Summary

Utvikling og anvendelse av biofysiske analyser for evaluering av ternær kompleksdannelse indusert av proteolyse rettet mot kimærer (PROTACS)

Published: January 12, 2024
doi:

Summary

Her beskriver vi protokoller for biofysisk karakterisering av ternær kompleksdannelse indusert av proteolyse rettet mot kimærer (PROTACS) som involverer ubiquitinligasene Von Hippel-Lindau E3 ligase (VHL) og Cereblon (CRBN). Biofysiske metoder illustrert her inkluderer overflateplasmonresonans (SPR), biolagsinterferometri (BLI) og isotermisk titreringskalorimetri (ITC).

Abstract

E3-ligaser og proteiner målrettet for nedbrytning kan induseres til å danne komplekser av heterobifunksjonelle molekyler i en flertrinnsprosess. Kinetikken og termodynamikken til de involverte interaksjonene bidrar til effektiviteten av ubiquitinering og resulterende nedbrytning av proteinet. Biofysiske teknikker som overflateplasmonresonans (SPR), biolagsinterferometri (BLI) og isotermisk titreringskalorimetri (ITC) gir verdifull informasjon som kan brukes til optimalisering av disse interaksjonene. Ved hjelp av to modellsystemer ble det etablert et biofysisk analyseverktøy for å forstå kooperativiteten til ternær kompleksdannelse og virkningen av “krokeffekten” på bindingskinetikken. I ett tilfelle ble en proteolyse rettet mot kimærer (PROTAC) molekyl som induserte ternær kompleksdannelse mellom Brd4BD2 og VHL evaluert. Det heterobifunksjonelle molekylet, MZ1, har nM-affiniteter for både Brd4BD2-proteinet (SPR K D = 1 NM, ITC K D = 4 nM) og VHL-komplekset (SPR K D = 29 nM, ITC K D = 66 nM). For dette systemet ble det utviklet robuste SPR-, BLI- og ITC-analyser som reproduserte publiserte resultater som demonstrerte kooperativiteten til ternær kompleksdannelse. I det andre tilfellet ble et molekyl som induserte ternære komplekser mellom et 46,0 kDa protein, PPM1D og cereblon [CRBN (319-442)] studert. Det heterobifunksjonelle molekylet, BRD-5110, har en SPRK D = 1 nM for PPM1D, men mye svakere binding mot det avkortede CRBN (319-442) komplekset (SPR KD = ~ 3 μM). I så fall var bindingen for CRBN i SPR ikke mettet, noe som resulterte i en “krokeffekt”. Gjennomstrømnings- og reagenskrav for SPR, BLI og ITC ble evaluert, og generelle anbefalinger for deres anvendelse på PROTAC-prosjekter ble gitt.

Introduction

Polyubiquitinering av proteiner i cellen er en tett regulert prosess som involverer enzymer i Ubiquitin Ligase-familien 1,2. De terminale enzymene i banen er E3 ubiquitin-ligasene som kovalent fester ubiquitinmolekyler til deres proteinbindende partnere3. Polyubiquitinering av disse proteinbindende partnerne retter seg mot dem for proteolytisk nedbrytning av proteasomet4. Dette systemet er en del av proteinhomeostaseprosessen som har blitt terapeutisk utnyttet for å indusere nedbrytning av proteiner involvert i sykdom5. Små molekyler som induserer samspillet mellom E3 ubiquitin ligaser, slik som Von Hippel-Lindau E3 ligase (VHL) eller cereblon (CRBN), er vanligvis sammensatt av et E3 ligasebindende stridshode forbundet med en fleksibel linker til et stridshode som binder seg til proteinet som er målrettet for nedbrytning. Disse heterobifunksjonelle molekylene blir ofte referert til som proteolyse rettet mot kimærer eller PROTACS6.

Utviklingen av PROTACS innebærer å evaluere molekylers evne til å indusere nedbrytning av proteiner i celler. Mange cellulære analysesystemer er utviklet som overvåker den induserte interaksjonen mellom målproteinet og E3-ligasekomponentene, slik som VHL eller CRBN, ved behandling av cellene med et PROTAC-molekyl. En slik cellulær analyse, nanoluc-Halotag-systemet7, involverer en E3-ligase smeltet til Halotag-akseptoren og et målprotein merket med en nanoluc-donor. Ternær kompleksdannelse bringer nanoluc-donoren og Halotag-akseptoren i nærheten, noe som tillater overføring av energi fra giveren til akseptoren, noe som resulterer i utslipp av lys. Variasjoner av dette systemet kan brukes til å vurdere den cellulære permeabiliteten til PROTACS-molekyler8 eller endringer i det relative nivået av målprotein ubiquitinering9. Selv om disse cellulære systemene er avgjørende for å drive optimaliseringen av PROTACS, er dannelsen av komplekser mellom E3-ligaser og proteiner målrettet for nedbrytning en flertrinnsprosess10,11. Kinetikken og termodynamikken til de involverte binære og ternære interaksjonene bidrar til effektivitet ubiquitinering og resulterende nedbrytning av proteinet12,13,14.

