agradecer à Dra. Kellie Breen Church, ao Sr. Michael Kreisman e à Sra. Jessica Jang por suas contribuições para a coleta dos dados mostrados nos resultados representativos. Este trabalho foi apoiado pelo National Institutes of Health (NIH) R00 HD104994 (R.B.M.).

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Agulhas rombas de calibre 18SAI InfusionB18-150
Agulhas de calibre 18Medical305195
Almofadas de álcoolFisher Scientific22-363-750
Almofada de bancadaFisher Scientific14-206-62AC22
Solução de betadineFisher ScientificNC1696484
BuprenorfinaPatterson Vet Supply07-892-5235Substância controlada
EyelubeSeringa de vidro Fisher Scientific50-218-8442
Agulha de injeçãoHamilton7634-01 Hamilton 7803-0127 gauge, agulha RN de cubo pequeno, estilo de ponta: 4, Comprimento da agulha: 10cm, Ângulo: 45
 Patterson Vet Supply07-893-8441
Vaporizador de isofluranoVet EquipV-10
Fita de laboratórioVWR89098-128
Oxigênio de grau médicoAirgasOX USPEA
ParaformaldeídoMillipore-Sigma8.18715.1000
Fosfato Tampolado SalinoFisher ScientificJ67802. Software K2
PulsaRCódigo aberto, Universidade de OtagoVeja ref 9
RéguaFisher Scientific12-00-152
Tubulação Silastic (0.040" I.D.)Tubulação de DOW508-005
Silastic (0,078" I.D.)DOW508-009
Solução salina estérilVWR101320-574
SacaroseFisher ScientificS5-500
BD Isoflurano 

Referências

  1. Roseweir, A. K., et al. Discovery of potent kisspeptin antagonists delineate physiological mechanisms of gonadotropin regulation. Journal of Neuroscience. 29 (12), 3920-3929 (2009).
  2. Kim, J. Y., Grunke, S. D., Levites, Y., Golde, T. E., Jankowsky, J. L.

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Reimpressões e permissões

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