Summary

Affinitetsrening av ett fibrinolytiskt enzym från Sipunculus nudus

Published: June 02, 2023
doi:

Summary

Här presenterar vi en affinitetsreningsmetod för ett fibrinolytiskt enzym från Sipunculus nudus som är enkel, billig och effektiv.

Abstract

Det fibrinolytiska enzymet från Sipunculus nudus (sFE) är ett nytt fibrinolytiskt medel som både kan aktivera plasminogen till plasmin och bryta ner fibrin direkt, vilket visar stora fördelar jämfört med traditionella trombolytiska medel. På grund av bristen på strukturell information är emellertid alla reningsprogram för sFE baserade på flerstegskromatografireningar, som är för komplicerade och kostsamma. Här utvecklas för första gången ett affinitetsreningsprotokoll för sFE baserat på en kristallstruktur av sFE; Det innefattar beredning av råprovet och kolonnen för lysin/arginin-agarosmatrisaffinitetskromatografi, affinitetsrening och karakterisering av renat sFE. Efter detta protokoll kan en sats sFE renas inom 1 dag. Dessutom ökar renheten och aktiviteten hos den renade sFE till 92% respektive 19 200 U / ml. Således är detta ett enkelt, billigt och effektivt tillvägagångssätt för sFE-rening. Utvecklingen av detta protokoll är av stor betydelse för vidare utnyttjande av sFE och andra liknande medel.

Introduction

Trombos är ett stort hot mot folkhälsan, särskilt efter den globala pandeminCovid-19 1,2. Kliniskt har många plasminogenaktivatorer (PA), såsom plasminogenaktivator av vävnadstyp (tPA) och urokinas (UK), använts i stor utsträckning som trombolytiska läkemedel. PA kan aktivera patientens plasminogen till aktivt plasmin för att bryta ned fibrin. Således är deras trombolytiska effektivitet starkt begränsad av patientens plasminogenstatus 3,4. Fibrinolytiska medel, såsom metalloproteinasplasmin och serinplasmin, är en annan typ av kliniskt trombolytiskt läkemedel som också innehåller fibrinolytiska enzymer (FE) såsom plasmin, som kan lösa blodproppar direkt men snabbt inaktiveras av olika plasminhämmare5. Därefter har en ny typ av fibrinolytiskt medel rapporterats som kan lösa tromben genom att inte bara aktivera plasminogen i plasmin utan också bryta ner fibrinet direkt 6-det fibrinolytiska enzymet från den gamla jordnötsmasken Sipunculus nudus (sFE)6. Denna bifunktion ger sFE andra fördelar jämfört med traditionella trombolytiska läkemedel, särskilt när det gäller onormal plasminogenstatus. Jämfört med andra bifunktionella fibrinolytiska medel 7,8,9 visar sFE flera fördelar, inklusive säkerhet, jämfört med icke-livsmedelshärledda medel för läkemedelsutveckling, särskilt för orala läkemedel. Detta beror på att biosäkerheten och biokompatibiliteten hos Sipunculus nudus har varit väletablerad10.

I likhet med de andra naturliga fibrinolytiska medlen isolerade från mikroorganismer, daggmaskar och svampar är reningen av sFE från S. nudus mycket komplicerad och innefattar flera steg, såsom vävnadshomogenisering, ammoniumsulfatutfällning, avsaltning, anjonbyteskromatografi, hydrofob interaktionskromatografi och molekylsiktning10,11,12. Ett sådant reningssystem beror inte bara på skickliga färdigheter och dyra material, men kräver också flera dagar för att slutföra hela proceduren. Därför är ett enkelt reningsprogram av sFE av stor betydelse för den fortsatta utvecklingen av sFE. Lyckligtvis två kristaller av sFE (PDB: 8HZP; PDB: 8HZO) har erhållits framgångsrikt (se kompletterande fil 1 och kompletterande fil 2). Genom strukturanalys och molekylära dockningsexperiment fann vi att den katalytiska kärnan i sFE specifikt kunde binda till mål som innehåller arginin- eller lysinrester.

Häri föreslogs för första gången ett affinitetsreningssystem, baserat på kristallstrukturen hos sFE. Genom att följa detta protokoll kan mycket ren och högaktiv sFE renas från råextrakten i ett enda affinitetsreningssteg. Protokollet som utvecklats här är inte bara viktigt för storskalig beredning av sFE, utan kan också tillämpas för rening av andra fibrinolytiska medel.