Her beskrives protokoller som kan tilpasses for biofysisk karakterisering av ternær kompleksdannelse indusert av PROTACS ved bruk av overflateplasmonresonans (SPR), biolagsinterferometri (BLI) og isotermisk titreringskalorimetri (ITC). SPR og ITC protokoller for MZ1 PROTAC molekylet som induserer ternær kompleksdannelse mellom Brd4BD2 og VHL avledet fra litteratur rapporter13,15 og beskrevet her var i stand til å rekapitulere de rapporterte resultatene med noen modifikasjoner av de rapporterte prosedyrene, som vil bli diskutert. En beskrivelse av en BLI-analyse brukt til å evaluere ternær kompleksdannelse mellom MZI, Brd4BD2 og VHL er inkludert i denne rapporten. Affinitetsmålinger fra BLI var konsistente med de som ble observert i SPR og ITC. En tidligere publisert protokoll der en SPR-analyse ble utviklet for å vurdere den PROTAC-induserte ternære kompleksdannelsen mellom PPM1D, en Ser / Thr proteinfosfatase hvis uttrykk er indusert på en p53-avhengig måte16, og CRBN er også beskrevet. I dette tilfellet har PROTAC-molekylet en nanomolar affinitet for PPM1D, men bare en mikromolar affinitet for CRBN. I dette tilfellet er bindingen av PROTAC-molekylet til CRBN ikke mettet, noe som resulterer i den ofte observerte “krokeffekten”. Krokeffekten er en egenskap ved tre kroppssystemer der det er to arter som kan danne et heterotrimerisk kompleks når begge er bundet til et bromolekyl (figur 1)17. Krokeffekten observeres når broarten er i overkonsentrasjon i forhold til de to andre artene. Den resulterende tilstanden er en der de binære interaksjonene utkonkurrerer de ternære interaksjonene. Systemene der krokeffekten observeres krever spesifikke eksperimentelle designhensyn som diskuteres i denne rapporten. Generelle konsepter og reagenskrav for evaluering av bruken av biofysiske analyser for evaluering av PROTAC-indusert ternær kompleksdannelse er gitt.

Protocol

Alle proteinene ble overuttrykt i E.coli med godt utbytte og renhet (>80%) etter litteraturprotokollene18. Biotinylering ble utført ved hjelp av en BirA-katalysert reaksjon18. Alle små molekyler ble fremstilt ved 1 mM stamløsninger i 100% DMSO. Prosedyrene beskrevet her krever ikke spesialisert laboratoriesikkerhetsutstyr eller forholdsregler. Standard personlig verneutstyr for laboratorier (PPE) skal brukes (dvs. laboratoriefrakk, vernebriller og hansker). …

Representative Results

Karakterisering av VHL: MZ1 binært kompleks og VHL: MZ1: Brd4BD2 ternært kompleks finnes i figur 2 (ITC), figur 3 (BLI) og figur 4 (SPR) ved hjelp av en veldig lik buffer. KD ekstrahert fra ortogonale analyser er konsistent. Kooperativiteten kan beregnes med K D (binær) / KD (ternær), som er svært positiv (15 fra ITC eller 26 fra SPR). Karakterisering av CR…

Discussion

Biofysisk karakterisering av binære og ternære interaksjoner mellom PROTAC-molekyler og deres proteinbindende partnere kan gi unik og komplementær innsikt i forhold til mye brukte cellulære systemer. Å forstå affiniteten mellom hvert stridshode i et PROTAC-molekyl og dets proteinbindende partnere kan bidra til å veilede medisinsk kjemiinnsats mot optimalisering av disse interaksjonene. Tidligere publiserte krystallstrukturer av ternære PROTAC-komplekser har avslørt at atomer i linkerregionen kan danne interaksjo…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av en innovasjons- og teknologiutviklingspris fra Center for the Development of Therapeutics ved Broad Institute of MIT og Harvard. Forfatterne takker medlemmene av toppledelsen og granskningskomiteen for deres støtte til dette arbeidet.

