Summary

Bærbar papirbasert immunoassay kombinert med smarttelefonapplikasjon for kolorimetrisk og kvantitativ påvisning av Dengue NS1-antigen

Published: January 26, 2024
doi:

Summary

For å adressere presserende dengue-diagnostiske behov, introduserer vi her en smarttelefonapp-integrert Dengue NS1 papirbasert analytisk enhet (DEN-NS1-PAD) for kvantifisering av Dengue NS1-antigenkonsentrasjon i kliniske serum / blodprøver. Denne innovasjonen forbedrer dengue-ledelsen ved å hjelpe klinisk beslutningstaking i ulike helsetjenester, selv ressursbegrensede.

Abstract

Dengue virus (DENV) infeksjon, som overføres av Aedes mygg, er et stort folkehelseproblem i tropiske og subtropiske land. Med en årlig forekomst på ca. 10 millioner tilfeller og 20 000-25 000 dødsfall, spesielt blant barn, er det et presserende behov for praktiske diagnostiske verktøy. Tilstedeværelsen av dengue ikke-strukturelt protein 1 (NS1) under tidlig infeksjon har vært knyttet til cytokinfrigivelse, vaskulær lekkasje og endoteldysfunksjon, noe som gjør det til en potensiell markør for alvorlig dengue.

Papirbaserte immunoassays som laterale strømningsanalyser (LFA) og mikrofluidiske papirbaserte analytiske enheter (PAD) har fått popularitet som diagnostiske tester på grunn av deres enkelhet, hurtighet, billighet, spesifisitet og enkle tolkning. Imidlertid er konvensjonelle papirbaserte immunoassays for dengue NS1-deteksjon vanligvis avhengige av visuell inspeksjon, noe som bare gir kvalitative resultater. For å løse denne begrensningen og forbedre følsomheten, foreslo vi en svært bærbar NS1 dengue-deteksjonsanalyse på en papirbasert analytisk enhet (PAD), nemlig DEN-NS1-PAD, som integrerer en smarttelefonapplikasjon som en kolorimetrisk og kvantitativ leser. Utviklingssystemet muliggjør direkte kvantifisering av NS1-konsentrasjoner i kliniske prøver.

Serum- og blodprøver tatt fra pasienter ble brukt til å demonstrere systemets prototypeytelse. Resultatene ble oppnådd umiddelbart og kan brukes til klinisk vurdering, både i velutstyrte helseinstitusjoner og ressursbegrensede innstillinger. Denne innovative kombinasjonen av en papirbasert immunoassay med en smarttelefonapplikasjon gir en lovende tilnærming for forbedret deteksjon og kvantifisering av dengue NS1-antigen. Ved å øke følsomheten utover evnen til det blotte øye, har dette systemet stort potensial for å forbedre klinisk beslutningstaking i dengue-ledelse, spesielt i fjerntliggende eller underbetjente områder.

Introduction

Denguevirus (DENV) infeksjon er den raskest spredende myggbårne sykdommen1, og mer enn 390 millioner mennesker er smittet med 96 millioner symptomatiske infeksjoner, 2 millioner tilfeller av alvorlig sykdom, og mer enn 25.000 dødsfall per år forekommer i verden 1,2. Ifølge Verdens helseorganisasjon (WHO) er anslagsvis 3,9 milliarder mennesker i fare for dengue; ~ 70% bor i Asia Pacific-landene og hovedsakelig i Sørøst-Asia3. I 2019 var antall dengue-tilfeller rapportert til WHO 4,2 millioner, og Thailand bidro med minst 136 000 dengue-tilfeller og 144 dødsfall fra dengueinfeksjon4. Dengue-utbruddet i Thailand skjer i regntiden, fra april til desember, i både urbane og landlige områder, spesielt i det nordøstlige området.

