Summary

혼성화(hybridization) 연쇄반응 RNA Whole-Mount Fluorescence In situ Hybridization of Chemosensory Genes in Mosquito Olfactory Appendages

Published: November 17, 2023
doi:

Summary

이 기사에서는 모기 안테나와 상악 팔프에서 화학 감각 수용체 유전자의 공간 및 세포 분해능에 대한 통찰력을 밝히기 위해 혼성화 연쇄 반응 RNA 전체 장착 형광 in situ 교잡(HCR, RNA WM-FISH)을 수행하는 데 필요한 방법과 시약을 설명합니다.

Abstract

모기는 치명적인 질병의 효과적인 매개체이며 후각 부속기에서 발현되는 화학 감각 수용체를 사용하여 화학적 환경을 탐색할 수 있습니다. 화학감각 수용체가 말초 후각 부속기에서 어떻게 공간적으로 조직되어 있는지 이해하면 냄새가 모기 후각계에서 어떻게 암호화되는지에 대한 통찰력을 제공하고 모기 매개 질병의 확산을 막는 새로운 방법을 알려줄 수 있습니다. 3세대 혼성화 연쇄 반응 RNA 전체 장착 형광 in situ 교잡화(HCR, RNA, WM-FISH)의 출현으로 여러 화학 감각 유전자의 공간 매핑 및 동시 발현 프로파일링이 가능합니다. 여기에서는 Anopheles 모기 안테나와 상악 손바닥에서 HCR RNA WM-FISH를 수행하기 위한 단계적 접근 방식을 설명합니다. 우리는 이온성 후각 수용체의 발현 프로파일을 조사하여 이 기술의 민감도를 조사했습니다. 설명된 HCR WM-FISH 기법이 RNA 프로브를 스펙트럼적으로 구별되는 3개의 형광단에 테더링하여 다중 연구에 적합한지 물었습니다. 그 결과 HCR RNA WM-FISH가 더듬이와 상악 팔 후각 부속기에서 여러 화학 감각 유전자를 동시에 검출할 수 있도록 매우 민감하다는 증거가 제공되었습니다. 추가 조사를 통해 이중 및 삼중 RNA 표적의 동시 발현 프로파일링에 대한 HCR WM-FISH의 적합성이 입증되었습니다. 이 기술은 변형과 함께 적용될 때 다른 곤충 종의 후각 조직이나 다른 부속지의 관심 유전자를 국소화하는 데 적응할 수 있습니다.

Introduction

Anopheles gambiae와 같은 모기 매개체는 복잡한 화학 세계에서 번성하기 위해 말초 후각 부속지에서 발현되는 풍부한 화학 감각 유전자 레퍼토리에 의존하며, 인간 숙주에서 나오는 행동 관련 냄새를 식별하고, 꿀 공급원을 감지하고, 산란 부위를 찾습니다1. 모기 안테나와 상악 손바닥에는 이러한 후각 부속 기관에서 냄새 감지를 유도하는 화학 감각 유전자가 풍부합니다. 리간드 개폐 이온 채널의 세 가지 주요 부류는 모기의 후각 부속지에서 냄새 감지를 유도합니다: 의무 냄새 수용체 공동 수용체(Orco)와 함께 기능하는 냄새 수용체(OR); 하나 이상의 IR 코어 수용체(IR8a, IR25a 및 IR76b)와 상호 작용하는 이온성 수용체(IR); 화학 감각 미각 수용체 (GRs), 이산화탄소 (CO2)를 검출하기 위하여 3개의 단백질의 복합물로 기능하는1,2.

RNA 형광 in situ hybridization은 내인성 mRNA3의 발현을 검출하기 위한 강력한 도구입니다. 일반적으로 이 방법은 표적 mRNA에 상보적인 염기서열을 가진 형광단 태깅 단일 가닥 핵산 프로브를 사용합니다. 형광 RNA 프로브를 표적 RNA에 결합하면 관심 전사체를 발현하는 세포를 식별할 수 있습니다. 최근의 발전으로 이제 전체 마운트 모기 조직에서 전사체를 검출할 수 있게 되었다 4,5. 1세대 하이브리드화 연쇄 반응(HCR) 기술은 RNA 기반 HCR 증폭기를 사용했습니다. 이것은 HCR 증폭기 6,7에 대해 엔지니어링된 DNA를 대신 사용하는 2세대 방법에서 개선되었습니다. 이 업그레이드로 신호가 10배 증가하고, 생산 비용이 크게 절감되었으며, 시약의 내구성이 크게 향상되었습니다 6,7.

프로토콜에서는 모든 유전자 8,9의 공간적 국소화 및 발현을 검출하기 위해 설계된 3세대 HCR 전체 장착 RNA 형광 in situ hybridization(HCR RNA WM-FISH) 방법의 활용에 대해 설명합니다. 이 2단계 방법은 먼저 관심 mRNA에 특이적이지만 개시제 인식 서열도 포함하는 핵산 프로브를 사용합니다. 두 번째 단계에서는 형광 신호를 증폭하기 위해 개시제 시퀀스에 결합하는 형광단 표지 헤어핀을 사용합니다(그림 1). 이 방법은 또한 두 개 이상의 RNA 프로브를 멀티플렉싱하고 프로브 신호를 증폭하여 RNA 검출 및 정량화를 용이하게 한다8. 후각 부속기에서 발현되는 화학 감각 유전자의 전사체 풍부도 및 RNA 국소화 패턴을 시각화하면 화학 감각 유전자 기능 및 냄새 코딩에 대한 첫 번째 통찰력을 얻을 수 있습니다.

Protocol

1. 자료의 고려 사항 및 준비 조직의 전체 마운트 또는 극저온 절편이 적절한지 결정합니다. 이 프로토콜은 냉동 절개 없이 Anopheles 모기 안테나와 상악 구개에서 RNA의 전체 마운트 in situ 이미징에 최적화되어 있습니다. 샘플이 5mm보다 두꺼우면 프로브 침투를 위해 극저온 절편을 사용하는 것이 좋습니다. 관심 유전자를 식별하고 적절한 데이터베이스에서 ?…

Representative Results

Anopheles 안테나에서 화학감각 유전자의 강력한 검출모기 후각 조직에서 화학감각 수용체의 발현을 감지하기 위해 HCR FISH 방법(그림 1)의 민감도를 조사했습니다. 암컷 아노펠레스(Anopheles) 모기 안테나에서 이전에 보고된 RNA 전사체 데이터에 따라 다양한 IR을 표적으로 하는 프로브를 생성했습니다. 4개의 독립적인 더듬이 전사체 연구의 평균 전사…

Discussion

3세대 혼성화 연쇄 반응(hybridization chain reaction, HCR)은 여러 RNA 표적을 시각화할 수 있는 감도와 견고성으로 주목할 만하다8. HCR WM-FISH는 초파리, 닭, 생쥐 및 제브라피쉬의 배아뿐만 아니라 선충류 및 제브라피시의 유충에도 성공적으로 사용되었습니다 10,16,17. 모기 더듬이와 상악 손바닥은 일반적으로 ?…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Aedes aegypti 후각 부속기에 대한 현장 교잡 프로토콜을 공유해 주신 Margo Herre와 Leslie Vosshall 연구실에 감사드립니다. 이 연구는 미국 국립보건원(National Institutes of Health)의 C.J.P.(NIAID R01Al137078), J.I.R.의 HHMI Hanna Gray 펠로우십, J.I.R.의 Johns Hopkins Postdoctoral Accelerator Award, J.I.R.의 Johns Hopkins Malaria Research Institute Postdoctoral Fellowship의 지원을 받았습니다. 존스 홉킨스 말라리아 연구소(Johns Hopkins Malaria Research Institute)와 블룸버그 자선재단(Bloomberg Philanthropies)의 지원에 감사드립니다.

Materials

Amplification buffer Molecular Instruments Molecular Instruments, Inc. | In Situ Hybridization + Immunofluorescence 50 mL
Calcium Chloride (CaCl2) 1M  Sigma-Aldrich  21115-100ML
Chitinase Sigma-Aldrich C6137-50UN
Chymotrypsin Sigma-Aldrich CHY5S-10VL 
Dimethyl sulfoxide (DMSO) Sigma-Aldrich 472301
Eppendorf tube VWR 20901-551 1.5 mL
Forceps Dumont 11251 Number 5
Gel loading tip Costar 4853 1-200 µL tip
Hairpins  Molecular Instruments Molecular Instruments, Inc. | In Situ Hybridization + Immunofluorescence h1 and h2 initiator splits
HEPES (1M) Sigma-Aldrich H0887
IR25a probe Molecular Instruments Probe Set ID: PRK149  AGAP010272
IR41t.1 probe Molecular Instruments  Probe Set ID: PRK978 AGAP004432
IR64a probe Molecular Instruments Probe Set ID: PRK700  AGAP004923
IR75d probe Molecular Instruments Probe Set ID: PRK976 AGAP004969
IR76b probe Molecular Instruments Probe Set ID: PRI998 AGAP011968
IR7t probe Molecular Instruments Probe Set ID: PRL355 AGAP002763
IR8a probe Molecular Instruments Probe Set ID: PRK150 AGAP010411
LoBind Tubes VWR 80077-236 0.5 mL DNA/RNA LoBind Tubes
Magnessium Chloride (MgCl2) 1M Thermo Fisher AM9530G
Methanol Fisher  A412-500
Nuclease-free water Thermo Fisher 43-879-36
Nutator Denville Scientific Model 135 3-D Mini rocker
Orco probe Molecular Instruments Probe set ID PRD954 AGAP002560
Paraformaldehyde (20% ) Electron Microscopy Services  15713-S
Phosphate Buffered Saline (10X PBS) Thermo Fisher AM9625
Probe hybridization buffer Molecular Instruments https://www.molecularinstruments.com/ 50 mL
Probe wash buffer Molecular Instruments Molecular Instruments, Inc. | In Situ Hybridization + Immunofluorescence 100 mL
Proteinase-K Thermo Fisher AM2548
Saline-Sodium Citrate (SSC) 20x  Thermo Fisher 15-557-044
SlowFade Diamond Thermo Fisher  S36972 mounting solution
Sodium Chloride (NaCl) 5M Invitrogen AM9760G
Triton X-100  (10%) Sigma-Aldrich  93443
Tween-20 (10% ) Teknova T0027
Watch glass Carolina 742300  1 5/8" square; transparent

Referências

  1. Konopka, J. K., et al. Olfaction in Anopheles mosquitoes. Chem Senses. 46, (2021).
  2. Raji, J. I., Potter, C. J. Chemosensory ionotropic receptors in human host-seeking mosquitoes. Curr Opin Insect Sci. 54, 100967 (2022).
  3. Young, A. P., Jackson, D. J., Wyeth, R. C. A technical review and guide to RNA fluorescence in situ hybridization. PeerJ. 8, e8806 (2020).
  4. Herre, M., et al. Non-canonical odor coding in the mosquito. Cell. 185 (17), 3104-3123.e28 (2022).
  5. Raji, J. I., Konopka, J. K., Potter, C. J. A spatial map of antennal-expressed ionotropic receptors in the malaria mosquito. Cell Rep. 42 (2), 112101 (2023).
  6. Choi, H. M. T., et al. Programmable in situ amplification for multiplexed imaging of mRNA expression. Nat Biotechnol. 28 (11), 1208-1212 (2010).
  7. Choi, H. M. T., Beck, V. A., Pierce, N. A. Next-generation in situ hybridization chain reaction: higher gain, lower cost, greater durability. ACS Nano. 8 (5), 4284-4294 (2014).
  8. Choi, H. M. T., et al. Third-generation in situ hybridization chain reaction: multiplexed, quantitative, sensitive, versatile, robust. Development. 145 (12), dev165753 (2018).
  9. Schwarzkopf, M., et al. Hybridization chain reaction enables a unified approach to multiplexed, quantitative, high-resolution immunohistochemistry and in situ hybridization. Development. 148 (22), dev199847 (2021).
  10. Choi, H. M. T., et al. Mapping a multiplexed zoo of mRNA expression. Development. 143 (19), 3632-3637 (2016).
  11. Pitts, R. J., Derryberry, S. L., Zhang, Z., Zwiebel, L. J. Variant ionotropic receptors in the malaria vector mosquito Anopheles gambiae tuned to amines and carboxylic acids. Sci Rep. 7, 40297 (2017).
  12. Rinker, D. C., Zhou, X., Pitts, R. J., Rokas, A., Zwiebel, L. J. Antennal transcriptome profiles of anopheline mosquitoes reveal human host olfactory specialization in Anopheles gambiae. BMC Genomics. 14, 749 (2013).
  13. Maguire, S. E., Afify, A., Goff, L. A., Potter, C. J. Odorant-receptor-mediated regulation of chemosensory gene expression in the malaria mosquito Anopheles gambiae. Cell Rep. 38 (10), 110494 (2022).
  14. Athrey, G., et al. Chemosensory gene expression in olfactory organs of the anthropophilic Anopheles coluzzii and zoophilic Anopheles quadriannulatus. BMC Genomics. 18 (1), 751 (2017).
  15. Task, D., et al. Chemoreceptor co-expression in Drosophila melanogaster olfactory neurons. eLife. 11, e72599 (2022).
  16. Shah, S., et al. Single-molecule RNA detection at depth by hybridization chain reaction and tissue hydrogel embedding and clearing. Development. 143 (15), 2862-2867 (2016).
  17. Trivedi, V., Choi, H. M. T., Fraser, S. E., Pierce, N. A. Multidimensional quantitative analysis of mRNA expression within intact vertebrate embryos. Development. 145 (1), dev156869 (2018).
  18. Herre, M., Greppi, C. RNA in situ hybridization and immunohistochemistry to visualize gene expression in peripheral chemosensory tissues of mosquitoes. Cold Spring Harb Protoc. 2023 (1), 48-54 (2023).
  19. Marx, V. Method of the Year: spatially resolved transcriptomics. Nat Methods. 18 (1), 9-14 (2021).
check_url/pt/65933?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Raji, J. I., Potter, C. J. Hybridization Chain Reaction RNA Whole-Mount Fluorescence In situ Hybridization of Chemosensory Genes in Mosquito Olfactory Appendages. J. Vis. Exp. (201), e65933, doi:10.3791/65933 (2023).

View Video