Summary

Tarmisolasjon fra sebrafisklarver for enkeltcelle RNA-sekvensering

Published: November 10, 2023
doi:

Summary

Her beskriver vi en metode for tarmisolering fra sebrafisklarver 5 dager etter befruktning, for encellet RNA-sekvenseringsanalyse.

Abstract

Den gastrointestinale (GI) -kanalen utfører en rekke funksjoner som er avgjørende for livet. Medfødte defekter som påvirker utviklingen kan føre til enteriske nevromuskulære lidelser, og fremhever viktigheten av å forstå de molekylære mekanismene som ligger til grunn for GI-utvikling og dysfunksjon. I denne studien presenterer vi en metode for tarmisolering fra sebrafisklarver 5 dager etter befruktning for å oppnå levende, levedyktige celler som kan brukes til encellet RNA-sekvensering (scRNA-seq) analyse. Denne protokollen er basert på manuell disseksjon av sebrafisktarmen, etterfulgt av enzymatisk dissosiasjon med papain. Deretter blir celler sendt til fluorescensaktivert cellesortering, og levedyktige celler samles for scRNA-seq. Med denne metoden var vi i stand til å identifisere forskjellige tarmcelletyper, inkludert epitel-, stromal-, blod-, muskel- og immunceller, samt enteriske nevroner og glia. Derfor anser vi det for å være en verdifull ressurs for å studere sammensetningen av GI-kanalen i helse og sykdom, ved hjelp av sebrafisken.

Introduction

Mage-tarmkanalen (GI) er et komplekst system som spiller en viktig rolle i generell helse og velvære. Det er ansvarlig for fordøyelsen og absorpsjonen av næringsstoffer, samt eliminering av avfallsprodukter 1,2. GI-kanalen består av flere celletyper, inkludert epitelceller, glatte muskelceller, immunceller og det enteriske nervesystemet (ENS), som kommuniserer tett sammen for å regulere og opprettholde riktig tarmfunksjon 3,4,5. Defekter i utviklingen av GI-kanalen kan ha vidtgående effekter på ulike aspekter som næringsopptak, mikrobiotasammensetning, tarm-hjerneaksen og ENS, noe som fører til flere enteriske nevromuskulære lidelser, som Hirschsprung sykdom og Kronisk intestinal pseudoobstruksjon 6,7. Disse lidelsene kjennetegnes av alvorlig tarmdysmotilitet forårsaket av endringer i forskjellige nøkkelceller, som interstitielle celler i Cajal, glatte muskelceller og ENS 6,8,9. Imidlertid er de molekylære mekanismene som ligger til grunn for GI-utvikling og dysfunksjon fortsatt dårlig forstått.

Sebrafisken er en verdifull modellorganisme for å studere GI-utvikling og dysfunksjon på grunn av sin raske embryonale utvikling, gjennomsiktighet under embryonale stadier og larvestadier og genetisk trekkbarhet 10,11,12,13,14. Tallrike transgene sebrafisklinjer som uttrykker fluorescerende proteiner er tilgjengelige. Et eksempel på en slik linje er tg (phox2bb: GFP) sebrafisk, som vanligvis brukes til å studere ENS, da alle phox2bb + -celler, inkludert enteriske nevroner, er merket15,16. Her presenterer vi ved hjelp av tg(phox2bb:GFP) sebrafisklinjen en metode for tarmisolering på 5 dager etter befruktning (dpf) larver for encellet RNA-sekvensering (scRNA-seq) analyse (figur 1).

Protocol

Alt sebrafiskhold og forsøk ble utført i henhold til de institusjonelle retningslinjene i Erasmus MC og dyrevelferdslovgivningen. Bruk av sebrafisklarver 5 dager etter befruktning faller inn under kategorien forsøk som ikke krever formell etisk godkjenning, som beskrevet i nederlandsk regelverk. 1. Oppnå 5 dager etter befruktning (dpf) villtype og tg (phox2bb: GFP) larver Sett opp avl av villtype sebrafisk og samle 50 egg i HEPES-bufret E3 medium (herett…

Representative Results

Med denne protokollen oppnådde vi vellykket isolering og dissosiasjon av hele tarmen fra 5 dpf larver. Ved å bruke papain som dissosiasjonsenzym, forbedret vi signifikant cellens levedyktighet, noe som muliggjorde fangst av 46 139 hendelser som involverte enkle, levedyktige celler (6, 4% av alle celler) ut av 244 isolerte tarmer (figur 2A). Wildtype hele larver ble brukt som en kontroll for å sikre at sorteringsprosessen ble optimalisert, noe som muliggjorde effektiv celleidentifikasjon o…

Discussion

Her presenterer vi en metode for isolering og dissosiasjon av tarmen hos 5 dpf sebrafisklarver ved bruk av FACS. Med denne metoden ble forskjellige tarmcelletyper vellykket samlet og analysert av scRNA-seq, ved hjelp av 10x Genomics Chromium-plattformen. Vi valgte tg(phox2bb:GFP)-sebrafisklinjen, da vi ønsket en indikasjon på at levedyktige ENS-celler også ville være isolerte (figur 2D). Det er imidlertid viktig å merke seg at denne metoden lett kan utvides til andre sebrafiskl…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble finansiert av venner av Sophia Foundation (SSWO WAR-63).

