Summary

Etikettfri ytförbättrad Raman-spridningsbioanalys baserad på Au@Carbon punktnanoprober

Published: June 09, 2023
doi:

Summary

I denna studie utvecklade vi en billig ytförbättrad Raman-spridning (SERS)-baserad fingeravtrycksnanosond med gynnsam biokompatibilitet för att visa etikettfri bioimaging av levande celler och detektera två bakteriestammar, vilket visar i detalj hur man får SERS-spektra av levande celler i en icke-destruktiv metod.

Abstract

Ytförstärkt Raman-spridningsteknik (SERS) har väckt mer och mer uppmärksamhet inom det biomedicinska området på grund av dess förmåga att tillhandahålla molekylär fingeravtrycksinformation av biologiska prover, liksom dess potential i encellsanalys. Detta arbete syftar till att upprätta en enkel strategi för etikettfri SERS-bioanalys baserad på Au@carbon dot nanoprobes (Au@CDs). Här används polyfenol-härledda CD-skivor som reduktionsmedel för att snabbt syntetisera kärnskal Au@CD nanostrukturer, vilket möjliggör kraftfull SERS-prestanda även när koncentrationen av metylenblått (MB) är så låg som 10-9 M, på grund av den kooperativa Raman-förbättringsmekanismen. För bioanalys kan Au@CDs fungera som en unik SERS-nanosensor för att identifiera cellkomponenterna i bioprover (t.ex. cancerceller och bakterier). De molekylära fingeravtrycken från olika arter kan särskiljas ytterligare efter kombination med huvudkomponentanalysen. Dessutom möjliggör Au@CDs etikettfri SERS-avbildning för att analysera intracellulära kompositionsprofiler. Denna strategi erbjuder en genomförbar, etikettfri SERS-bioanalys, vilket öppnar upp för nya möjligheter för nanodiagnos.

Introduction

Encellsanalys är avgörande för studier av avslöjande cellulär heterogenitet och bedömning av cellens omfattande tillstånd. Cellens omedelbara svar på mikromiljön motiverar också encellsanalys1. Det finns dock vissa begränsningar för de nuvarande teknikerna. Fluorescensdetektering kan tillämpas på encellsanalys, men den begränsas av låg känslighet. Andra utmaningar uppstår från den komplicerade fluorescensbakgrunden hos celler och fluorescensfotoblekningen under långvarig bestrålning2. Ytförstärkt Ramanspridning (SERS) kan kvalificera sig när det gäller encellsanalys på grund av dess fördelar, inklusive (1) återspeglar den inneboende molekylära fingeravtrycksinformationen och den momentana situationen, (2) ultrahög ytkänslighet, (3) bekväm multiplexdetektering, (4) hög fotostabilitet, (5) detektion kan kvantifieras för jämförande analys, (6) undvikande av cellulär autofluorescens med NIR-våglängdsexcitation, (7) detektion kan utföras i en cellulär vattenhaltig miljö och (8) detektion kan riktas till en specifik region i cellen 3,4,5.

Det finns två allmänt erkända mekanismer för att förstå SERS som ett grundläggande fenomen: elektromagnetisk förbättring (EM) som en dominerande orsak och kemisk förbättring (CM). EM hänvisar till, i en given frekvens av det spännande fältet, svängningen av kollektiva elektroner drivna av elektromagnetiska vågor när frekvensen för det infallande ljuset matchar frekvensen av fria elektroner som oscillerar i metallen, vilket ger upphov till ytplasmonresonans (SPR). När lokaliserad SPR (LSPR) inträffar genom den infallande lasern som träffar metallnanopartiklarna (NP), leder det till resonansabsorption eller spridning av det infallande ljuset. Följaktligen kan den elektromagnetiska fältintensiteten hos metall NP förbättras med två till fem ordningar4. Nyckeln till den enorma förbättringen av SERS är dock inte en enda metall-NP, utan klyftan mellan två NP, vilket skapar hot spots. CM genereras från två sidor, inklusive (1) interaktioner mellan målmolekyler och metall NP och (2) målmolekyler som kan överföra elektroner till / från metall NP 4,5. Mer uttömmande detaljer finns i dessa översiktsartiklar 4,5. Flera lovande metoder för SERS biosensing och avbildning i levande celler har presenterats i tidigare litteratur, till exempel detektion av apoptotiska celler6, proteiner i organeller7, intracellulära miRNA8, cellulära lipidmembran, 9cytokiner10 och metaboliter11 i levande celler, samt identifiering och övervakning av celler genom konfokal SERS-avbildning2, 11,12,13. Intressant nog presenterar etikettfri SERS den unika fördelen med SERS, som kan beskriva interna molekylära spektra5.