DENV-infeksjoner har forskjellige kliniske manifestasjoner som spenner fra subkliniske symptomer, mild denguefeber (DF) til alvorlig dengue hemoragisk feber (DHF). Hovedkarakteristikken for alvorlig DHF-tilstand er økt vaskulær permeabilitet etterfulgt av sjokk og organdysfunksjon1. Å forstå den molekylære banen som kan forårsake vaskulær lekkasje er svært viktig for å utvikle effektive dengue-behandlinger. Dengue ikke-strukturelt protein 1 (NS1) er et utskilt glykoprotein under tidlig virusinfeksjon 5,6, og det fungerer som en kofaktor for viral RNA-replikasjon7. NS1 kan utløse cytokinfrigjøring og bidra til vaskulær lekkasje ved å binde seg til tolllignende reseptor 4 (TLR4) og endotelial glykokalyks 8,9. In vitro-forskning har vist at NS1 interagerer med endotelceller og induserer apoptose. Denne tilstanden kan bidra til endoteldysfunksjon og vaskulær lekkasje10. NS1-antigennivåer, korrelert med serum interleukin (IL)-10-nivåer, økte signifikant hos pasienter med alvorlig klinisk sykdom11. Dengue NS1 bidrar også til sykdomspatogenese ved å indusere IL-10 og undertrykke DENV-spesifikke T-celleresponser12,13. I tillegg var dengue NS1-protein relatert til alvorlig klinisk sykdom, og konsentrasjonen av NS1 > 600 ng ml-1 i de første 3 dagene av sykdommen var assosiert med utviklingen av DHF14.

Persistensen av dengue NS1-antigenet hos pasienter med DHF kan brukes som markør for alvorlig dengue6. Det finnes flere metoder for å påvise NS1 i kliniske prøver som enzymbundet immunosorbentanalyse (ELISA) og hurtigtest15. Gullstandarden for måling av konsentrasjonen av NS1-proteiner i en klinisk setting er ELISA-metoden. ELISA-metoden er imidlertid kostbar og krever faglært personell og laboratoriefasiliteter16. Derfor pågår utviklingen av teknologi for påvisning og kvantifisering av NS1-proteiner i pasientnær test (POCT) fortsatt. I det siste tiåret har papirbaserte immunoassays som laterale strømningsanalyser (LFA) og mikrofluidiske papirbaserte analytiske enheter (μPAD) blitt populære som diagnostiske tester på grunn av deres enkelhet, hurtighet, billighet og spesifisitet 17,18,19. I en papirbasert immunoassay har flere etiketter blitt brukt til å generere signaler, for eksempel gull nanopartikler (AuNPs) 20, magnetiske nanopartikler21,22, kvanteprikker23 og fluorescensmaterialer 24,25. AuNP er de vanligste etikettene som brukes i papirbaserte immunoassays på grunn av deres billige produksjonskostnader, enkel produksjon, stabilitet og enkel avlesning. For tiden brukes laterale strømningsanalyser (LFAer) for dengue NS1 i klinisk setting26,27. Imidlertid bruker konvensjonell LFA-etikettdeteksjon vanligvis det blotte øye og gir bare kvalitative resultater.

I løpet av det siste tiåret har mer enn 5 milliarder smarttelefoner blitt mye brukt globalt, og det er potensial for å utvikle bærbar deteksjon28,29. Smarttelefoner har multifunksjonelle kapasiteter som innebygde fysiske sensorer, flerkjerneprosessorer, digitale kameraer, USB-porter, lydporter, trådløs og applikasjonsprogramvare, noe som gjør dem egnet for bruk i forskjellige biosensorplattformer30. I tillegg tillater trådløs teknologi at data sendes raskt og kan brukes til sanntids- og overvåking på stedet31. Mudanyali et al. kombinerte papirbasert immunoassay og smarttelefoner for å utvikle en bærbar, utstyrsfri, rask, billig og brukervennlig POCT-plattform for malaria, tuberkulose og HIV32. Ling et al. rapporterte en lateral strømningsanalyse kombinert med et smarttelefonkamera for å oppdage alkalisk fosfataseaktivitet i melk kvantitativt33. Hou et al. utviklet også et smarttelefonbasert, dual-modalitetsbildesystem for kvantitative signaler fra farge eller fluorescens i lateral flow assay34. I tillegg kan bruk av smarttelefonen som en kolorimetrisk og kvantitativ leser forbedre følsomheten mens det blotte øye ikke trygt kan rapportere tilstedeværelsen av målet35.