Materials

10x Trypsin (0.5%)-EDTA (0.2%) Sigma 59418C
5 mL round bottom tube with cell-strainer cap Falcon 352235
Agarose Sigma-Aldrich A9539
BD Falcon Round-Bottom Tube 5 mL (FACS tubes) snap cap BD Biosciences 352054
Cell Ranger v3.0.2 10X Genomics N/A
DAPI Sigma-Aldrich Cat#D-9542
Dissection microscope Olympus SZX16
FACSAria III sorter machine BD Biosciences N/A
HBSS with CaCl2 and MgCl2 Gibco 14025050
Insect pins Fine Science Tools 26000-25
L-Cysteine Sigma C7352
MS-222, Tricaine Supelco A5040-250G
Papain Sigma P4762
Seurat v3 Stuart et al. (2019) N/A
Trypan blue  Sigma  Cat#T8154

Referências

  1. Saldana-Morales, F. B., Kim, D. V., Tsai, M. T., Diehl, G. E. Healthy intestinal function relies on coordinated enteric nervous system, immune system, and epithelium eesponses. Gut Microbes. 13 (1), 1-14 (2021).
  2. Sitrin, M. . The Gastrointestinal System. , (2014).
  3. Furness, J. B. The organisation of the autonomic nervous system: peripheral connections. Autonomic Neuroscience: Basic and Clinical. 130 (1-2), 1-5 (2006).
  4. Furness, J. B. The enteric nervous system and neurogastroenterology. Nature Reviews. Gastroenterology & Hepatology. 9 (5), 286-294 (2012).
  5. Obata, Y., Pachnis, V. The effect of microbiota and the immune system on the development and organization of the enteric nervous system. Gastroenterology. 151 (5), 836-844 (2016).
  6. Heuckeroth, R. O. Hirschsprung disease – integrating basic science and clinical medicine to improve outcomes. Nature Reviews. Gastroenterology & Hepatology. 15 (3), 152-167 (2018).
  7. Antonucci, A., et al. Chronic intestinal pseudo-obstruction. World Journal of Gastroenterology. 14 (19), 2953-2961 (2008).
  8. De Giorgio, R., Sarnelli, G., Corinaldesi, R., Stanghellini, V. Advances in our understanding of the pathology of chronic intestinal pseudo-obstruction. Gut. 53 (11), 1549-1552 (2004).
  9. Bianco, F., et al. Enteric neuromyopathies: highlights on genetic mechanisms underlying chronic intestinal pseudo-obstruction. Biomolecules. 12 (12), 1849 (2022).
  10. Kimmel, C. B., Ballard, W. W., Kimmel, S. R., Ullmann, B., Schilling, T. F. Stages of embryonic development of the zebrafish. Dev Dyn. 203 (3), 253-310 (1995).
  11. Lieschke, G. J., Currie, P. D. Animal models of human disease: zebrafish swim into view. Nature Reviews. Genetics. 8 (5), 353-367 (2007).
  12. Howe, K., et al. The zebrafish reference genome sequence and its relationship to the human genome. Nature. 496 (7446), 498-503 (2013).
  13. Wallace, K. N., Akhter, S., Smith, E. M., Lorent, K., Pack, M. Intestinal growth and differentiation in zebrafish. Mechanisms of Development. 122 (2), 157-173 (2005).
  14. Wallace, K. N., Pack, M. Unique and conserved aspects of gut development in zebrafish. Biologia do Desenvolvimento. 255 (1), 12-29 (2003).
  15. Harrison, C., Wabbersen, T., Shepherd, I. T. In vivo visualization of the development of the enteric nervous system using a Tg(-8.3bphox2b:Kaede) transgenic zebrafish. Genesis. 52 (12), 985-990 (2014).
  16. Kuil, L. E., Chauhan, R. K., Cheng, W. W., Hofstra, R. M. W., Alves, M. M. Zebrafish: a model organism for studying enteric nervous system development and disease. Frontiers in Cell and Developmental Biology. 8, 629073 (2020).
  17. Stuart, T., et al. Comprehensive Integration of Single-Cell Data. Cell. 177 (7), 1888-1902 (2019).
  18. Kuil, L. E., et al. Unbiased characterization of the larval zebrafish enteric nervous system at a single cell transcriptomic level. iScience. 26 (7), 107070 (2023).
  19. Gao, Y., et al. Unraveling differential transcriptomes and cell types in zebrafish larvae intestine and liver. Cells. 11 (20), 3290 (2022).
  20. Jin, Q., et al. Cdx1b protects intestinal cell fate by repressing signaling networks for liver specification. Journal of Genetics and Genomics. 49 (12), 1101-1113 (2022).
  21. Willms, R. J., Jones, L. O., Hocking, J. C., Foley, E. A cell atlas of microbe-responsive processes in the zebrafish intestine. Cell Reports. 38 (5), 110311 (2022).
  22. Kline, M. . Fishing for answers: Isolating enteric neurons and identifying putative ENS mutants. , (2016).
  23. Allan, K., DiCicco, R., Ramos, M., Asosingh, K., Yuan, A. Preparing a single cell suspension from zebrafish retinal tissue for flow cytometric cell sorting of Muller glia. Cytometry A. 97 (6), 638-646 (2020).
  24. Lopez-Ramirez, M. A., Calvo, C. F., Ristori, E., Thomas, J. L., Nicoli, S. Isolation and culture of adult zebrafish brain-derived neurospheres. Journal of Visualized Experiments. 53617 (108), 53617 (2016).
check_url/pt/65876?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Kakiailatu, N. J. M., Kuil, L. E., Bindels, E., Zink, J. T. M., Vermeulen, M., Melotte, V., Alves, M. M. Gut Isolation from Zebrafish Larvae for Single-cell RNA Sequencing. J. Vis. Exp. (201), e65876, doi:10.3791/65876 (2023).

View Video