Protocol

1. Förberedelse Prov behandlingDissekera försiktigt färsk S. nudus (100 g) och samla tarmarna och dess inre vätska. Tillsätt 300 ml Tris-HCl-buffert (0,02 M, pH 7,4) för homogenisering (1 000 rpm, 60 s). Frys-tina homogenatet 3x. Centrifugera provet (10,956 × g, 0,5 timmar, 4 °C) och samla upp supernatanten. Förvara provet vid 4 °C tills det används igen. Protein nederbördBlanda supernatanten me…

Representative Results

Efter detta protokoll extraherades råvävnadslysater, arginin-agarosmatris och lysin-agarosmatrisaffinitetskromatografikolonner byggdes, renat sFE erhölls och renheten och den fibrinolytiska aktiviteten hos den renade sFE mättes med SDS-PAGE respektive fibrinplattor. Efter centrifugering var den uppsamlade supernatanten en transparent solbränd viskös vätska. Utfällning började när denna supernatant blandades med mättad ammoniumsulfatlösning (nio volymer). Efter att ha stått i 12 ti…

Discussion

På grund av otillgängligheten av den exakta gensekvensen av sFE extraherades den för närvarande använda sFE från färsk S. nudus14. Dessutom var reningsförfarandena för sFE som rapporterats i litteraturen komplicerade och kostsamma, eftersom de baserades på vissa allmänna egenskaper hos sFE, såsom molekylvikt, isoelektrisk punkt, jonstyrka och polaritet15,16. Inget affinitetsreningsprotokoll för sFE har hittills rappor…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denna forskning finansierades av Science and Technology Bureau of Xiamen City (3502Z20227197) och Science and Technology Bureau of Fujian Province (No. 2019J01070, No.2021Y0027).

Materials

30% Acrylamide-Bisacrylamide (29:1) Biosharp
2-Mercaptoethanol Solarbio
Agarose G-10 Biowest
Ammonium persulfate SINOPHARM
Ammonium sulfate SINOPHARM
Arginine-Sepharose 4B Solarbio Arginine-agarose matrix
Bromoxylenol Blue (BPB) Solarbio
Fast Silver Stain Kit Beyotime
Fibrinogen Merck
Glycine Solarbio
Hydrochloric acid SINOPHARM
Kinase RHAWN
Lysine-Sepharose 4B Solarbio Lysine-agarose matrix
N,N,N',N'-Tetramethylethylenediamine (TEMED) Sigma-Aldrich
Prestained Color Protein Marker (10-170 kD) Beyotime
Sodium chloride SINOPHARM
Sodium Dodecyl Sulfonate (SDS) Sigma-Aldrich
Sodium hydroxide SINOPHARM
Thrombin Meilunbio
Tris(Hydroxymethyl) Aminomethane Solarbio
Tris(Hydroxymethyl) Aminomethane Hydrochloride Solarbio
Equipment
AKT Aprotein Purification System pure GE
Automatic Vertical Pressure Steam Sterilizer MLS-3750 SANYO
Chemiluminescence Imaging System GE
Constant Flow Pump BT-100 QITE
Constant Temperature Incubator JINGHONG
Desktop Refrigerated Centrifuge 3-30KS SIGMA
DHG Series Heating and Drying Oven DGG-9140AD SENXIN
Electric Glass Homogenizer DY89-II SCIENTZ
Electronic Analytical Balance DENVER
Electro-Thermostatic Water Bath DK-S12 SENXIN
Horizontal Decolorization Shaker Kylin-Bell
Ice Machine AF 103 Scotsman
KQ-500E Ultrasonic Cleaner ShuMei
Magnetic Stirrer Zhi wei
Micro Refrigerated Centrifuge H1650-W Cence
Microwave Oven Galanz
Milli-Q Reference Millipore
Pipettor Thermo Fisher Scientific
Precision Desktop pH Meter Sartorious
Small-sized Vortex Oscillator Kylin-Bell
Vertical Electrophoresis System Bio-Rad
Consumable Material 
200 µL PCR Tube (200 µL) Axygene
Centrifuge Tube (1.5 mL) Biosharp
Centrifuge Tube (5 mL) Biosharp
Centrifuge Tube (50 mL) NEST
Centrifuge Tube (7 mL) Biosharp
Culture Dish (60 mm) NEST
Filter Membrane (0.22 µm) Millex GP
Parafilm Bemis
Pipette Tip (1 mL ) KIRGEN
Pipette Tip (10 µL) Axygene
Pipette Tip (200 µL) Axygene
Special Indicator Paper TZAKZY
Ultra Centrifugal Filter Unit (15 mL 3 KDa) Millipore
Ultra Centrifugal Filter Unit (4 mL 3 KDa) Millipore
Universal pH Indicator SSS Reagent

Referências

  1. Rosell, A., et al. Patients with COVID-19 have elevated levels of circulating extracellular vesicle tissue factor activity that is associated with severity and mortality-brief report. Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 41 (2), 878-882 (2021).
  2. Schultz, N. H., et al. Thrombosis and thrombocytopenia after ChAdOx1 nCoV-19 vaccination. The New England. Journal of Medicine. 384 (22), 2124-2130 (2021).
  3. von Kaulla, K. N. Urokinase-induced fibrinolysis of human standard clots. Nature. 184 (4695), 1320-1321 (1959).
  4. Van de Werf, F., et al. Coronary thrombolysis with tissue-type plasminogen activator in patients with evolving myocardial infarction. The New England Journal of Medicine. 310 (10), 609-613 (1984).
  5. Schaller, J., Gerber, S. S. The plasmin-antiplasmin system: structural and functional aspects. Cellular and Molecular Life Sciences. 68 (5), 785-801 (2011).
  6. Ge, Y. -. H., et al. A novel antithrombotic protease from marine worm Sipunculus nudus. International Journal of Molecular Sciences. 19 (10), 3023 (2018).
  7. Liu, X., et al. Purification and characterization of a novel fibrinolytic enzyme from culture supernatant of Pleurotus ostreatus. Journal of Microbiology and Biotechnology. 24 (2), 245-253 (2014).
  8. Choi, J. -. H., Sapkota, K., Kim, S., Kim, S. -. J. Starase: A bi-functional fibrinolytic protease from hepatic caeca of Asterina pectinifera displays antithrombotic potential. Biochimie. 105, 45-57 (2014).
  9. Liu, H., et al. A novel fibrinolytic protein From Pheretima vulgaris: purification, identification, antithrombotic evaluation, and mechanisms investigation. Frontiers in Molecular Biosciences. 8, 772419 (2022).
  10. Wu, Y., et al. Antioxidant, hypolipidemic and hepatic protective activities of polysaccharides from Phascolosoma esculenta. Marine Drugs. 18 (3), 158 (2020).
  11. . Preparation and application of natural fibrinolytic enzyme from peanut worm Available from: https://patents.google.com/patent/CN109295042A/en (2019)
  12. Li, W., Yuan, M., Wu, Y., Xu, R. Identification of genes expressed differentially in female and male gametes of Sipunculus nudus. Aquaculture Research. 51 (9), 3780-3789 (2020).
  13. Ossipow, V., Laemmlii, U. K., Schibler, U. A simple method to renature DNA-binding proteins separated by SDS-polyacrylamide gel electrophoresis. Nucleic Acids Research. 21 (25), 6040-6041 (1993).
  14. Hsu, T., Ning, Y., Gwo, J., Zeng, Z. DNA barcoding reveals cryptic diversity in the peanut worm Sipunculus nudus. Molecular Ecology Resources. 13 (4), 596-606 (2013).
  15. Abiko, Y., Iwamoto, M., Shimizu, M. Plasminogen-plasmin system. I. Purification and properties of human plasminogen. The Journal of Biochemistry. 64 (6), 743-750 (1968).
  16. Abiko, Y., Iwamoto, M., Shimizu, M. Plasminogen-plasmin system. II. Purification and properties of human plasmin. The Journal of Biochemistry. 64 (6), 751-757 (1968).
  17. Wiman, B. Affinity-chromatographic purification of human α2-antiplasmin. The Biochemical Journal. 191 (1), 229-232 (1980).
  18. Sandbjerg Hansen, M., Clemmensen, I. Partial purification and characterization of a new fast-acting plasmin inhibitor from human platelets. Evidence for non-identity with the known plasma proteinase inhibitors. The Biochemical Journal. 187 (1), 173-180 (1980).
  19. Pietrocola, G., Rindi, S., Nobile, G., Speziale, P. Purification of human plasma/cellular fibronectin and fibronectin fragments. Fibrosis. 1627, 309-324 (2017).
  20. Nabiabad, H. S., Yaghoobi, M. M., Javaran, M. J., Hosseinkhani, S. Expression analysis and purification of human recombinant tissue type plasminogen activator (rt-PA) from transgenic tobacco plants. Preparative Biochemistry and Biotechnology. 41 (2), 175-186 (2011).
  21. Shearin, T. V., Pizzo, S. V., Gonzalez-Gronow, M. Molecular abnormalities of human plasminogen isolated from synovial fluid of rheumatoid arthritis patients. Journal of Molecular Medicine. 75 (5), 378-385 (1997).
check_url/pt/65631?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Tang, M., Lin, H., Hu, C., Yan, H. Affinity Purification of a Fibrinolytic Enzyme from Sipunculus nudus. J. Vis. Exp. (196), e65631, doi:10.3791/65631 (2023).

View Video