DEN-NS1-PAD 36,37,38 (heretter referert til som enheten) presenterer et gjennombrudd innen denguediagnostikk, og tilbyr en bærbar og effektiv løsning. Ved hjelp av vokstrykt mikrofluidisk papirbasert teknologi kvantifiserer denne enheten NS1 med høy følsomhet og spesifisitet gjennom bildebehandling. For å forbedre nytten ytterligere har vi utviklet en brukervennlig smarttelefonapp for kolorimetrisk og kvantitativ lesing. Klinisk validering ved hjelp av pasientprøver fra thailandske sykehus understreker den umiddelbare effekten på pasientvurdering i sanntid. Vår innovasjon markerer et sentralt fremskritt innen strømlinjeformet, point-of-care-dengue-ledelse, og lover å revolusjonere diagnostikk i ressursbegrensede helselandskap.

Protocol

Den etiske komiteen i Institutional Review Board, Royal Thai Army Medical Department, Phramongkutklao Hospital, Bangkok, Thailand (IRBRTA 1218/2562) ga godkjenning. I gjennomføringen av denne studien fulgte vi alle nødvendige etiske forskrifter. 1. Enhetsfabrikasjon av den papirbaserte Immunoassay MERK: Den papirbaserte immunoassay-enheten ble produsert etter tidligere etablerte metoder36,37…

Representative Results

Valg av fabrikasjonsmetode er avgjørende for å sikre reproduserbare analyseytelser i papirbaserte immunoassay-enheter. I vår studie utforsket vi ulike produksjonsprosesser og materialer i sammenheng med å demonstrere en papirbasert immunoassay. Vår valgte metode benytter et voksutskriftssystem for å skape hydrofobe barrierer i papirbaserte mikrofluidiske enheter. Denne tilnærmingen skiller seg ut på grunn av sin enkelhet, hastighet og konsistente resultater. Merk at det gir fordelen av å unngå bruk av fotoresis…

Discussion

En av de viktige designparametrene for et smarttelefonbasert lesersystem er muligheten til å gi reproduserbar bildebehandling av prøver. I denne studien, for enkelhet og bekvemmelighet, ble bildene tatt fra tre forskjellige smarttelefonmerker med 12-13 MP kameraer uten å bruke en bildeboks eller tilbehør. Varierende forhold for bildeopptak, for eksempel kameraets oppløsning, tid for bildeopptak, lysforhold og miljø, kan påvirke fargeintensiteten til test- og kontrollpunktene på enheten. Virkningen av forskjellige…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

M.H.P. takker stipendforskningsfondet fra Universitas Islam Indonesia (UII). Forfatterne uttrykker sin takknemlighet til Mr. Nutchanon Ninyawee for hans verdifulle ekspertise og assistanse gjennom utviklingen av mobilapplikasjonen og hans bidrag til manuskriptet. Videre setter forfatterne pris på den økonomiske støtten fra Thailand Science Research and Innovation (TSRI), Basic Research Fund: Fiscal year 2023 (prosjekt nr. FRB660073/0164) under Program Smart Healthcare of King Mongkut’s University of Technology Thonburi.

Materials

Materials
0.1 M phosphate-buffered saline (PBS, pH 7.2) 
BBS containing 0.1% Tween 20, 10% sucrose, and 1% casein   the conjugate area treatment and blocking buffer
Borate buffered saline (BBS) (25 mM sodium borate and 150 mM sodium chloride at pH 8.2) supplemented with 1% BSA  the washing buffer during the conjugation process AuNPs with the antibody
Boric acid Merck 10043-35-3
Bovine serum albumin fraction V (BSA)   PAA Lab GmbH (Germany) K41-001 
Casein Merck 9005-46-3
Chromatography paper Grade 2  GE Healthcare 3002-911 
Clear laminate film 3M (Stationery shops)
Disodium hydrogen phosphate Merck 7558-79-4
Double tape side Stationery shops
Goat anti-mouse IgG antibody  MyBiosource (USA) MBS435013
Gold nanoparticles (40 nm)   Serve Science Co., Ltd. (Thailand)
Human IgG polyclonal antibody   Merck AG711-M
Mouse dengue NS1 monoclonal antibody  MyBiosource (USA) MBS834415
Mouse dengue NS1 monoclonal antibody  MyBiosource (USA) MBS834236
NS1 serotype 2 antigens MyBiosource (USA) MBS 568697
PBS 1X containing 0.1% Tween 20 was used as t elution buffer
Plastic backing card 10×30 cm Pacific Biotech Co., Ltd. (Thailand)
Poly-L-lysine (PLL) Sigma Aldrich P4832
Potassium Chloride Merck 104936
Potassium monophosphate Merck 104877
Sodium Chloride Merck 7647-14-5
Sodium tetraborate  Sigma Aldrich 1303-96-4
Sucrose Merck 57-50-1
Tween 20 Sigma Aldrich 9005-64-5
Instruments
CytationTM 5 multimode reader BioTek
Mobile phones Huawei Y7, iPhone 11, Samsung a20
Photo scanner Epson Perfection V30
Oven Memmert
Wax printer  Xerox ColorQube 8880-PS
Software
Could AutoML Vision Object Detection documentation Google Cloud
ImageJ National Institute of Health, Bethesda, MD, USA
Inkscape 0.91 Software

Referências

  1. Cattarino, L., Rodriguez-Barraquer, I., Imai, N., Cummings, D. A. T., Ferguson, N. M. Mapping global variation in dengue transmission intensity. Science Translational Medicine. 12 (528), 1-11 (2020).
  2. World Health Organization (WHO). . Treatment, prevention and control global strategy for dengue prevention and control. , 1-34 (2012).
  3. . WHO Dengue and severe dengue Available from: https://www.who.int/news-room/fact-sheets/detail/dengue-and-severe-dengue (2020)
  4. Department of Disease Control Ministry of Health Thailand. . Weekly Disease Forecast Dengue. , (2020).
  5. Malavige, G. N., Ogg, G. S. Pathogenesis of vascular leak in dengue virus infection. Immunology. 151 (3), 261-269 (2017).
  6. Paranavitane, S. A., et al. Dengue NS1 antigen as a marker of severe clinical disease. BMC Infectious Diseases. 14 (1), 570 (2014).
  7. Muller, D. A., Young, P. R. The flavivirus NS1 protein: Molecular and structural biology, immunology, role in pathogenesis and application as a diagnostic biomarker. Antiviral Research. 98 (2), 192-208 (2013).
  8. Modhiran, N., et al. Dengue virus NS1 protein activates cells via Toll-like receptor 4 and disrupts endothelial cell monolayer integrity. Science Translational Medicine. 7 (304), 304ra102 (2015).
  9. Glasner, D. R., et al. Dengue virus NS1 cytokine-independent vascular leak is dependent on endothelial glycocalyx components. PLOS Pathogens. 13 (11), e1006673 (2017).
  10. Lin, C. -. F., et al. Antibodies from dengue patient sera cross-react with endothelial cells and induce damage. Journal of Medical Virology. 69 (1), 82-90 (2003).
  11. Adikari, T. N., et al. Dengue NS1 antigen contributes to disease severity by inducing interleukin (IL)-10 by monocytes. Clinical and Experimental Immunology. 184 (1), 90-100 (2016).
  12. Malavige, G. N., et al. Suppression of virus specific immune responses by IL-10 in acute dengue infection. PLoS Neglected Tropical Diseases. 7 (9), e2409 (2013).
  13. Malavige, G. N., et al. Serum IL-10 as a marker of severe dengue infection. BMC Infectious Diseases. 13 (1), 341 (2013).
  14. Libraty, D. H., et al. High circulating levels of the dengue virus nonstructural protein NS1 early in dengue illness correlate with the development of dengue hemorrhagic fever. The Journal of Infectious Diseases. 186 (8), 1165-1168 (2002).
  15. World Health Organization (WHO) and the Special Programme for Research and Tropical Diseases (TDR). . Dengue: guidelines for diagnosis, treatment, prevention and control — New edition. , (2009).
  16. Axelrod, T., Eltzov, E., Marks, R. S. Capture-layer lateral flow immunoassay: a new platform validated in the detection and quantification of dengue NS1. ACS Omega. 5 (18), 10433-10440 (2020).
  17. Kim, S. -. W., Cho, I. -. H., Lim, G. -. S., Park, G. -. N., Paek, S. -. H. Biochemical-immunological hybrid biosensor based on two-dimensional chromatography for on-site sepsis diagnosis. Biosensors and Bioelectronics. 98, 7-14 (2017).
  18. Fu, Q., et al. Development of a novel dual-functional lateral-flow sensor for on-site detection of small molecule analytes. Sensors and Actuators B: Chemical. 203, 683-689 (2014).
  19. Dzantiev, B. B., Byzova, N. A., Urusov, A. E., Zherdev, A. V. Immunochromatographic methods in food analysis. TrAC Trends in Analytical Chemistry. 55, 81-93 (2014).
  20. Hu, J., et al. Advances in paper-based point-of-care diagnostics. Biosensors and Bioelectronics. 54 (4), 585-597 (2014).
  21. Zhong, Y., et al. Gold nanoparticles based lateral flow immunoassay with largely amplified sensitivity for rapid melamine screening. Microchimica Acta. 183 (6), 1989-1994 (2016).
  22. Figueredo, F., Garcia, P. T., Cortón, E., Coltro, W. K. T. Enhanced analytical performance of paper microfluidic devices by using Fe 3 O 4 nanoparticles, MWCNT, and graphene oxide. ACS Applied Materials & Interfaces. 8 (1), 11-15 (2016).
  23. Bahadır, E. B., Sezgintürk, M. K. Lateral flow assays: Principles, designs and labels. TrAC – Trends in Analytical Chemistry. 82, 286-306 (2016).
  24. He, M., Liu, Z. Paper-based micro fluidic device with upconversion fluorescence assay. Analytical Chemistry. 85, 11691-11694 (2013).
  25. Derikvand, F., Yin, D. L. T., Barrett, R., Brumer, H. Cellulose-based biosensors for esterase detection. Analytical Chemistry. 88 (6), 2989-2993 (2016).
  26. Kumar, S., Bhushan, P., Krishna, V., Bhattacharya, S. Tapered lateral flow immunoassay-based point-of-care diagnostic device for ultrasensitive colorimetric detection of dengue NS1. Biomicrofluidics. 12 (3), 034104 (2018).
  27. Sinawang, P. D., Rai, V., Ionescu, R. E., Marks, R. S. Electrochemical lateral flow immunosensor for detection and quantification of dengue NS1 protein. Biosensors and Bioelectronics. 77, 400-408 (2016).
  28. Zhang, D., Liu, Q. Biosensors and bioelectronics on smartphone for portable biochemical detection. Biosensors and Bioelectronics. 75, 273-284 (2016).
  29. Preechaburana, P., Suska, A., Filippini, D. Biosensing with cell phones. Trends in Biotechnology. 32 (7), 351-355 (2014).
  30. Laksanasopin, T., et al. A smartphone dongle for diagnosis of infectious diseases at the point of care. Science Translational Medicine. 7 (273), 273re1 (2015).
  31. Kim, J., et al. Noninvasive alcohol monitoring using a wearable tattoo-based iontophoretic-biosensing system. ACS Sensors. 1 (8), 1011-1019 (2016).
  32. Mudanyali, O., et al. Integrated rapid-diagnostic-test reader platform on a cellphone. Lab on a Chip. 12 (15), 2678 (2012).
  33. Yu, L., Shi, Z., Fang, C., Zhang, Y., Liu, Y., Li, C. Disposable lateral flow-through strip for smartphone-camera to quantitatively detect alkaline phosphatase activity in milk. Biosensors and Bioelectronics. 69, 307-315 (2015).
  34. Hou, Y., et al. Smartphone-based dual-modality imaging system for quantitative detection of color or fluorescent lateral flow immunochromatographic strips. Nanoscale Research Letters. 12 (1), 291 (2017).
  35. You, D. J., Park, T. S., Yoon, J. -. Y. Cell-phone-based measurement of TSH using Mie scatter optimized lateral flow assays. Biosensors and Bioelectronics. 40 (1), 180-185 (2013).
  36. Prabowo, M. H., Chatchen, S., