Summary

Trabekulær knoglemikroarkitektur evaluering i en osteoporose mus model

Published: September 08, 2023
doi:

Summary

Denne protokol præsenterer en økonomisk og effektiv metode til kvantitativ evaluering af knoglemikroarkitektur i en musemodel af osteoporose ved at kombinere Hematoxylin-Eosin (HE) farvning og mikrocomputertomografi (Micro-CT) teknikker.

Abstract

Knoglemikrostruktur refererer til arrangementet og kvaliteten af knoglevæv på mikroskopisk niveau. Forståelse af knoglemikrostrukturen i skelettet er afgørende for at få indsigt i osteoporoseens patofysiologi og forbedre behandlingen. Håndtering af knogleprøver kan dog være kompleks på grund af deres hårde og tætte egenskaber. For det andet gør specialiseret software billedbehandling og analyse vanskelig. I denne protokol præsenterer vi en omkostningseffektiv og brugervenlig løsning til trabekulær knoglemikrostrukturanalyse. Detaljerede trin og forholdsregler er angivet. Micro-CT er en ikke-destruktiv tredimensionel (3D) billeddannelsesteknik, der giver billeder i høj opløsning af trabekulær knoglestruktur. Det giver mulighed for objektiv og kvantitativ evaluering af knoglekvalitet, hvorfor det bredt betragtes som guldstandardmetoden til vurdering af knoglekvalitet. Imidlertid forbliver histomorfometri uundværlig, da den tilbyder afgørende parametre på celleniveau, der bygger bro mellem todimensionelle (2D) og 3D-vurderinger af knogleprøver. Hvad angår de histologiske teknikker, valgte vi at afkalke knoglevævet og derefter udføre traditionel paraffinindlejring. Sammenfattende kan kombinationen af disse to metoder give mere omfattende og præcise oplysninger om knoglemikrostruktur.

Introduction

Osteoporose er en udbredt metabolisk knoglesygdom, især blandt ældre, og er forbundet med en øget risiko for skrøbelighedsfrakturer. Da osteoporose bliver mere almindelig i Kina1, vil der være en stigende efterspørgsel efter at studere knoglestrukturerne hos små dyr 2,3. De tidligere metoder til måling af knogletab er afhængige af resultaterne af todimensionel røntgenabsorptiometri med dobbelt energi. Dette fanger imidlertid ikke ændringerne i den arkitektoniske mikrostruktur af den trabekulære knogle, hvilket er en nøglefaktor for skeletstyrke4. Mikrostrukturen af knogle påvirker dens styrke, stivhed og brudmodstand. Ved at sammenligne knoglemikroarkitektur i normale og patologiske tilstande kan ændringer i knoglevævsmorfologi, struktur og funktion forårsaget af osteoporose identificeres. Disse oplysninger bidrager til forståelsen af udviklingen af osteoporose og dens tilknytning til andre sygdomme.

Mikrocomputertomografi (Micro-CT) billeddannelse er for nylig blevet en populær teknik til knoglemorfologivurdering, hvor den kan give nøjagtige og omfattende data om knoglestruktur og densitetsparametre såsom knoglevolumenfraktion, tykkelse og adskillelse 5,6. Samtidig kan Micro-CT-resultaterne påvirkes af analysesoftwaren7. Forskellige metoder til billedindsamling, evaluering og rapportering anvendes af forskellige kommercielle Micro-CT-systemer. Denne inkonsekvens gør det vanskeligt at sammenligne og fortolke de resultater, der rapporteres af forskellige undersøgelser5. Det kan heller ikke i øjeblikket erstatte knoglehistomorfometri ved at give forskere information om parametre på celleniveau i skeletsystemet8. I mellemtiden tillader histologiske teknikker direkte observation og måling af knoglens mikroskopiske morfologi. Hæmatoxylin og eosin (HE) farvning er en almindelig farvningsteknik, der anvendes i histologi til at visualisere den generelle struktur af celler og væv. Det bruges til at identificere tilstedeværelsen af knoglevæv og dets mikroarkitektur.