Materials

96-plate Greiner 655076 flat-bottom, black plates used In BLI experiments
96-well plate Nunc 73520-120 Plate use for ITC sample preparation
96-well plate Greiner 650101 Plate used to prepare samples for SPR experiments
Auto iTC200 micro-calorimeter Malvern Panalytical Instrument used to perform ITC experiments. Product discontinued.
Biacore S200 Cytiva 29136649 Instrument used to perform SPR experiments
MZ1 ProbeChem PC-60099 PROTAC that binds to VHL and Brd4BD2
NTA sensor chip Cytiva BR100532 SPR chip used to perform SPR experiments involving PPM1D
Octet Red-384 Sartorius Instrument used to perform BLI experiments. Product discontinued.
Plate cover Malvern PQA0001 Cover for Nunc 96-well plate (73520-120)
Plate cover Cytiva 28975816 Plate cover for Greiner plate (650101)
Series S SA sensor chip Cytiva BR100531 SPR chip used to perform SPR experiments involving MZ1:VHL:BRD4
Streptavidin (SA) Dip and Read Biosensors Sartorius 18-509 Coated sensors used in BLI experiments

Referências

  1. Balaji, V., Hoppe, T. Regulation of E3 ubiquitin ligases by homotypic and heterotypic assembly. F1000Research. 9, (2020).
  2. Song, L., Luo, Z. -. Q. Post-translational regulation of ubiquitin signaling. Journal of Cell Biology. 218 (6), 1776-1786 (2019).
  3. Yang, Q., Zhao, J., Chen, D., Wang, Y. E3 ubiquitin ligases: styles, structures and functions. Molecular Biomedicine. 2 (1), 23 (2021).
  4. Grice, G. L., Nathan, J. A. The recognition of ubiquitinated proteins by the proteasome. Cellular and Molecular Life Sciences: CMLS. 73 (18), 3497-3506 (2016).
  5. Chirnomas, D., Hornberger, K. R., Crews, C. M. Protein degraders enter the clinic – a new approach to cancer therapy. Nature Reviews Clinical Oncology. 20 (4), 265-278 (2023).
  6. Toure, M., Crews, C. M. Small-molecule PROTACS: New approaches to protein degradation. Angewandte Chemie (International ed. In English). 55 (6), 1966-1973 (2016).
  7. Ottis, P., Toure, M., Cromm, P. M., Ko, E., Gustafson, J. L., Crews, C. M. Assessing different E3 ligases for small molecule induced protein ubiquitination and degradation. ACS Chemical Biology. 12 (10), 2570-2578 (2017).
  8. Riching, K. M., et al. Quantitative live-cell kinetic degradation and mechanistic profiling of PROTAC mode of action. ACS Chemical Biology. 13 (9), 2758-2770 (2018).
  9. Nabet, B., et al. The dTAG system for immediate and target-specific protein degradation. Nature Chemical Biology. 14 (5), 431-441 (2018).
  10. Paiva, S. -. L., Crews, C. M. Targeted protein degradation: elements of PROTAC design. Current Opinion in Chemical Biology. 50, 111-119 (2019).
  11. Hershko, A., Ciechanover, A. The ubiquitin system. Annual Review of Biochemistry. 67, 425-479 (1998).
  12. Chan, K. -. H., Zengerle, M., Testa, A., Ciulli, A. Impact of target warhead and linkage vector on inducing protein degradation: Comparison of bromodomain and extra-terminal (BET) degraders derived from triazolodiazepine (JQ1) and tetrahydroquinoline (I-BET726) BET inhibitor scaffolds. Journal of Medicinal Chemistry. 61 (2), 504-513 (2018).
  13. Roy, M. J., et al. SPR-measured dissociation kinetics of PROTAC ternary complexes influence target degradation rate. ACS Chemical Biology. 14 (3), 361-368 (2019).
  14. Pierce, N. W., Kleiger, G., Shan, S., Deshaies, R. J. Detection of sequential polyubiquitylation on a millisecond timescale. Nature. 462 (7273), 615-619 (2009).
  15. Gadd, M. S., et al. Structural basis of PROTAC cooperative recognition for selective protein degradation. Nature Chemical Biology. 13 (5), 514-521 (2017).
  16. Nahta, R., Castellino, R. C. Phosphatase magnesium-dependent 1 δ (PPM1D), serine/threonine protein phosphatase and novel pharmacological target in cancer. Biochemical Pharmacology. 184, 114362 (2021).
  17. Douglass, E. F., Miller, C. J., Sparer, G., Shapiro, H., Spiegel, D. A. A comprehensive mathematical model for three-body binding equilibria. Journal of the American Chemical Society. 135 (16), 6092-6099 (2013).
  18. Zorba, A., et al. Delineating the role of cooperativity in the design of potent PROTACs for BTK. Proceedings of the National Academy of Sciences. 115 (31), E7285-E7292 (2018).
  19. Fairhead, M., Howarth, M. Site-specific biotinylation of purified proteins using BirA. Methods in Molecular Biology. 1266, 171-184 (2015).
  20. Nowak, R. P., et al. Plasticity in binding confers selectivity in ligand-induced protein degradation. Nature Chemical Biology. 14 (7), 706-714 (2018).

Play Video

Citar este artigo
Jiang, W., Soutter, H. The Development and Application of Biophysical Assays for Evaluating Ternary Complex Formation Induced by Proteolysis Targeting Chimeras (PROTACS). J. Vis. Exp. (203), e65718, doi:10.3791/65718 (2024).

View Video