Ett viktigt problem för etikettfri SERS är ett rationellt och pålitligt substrat. Typiska SERS-substrat är ädelmetall NP på grund av deras utmärkta förmåga att sprida mycket ljus14. Numera ägnas mer och mer uppmärksamhet åt nanokompositer på grund av deras anmärkningsvärda fysikaliska och kemiska egenskaper och biokompatibilitet. Mer betydelsefullt kan nanokompositer visa bättre SERS-aktivitet på grund av den intensiva EM som induceras av de heta fläckarna på nanohybriderna och ytterligare kemisk förbättring som härrör från andra icke-metalliska material15. Till exempel använde Fei et al. MoS 2 kvantprickar (QD) som reducerare för att syntetisera Au NP@MoS2QD nanokompositer för etikettfri nära infraröd (NIR) SERS-avbildning av mus 4T1 bröstcancercell (4T1-celler)16. Li et al. tillverkade också ett 2D SERS-substrat bestående av Au NP och 2D-hafniumditelluridnanoark för etikettfria SERS-mätningar av livsmedelsburna patogena bakterier17. Nyligen har kolprickar (CD), bra elektrondonatorer, använts som reduktionsmedel utan andra reduktionsmedel eller bestrålning för att syntetisera Au@carbon punktnanoprober (Au@CDs)18, som har rapporterats vara effektiva material för att förbättra SERS-aktiviteten baserat på laddningsöverföringseffekten (CT) mellan Au-kärnor och CD-skal 19,20. Mer än så erkänns CD-skivor som täckmedel och stabilisator för att förhindra att Au NP aggregerar21. Dessutom öppnar det fler möjligheter för reaktioner med analyter, eftersom det kan ge ett stort antal bindande och aktiva platser20. Genom att utnyttja ovanstående utvecklade Jin et al. en snabb och kontrollerbar metod för att tillverka Ag@CD NP med unika SERS-egenskaper och utmärkta katalytiska aktiviteter för övervakning av heterogena katalytiska reaktioner i realtid18.

Här demonstrerades en enkel och billig metod för tillverkning av kärnskal Au@CD SERS-substrat för att identifiera cellulära komponenter och etikettfri SERS-bioimaging, samt för att detektera och differentiera Escherichia coli (E. coli) och Staphylococcus aureus (S. aureus), vilket är lovande för tidig diagnos av sjukdom och en bättre förståelse av cellulära processer.

Protocol

1. Tillverkning av Au@CDs OBS: Figur 1 illustrerar ett tillverkningsförfarande för Au@CDs. Bered CD-lösning med citronsyra (CA) och gallinsyra (GA) via en typisk hydrotermisk behandlingsprocedur18. Tillsätt 100 μl 3,0 mg ml-1 av den beredda CD-lösningen i 200 μl 10 mM klorauriksyra (HAuCl4) (se materialtabell) vid rumstemperatur i 10 s tills en lila suspension…

Representative Results

Tillverkning av Au@CDs illustreras i figur 1. CD-skivorna framställdes från CA och GA via en typisk hydrotermisk process18. Au@CDs syntetiserades snabbt genom att reducera HAuCl4 med CD-skivor i vattenhaltiga medier vid rumstemperatur. Storleken och morfologin hos CD-skivor och Au@CDs kan observeras med TEM och högupplöst (HR) TEM23. De förberedda CD-skivorna är monodispergerade med små storlekar på …

Discussion

Sammanfattningsvis har Au@CDs med ett ultratunt CD-skal på 2,1 nm framgångsrikt tillverkats. Nanokompositerna visar överlägsen SERS-känslighet än rena Au NP. Dessutom har Au@CDs utmärkt prestanda i reproducerbarhet och långsiktig stabilitet. Ytterligare forskning inkluderar att ta Au@CDs som substrat för att utföra SERS-avbildning av A549-celler31 och för att detektera två bakteriestammar32. Det har bevisats att Au@CDs kan användas som en ultrakänslig SERS-son…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete stöddes av National Natural Science Foundation of China (32071399 och 62175071), Science and Technology Program of Guangzhou (2019050001), Guangdong Basic and Applied Basic Research Foundation (2021A1515011988) och Open Foundation of the Key Laboratory of Optoelectronic Science and Technology for Medicine (Fujian Normal University), utbildningsministeriet, Kina (JYG2009).

Materials

10x PBS buffer (Cell culture) Langeco Technology BL316A
6 well cell culture plate LABSELECT 11110
Cell Counting Kit-8 (CCK-8) GLPBIO GK10001
Citric acid Shanghai Aladdin Biochemical Technology C108869
CO2 incubator Thermo Fisher Technologies 3111
Constant temperature magnetic agitator Sartorius Scientific Instruments SQP
Cryogenic high speed centrifuge Shanghai Boxun SW-CJ-2FD
DMEM high glucose cell culture medium Procell PM150210
Electronic balance Sartorius Scientific Instruments SQP
Enzyme marker Thermo Fisher Technologies 3111
Fetal bovine serum Zhejiang Tianhang Biological Technology 11011-8611
Figure 1 Figdraw.
Fourier infrared spectrometer Thermo, America Nicolet 380
Freeze dryer Tecan Infinite F50
Gallic acid Shanghai Aladdin Biochemical Technology G104228
Handheld Raman spectrometer OCEANHOOD, Shanghai, China Uspectral-PLUS
HAuCl4 Guangzhou Pharmaceutical Company (Guangzhou)
High resolution transmission electron microscope Thermo Fisher Technologies FEI Tecnai G2 Spirit T12
High temperature autoclave Shanghai Boxun YXQ-LS-50S Equation 2
Inverted microscope Nanjing Jiangnan Yongxin Optical XD-202
LB Broth BR Huankai picoorganism 028320
Medical ultra-low temperature refrigerator Thermo Fisher Technologies ULTS1368
Methylene blue Sigma-Aldrich
Pancreatin Cell Digestive Solution beyotime C0207
Penicillin streptomycin double resistance Shanghai Boxun YXQ-LS-50S Equation 2
Pure water meter Millipore, USA Milli-Q System
Raman spectrometer Renishaw
Sapphire chip beyotime
Thermostatic water bath Changzhou Noki
Ultra-clean table Shanghai Boxun SW-CJ-2FD
Uv-visible light absorption spectrometer MADAPA, China UV-6100S
Wire 3.4 Renishaw

Referências

  1. Zenobi, R. Single-cell metabolomics: analytical and biological perspectives. Science. 342 (6163), 1243259 (2013).
  2. Dong, C., et al. Simultaneous visualization of dual intercellular signal transductions via SERS imaging of membrane proteins dimerization on single cells. ACS Nano. 16 (9), 14055-14065 (2022).
  3. Lane, L. A., Qian, X., Nie, S. SERS nanoparticles in medicine: from label-free detection to spectroscopic tagging. Chemical Reviews. 115 (19), 10489-10529 (2015).
  4. Langer, J., et al. Present and future of surface-enhanced Raman scattering. ACS Nano. 14 (1), 28-117 (2020).
  5. Zong, C., et al. Surface-enhanced Raman spectroscopy for bioanalysis: reliability and challenges. Chemical Reviews. 118 (10), 4946-4980 (2018).
  6. Jiang, X., et al. Surface-enhanced Raman scattering-based sensing in vitro: facile and label-free detection of apoptotic cells at the single-cell level. Analytical Chemistry. 85 (5), 2809-2816 (2013).
  7. Qi, G., Diao, X., Hou, S., Kong, J., Jin, Y. Label-free SERS detection of protein damage in organelles under electrostimulation with 2D AuNPs-based nanomembranes as substrates. Analytical Chemistry. 94 (43), 14931-14937 (2022).
  8. Wang, J., et al. Trimer structures formed by target-triggered AuNPs self-assembly inducing electromagnetic hot spots for SERS-fluorescence dual-signal detection of intracellular miRNAs. Biosensors and Bioelectronics. 224, 115051 (2023).
  9. Živanović, V., Milewska, A., Leosson, K., Kneipp, J. Molecular structure and interactions of lipids in the outer membrane of living cells based on surface-enhanced Raman scattering and liposome models. Analytical Chemistry. 93 (29), 10106-10113 (2021).
  10. Cong, L., et al. Microfluidic droplet-SERS platform for single-cell cytokine analysis via a cell surface bioconjugation strategy. Analytical Chemistry. 94 (29), 10375-10383 (2022).
  11. Tan, Z., Zhu, C., Han, L., Liao, X., Wang, C. SERS and dark-field scattering dual-mode detection of intracellular hydrogen peroxide using biocompatible Au@ COF nanosensor. Sensors and Actuators B: Chemical. 373, 132770 (2022).
  12. Pan, X. T., et al. Super-long SERS active single silver nanowires for molecular imaging in 2D and 3D cell culture models. Biosensors. 12 (10), 875 (2022).
  13. Liu, Z., et al. A two-dimensional fingerprint nanoprobe based on black phosphorus for bio-SERS analysis and chemo-photothermal therapy. Nanoscale. 10 (39), 18795-18804 (2018).
  14. Bruzas, I., Lum, W., Gorunmez, Z., Sagle, L. Advances in surface-enhanced Raman spectroscopy (SERS) substrates for lipid and protein characterization: sensing and beyond. Analyst. 143 (17), 3990-4008 (2018).
  15. Li, D., et al. SERS analysis of carcinoma-associated fibroblasts in a tumor microenvironment based on targeted 2D nanosheets. Nanoscale. 12 (3), 2133-2141 (2020).
  16. Fei, X., et al. Synthesis of Au NP@MoS2quantum dots core@shell nanocomposites for SERS bio-analysis and label-free bio-imaging. Materials. 10 (6), 650 (2017).
  17. Li, Y., et al. Rapid label-free SERS detection of foodborne pathogenic bacteria based on hafnium ditelluride-Au nanocomposites. Journal of Innovative Optical Health Sciences. 13 (5), 2041004 (2020).
  18. Jin, J., et al. Precisely controllable core-shell Ag@ carbon dots nanoparticles: application to in situ super-sensitive monitoring of catalytic reactions. ACS Applied Materials & Interfaces. 8 (41), 27956-27965 (2016).
  19. Luo, P., Li, C., Shi, G. Synthesis of gold@ carbon dots composite nanoparticles for surface enhanced Raman scattering. Physical Chemistry Chemical Physics. 14 (20), 7360-7366 (2012).
  20. Li, L., et al. Accurate SERS monitoring of the plasmon mediated UV/visible/NIR photocatalytic and photothermal catalytic process involving Ag@carbon dots. Nanoscale. 13 (2), 1006-1015 (2021).
  21. Wang, X., et al. Reduced state carbon dots as both reductant and stabilizer for the synthesis of gold nanoparticles. Carbon. 64, 499-506 (2013).
  22. Zhu, M., et al. Physicochemical properties determine nanomaterial cellular uptake, transport, and fate. Accounts of Chemical Research. 46 (3), 622-631 (2013).
  23. Li, L., et al. SERS monitoring of photoinduced-enhanced oxidative stress amplifier on Au@ carbon dots for tumor catalytic therapy. Light: Science & Applications. 11 (1), 286 (2022).
  24. Fiori, F., et al. Highly photostable carbon dots from citric acid for bioimaging. Materials. 15 (7), 2395 (2022).
  25. Chen, X., et al. Preparation of carbon dots-based nanoparticles and their research of bioimaging and targeted antitumor therapy. Journal of Biomedical Materials Research. Part B, Applied Biomaterials. 110 (1), 220-228 (2022).
  26. Chen, M., et al. Red, green, and blue light-emitting carbon dots prepared from gallic acid for white light-emitting diode applications. Nanoscale Advances. 4 (1), 14-18 (2022).
  27. Byram, C., Moram, S. S. B., Shaik, A. K., Soma, V. R. Versatile gold based SERS substrates fabricated by ultrafast laser ablation for sensing picric acid and ammonium nitrate. Chemical Physics Letters. 685, 103-107 (2017).
  28. Efrima, S., et al. Understanding SERS of bacteria. Journal of Raman Spectroscopy. 40 (3), 277-288 (2009).
  29. Movasaghi, Z., Rehman, S., Rehman, I. U. Raman spectroscopy of biological tissues. Applied Spectroscopy Reviews. 42 (5), 493-541 (2007).
  30. Mushtaq, A., et al. Surface-enhanced Raman spectroscopy (SERS) for monitoring colistin-resistant and susceptible E. coli strains. Spectrochimica Acta Part A: Molecular and Biomolecular Spectroscopy. 278, 121315 (2022).
  31. Mosier-Boss, P. A., Sorensen, K. C., George, R. D., Obraztsova, A. SERS substrates fabricated using ceramic filters for the detection of bacteria. Spectrochimica Acta Part A: Molecular and Biomolecular Spectroscopy. 153, 591-598 (2016).
  32. Zhang, P., et al. Dynamic insights into increasing antibiotic resistance in Staphylococcus aureus by label-free SERS using a portable Raman spectrometer. Spectrochimica Acta Part A: Molecular and Biomolecular Spectroscopy. 273, 121070 (2022).
  33. Li, J. F., Zhang, Y. J., Ding, S. Y., Panneerselvam, R., Tian, Z. Q. Core-shell nanoparticle-enhanced Raman spectroscopy. Chemical Reviews. 117 (7), 5002-5069 (2017).
  34. Bodelon, G., Montes-Garcia, V., Perez-Juste, J., Pastoriza-Santos, I. Surface-enhanced Raman scattering spectroscopy for label-free analysis of P. aeruginosa quorum sensing. Frontiers in Cellular and Infection Microbiology. 8, 143 (2018).
  35. Weiss, R., et al. Surface-enhanced Raman spectroscopy of microorganisms: limitations and applicability on the single-cell level. Analyst. 144 (3), 943-953 (2019).
  36. Oliveira, K., et al. Multiplex SERS phenotyping of single cancer cells in microdroplets. Advanced Optical Materials. 11 (1), 2201500 (2023).
  37. Ho, C. S., et al. Rapid identification of pathogenic bacteria using Raman spectroscopy and deep learning. Nature Communications. 10 (1), 4927 (2019).
  38. Spedalieri, C., Kneipp, J. Surface enhanced Raman scattering for probing cellular biochemistry. Nanoscale. 14 (14), 5314-5328 (2022).
  39. Weng, S. Y., et al. Highly sensitive and reliable detection of microRNA for clinically disease surveillance using SERS biosensor integrated with catalytic hairpin assembly amplification technology. Biosensors & Bioelectronics. 208, 114236 (2022).
  40. Wang, J. W., et al. Target-triggered nanomaterial self-assembly induced electromagnetic hot-Spot Generation for SERS-fluorescence dual-mode in situ monitoring MiRNA-guided phototherapy. Analytical Chemistry. 93 (41), 13755-13764 (2021).
check_url/pt/65524?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Zheng, Y., Xiao, X., Li, Z., Shao, Y., Chen, J., Guo, Z., Zhong, H., Liu, Z. Label-Free Surface-Enhanced Raman Scattering Bioanalysis Based on Au@Carbon Dot Nanoprobes. J. Vis. Exp. (196), e65524, doi:10.3791/65524 (2023).

View Video