Denne artikel bruger Micro-CT kombineret med vævsskæringsteknik (Hematoxylin-Eosin [HE] farvning) til at indsamle knoglevævsbilleder og udføre kvantitativ analyse af trabekulær knogle for at evaluere ændringerne i knoglemikrostruktur i en osteoporose musemodel.

Protocol

Dyreprotokollen er godkendt af Animal Ethical Committee ved Chengdu University of Traditional Chinese Medicine (rekordnummer: 2020-34). Hunmus C57BL/6J (12 uger gamle, n = 14) blev tilfældigt opdelt i to grupper, en falsk gruppe (Sham-gruppe, n = 7) og en modelgruppe (OVX-gruppe, n = 7). Dyrene blev købt hos en kommerciel leverandør (se Materialetabel). Alle mus blev holdt i individuelle bure ved 22-26 °C med 45%-55% fugtighed, fik lov til at tilpasse sig deres nye miljø i 1 uge og gav fri adgang ti…

Representative Results

Mikro-CT-analyseVi målte de trabekulære mikroarkitektoniske parametre i mus fra begge grupper og rapporterede deres middelværdier og SD’er i tabel 1. Fordelingen af nogle parametre (dvs. forholdet mellem knoglevolumen og totalt vævsvolumen, trabekulær tykkelse, trabekulær adskillelse) inden for hver gruppe er illustreret i figur 3. Disse resultater indikerer signifikante …

Discussion

Osteoporose kan føre til hyppige brud, som er dyre, kan forårsage smerte, handicap eller endda død og alvorligt påvirke patienternes livskvalitet20. I årenes løb er ovariektomimodellen blevet anerkendt som en af standardmetoderne til undersøgelse af osteoporose21. Den mest almindelige prækliniske dyremodel for osteoporose er ovariectomized (OVX) rotte. På trods af dette er størstedelen af forskningen i mekanismerne for knoglelidelser, herunder osteoporose, blevet …

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbejde blev støttet af Sichuan Provincial Administration of Traditional Chinese Medicine (2021YJ0175) og Graduate Research Innovation Project fra School of Clinical Medicine (LCYJSKT2023-11), Chengdu University of Traditional Chinese Medicine.

Materials

4% Paraformaldehyde Biosharp BL539A
Adobe Photoshop Adobe Inc.
Ammonia Solution Chengdu Kolon Chemical Co., Ltd 2021070101
Analyze 12.0 AnalyzeDirect, Inc
Anatomical Forceps Jinzhong surgical instrument Co., Ltd J3C030
Anhydrous Ethanol Chengdu Kolon Chemical Co., Ltd 2022070501
Automatic Dyeing Machine Thermo scientific Varistain™ Gemini ES
Bone Microarchitecture Analysis Add-on AnalyzeDirect, Inc
C57BL/6J mice SPF (Beijing) Biotechnology Co., Ltd.
Carrier Slides Nantong Mei Wei De Experimental Equipment Co., Ltd 220518001
Coverslips Nantong Mei Wei De Experimental Equipment Co. 220518001
Decalcification Solution Wuhan Xavier Biotechnology Co., Ltd CR2203047
Delicate Scissors Jinzhong surgical instrument Co., Ltd ZJA010
Embedding box marking machine Thermo scientific  PrintMate AS
Embedding Machine Wuhan Junjie Electronics Co., Ltd JB-P5
Fiji: ImageJ National Institutes of Health, USA
Film Sealer Thermo scientific Autostainer 360
Freezing Table Wuhan Junjie Electronics Co., Ltd JB-L5
H&E Staining Kit Leagene DH0020
Hydrochloric Acid Solution Sichuan Xilong Science Co., Ltd 210608
ImageJ2 Plugin BoneJ 7.0.16
Medical Gauze Shandong Ang Yang Medical Technology Co.
Mersilk 3-0 Silk Braided Non-Absorbable Sutures Ethicon, Inc. SA84G
Needle Holder Jinzhong surgical instrument Co., Ltd J32010
Neutral Balsam Sinopharm Group Chemical Reagent Co., Ltd 10004160
Oven Shanghai Yiheng Scientific Instruments Co., Ltd DHG-9240A
PANNORAMIC Digital Slide Scanners 3DHISTECH Ltd.  PANNORAMIC DESK/MIDI/250/1000
PBS buffer Biosharp G4202
Povidone-iodine solution 5% Chengdu Yongan Pharmaceutical Co., Ltd
Quantum GX2 microCT Imaging System PerkinElmer, Inc.
Rotary Microtome Thermo scientific HM325
Scalpel Quanzhou Excellence Medical Co., Ltd 20170022
Scan & Browse Software 3DHISTECH Ltd.  CaseViewer2.4
Single-Use Sterile Rubber Surgical Gloves Guangdong Huitong Latex Products Group Co., Ltd 22B141EO
Sodium Chloride Solution 0.9% Sichuan Kelun Pharmaceutical Co., Ltd
Sterile Hypodermic Syringes for Single Use Shandong Weigao Group Medical Polymer Products  Co., Ltd
Sterile Medical Suture Needles Shanghai Pudong Jinhuan Medical Products Co., Ltd.  PW8068
Tissue Processor Thermo scientific STP420 ES
Tissue Spreading and Baking Machine Wuhan Junjie Electronics Co., Ltd JK-6
Tribromoethanol Nanjing Aibei Biotechnology Co., Ltd M2920
Wax Trimmer Wuhan Junjie Electronics Co., Ltd JXL-818
Xylene Chengdu Kolon Chemical Co., Ltd 2022051901

Referências

  1. Wang, J., et al. The prevalence of osteoporosis in China, a community based cohort study of osteoporosis. Frontiers in Public Health. 11, 1084005 (2023).
  2. Stein, M., et al. Why animal experiments are still indispensable in bone research: A statement by the European Calcified Tissue Society. Journal of Bone and Mineral Research. 38 (8), 1045-1061 (2023).
  3. Kerschan-Schindl, K., Papageorgiou, M., Föger-Samwald, U., Butylina, M., Weber, M., Pietschmann, P. Assessment of bone microstructure by micro CT in C57BL/6J mice for sex-specific differentiation. International Journal of Molecular Sciences. 23 (23), 14585 (2022).
  4. Fonseca, H., Moreira-Gonçalves, D., Coriolano, H. J. A., Duarte, J. A. Bone quality: the determinants of bone strength and fragility. Sports Medicine. 44, 37-53 (2014).
  5. Bouxsein, M. L., Boyd, S. K., Christiansen, B. A., Guldberg, R. E., Jepsen, K. J., Müller, R. Guidelines for assessment of bone microstructure in rodents using micro-computed tomography. Journal of Bone and Mineral Research. 25 (7), 1468-1486 (2010).
  6. Akhter, M. P., Recker, R. R. High resolution imaging in bone tissue research-review. Bone. 143, 115620 (2021).
  7. Mys, K., et al. Quantification of 3D microstructural parameters of trabecular bone is affected by the analysis software. Bone. 142, 115653 (2021).
  8. Chavassieux, P., Chapurlat, R. Interest of bone histomorphometry in bone pathophysiology investigation: Foundation, present, and future. Frontiers in Endocrinology. 13, 907914 (2022).
  9. Komori, T. Animal models for osteoporosis. European Journal of Pharmacology. 759, 287-294 (2015).
  10. Zhu, S., et al. Ovariectomy-induced bone loss in TNFα and IL6 gene knockout mice is regulated by different mechanisms. Journal of Molecular Endocrinology. 60 (3), 185-198 (2018).
  11. Baum, T., et al. Osteoporosis imaging: effects of bone preservation on MDCT-based trabecular bone microstructure parameters and finite element models. BMC Medical Imaging. 15, 22 (2015).
  12. Nazarian, A., Hermannsson, B. J., Muller, J., Zurakowski, D., Snyder, B. D. Effects of tissue preservation on murine bone mechanical properties. Journal of Biomechanics. 42 (1), 82-86 (2009).
  13. Martín-Badosa, E., Amblard, D., Nuzzo, S., Elmoutaouakkil, A., Vico, L., Peyrin, F. Excised bone structures in mice: imaging at three-dimensional synchrotron radiation micro CT. Radiology. 229 (3), 921-928 (2003).
  14. Egan, K. P., Brennan, T. A., Pignolo, R. J. Bone histomorphometry using free and commonly available software. Histopathology. 61 (6), 1168-1173 (2012).
  15. Brandi, M. L. Microarchitecture, the key to bone quality. Rheumatology. 48 (suppl_4), iv3-iv8 (2009).
  16. Schindelin, J., et al. Fiji: an open-source platform for biological-image analysis. Nature Methods. 9 (7), 676-682 (2012).
  17. Domander, R., Felder, A. A., Doube, M. BoneJ2-refactoring established research software. Wellcome Open Research. 6, 37 (2021).
  18. Parfitt, A. M., et al. Bone histomorphometry: standardization of nomenclature, symbols, and units: report of the ASBMR Histomorphometry Nomenclature Committee. Journal of Bone and Mineral Research. 2 (6), 595-610 (1987).
  19. Kazama, J. J., Koda, R., Yamamoto, S., Narita, I., Gejyo, F., Tokumoto, A. Cancellous bone volume is an indicator for trabecular bone connectivity in dialysis patients. Clinical Journal of the American Society of Nephrology: CJASN. 5 (2), 292-298 (2010).
  20. Watts, N. B. Postmenopausal osteoporosis: A clinical review. Journal of Women’s Health. 27 (9), 1093-1096 (2018).
  21. Thompson, D. D., Simmons, H. A., Pirie, C. M., Ke, H. Z. FDA Guidelines and animal models for osteoporosis. Bone. 17 (4), S125-S133 (1995).
  22. Iwaniec, U. T., Yuan, D., Power, R. A., Wronski, T. J. Strain-dependent variations in the response of cancellous bone to ovariectomy in mice. Journal of Bone and Mineral Research. 21 (7), 1068-1074 (2006).
  23. Ferguson, V. L., Ayers, R. A., Bateman, T. A., Simske, S. J. Bone development and age-related bone loss in male C57BL/6J mice. Bone. 33 (3), 387-398 (2003).
  24. Glatt, V., Canalis, E., Stadmeyer, L., Bouxsein, M. L. Age-related changes in trabecular architecture differ in female and male C57BL/6J mice. Journal of Bone and Mineral Research. 22 (8), 1197-1207 (2007).
  25. Seeman, E. The structural and biomechanical basis of the gain and loss of bone strength in women and men. Endocrinology and Metabolism Clinics. 32 (1), 25-38 (2003).
  26. Ticha, P., et al. A novel cryo-embedding method for in-depth analysis of craniofacial mini pig bone specimens. Scientific Reports. 10 (1), 19510 (2020).
  27. Genant, H. K., Engelke, K., Prevrhal, S. Advanced CT bone imaging in osteoporosis. Rheumatology. 47 (suppl_4), iv9-iv16 (2008).
  28. Zaw Thin, M., Moore, C., Snoeks, T., Kalber, T., Downward, J., Behrens, A. Micro-CT acquisition and image processing to track and characterize pulmonary nodules in mice. Nature Protocols. 18 (3), 990-1015 (2023).
check_url/pt/65880?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Li, J., Hu, Y., You, H., Li, R., Ran, Q., Ouyang, T., Huang, Y. Trabecular Bone Microarchitecture Evaluation in an Osteoporosis Mouse Model. J. Vis. Exp. (199), e65880, doi:10.3791/65880 (2023).

View Video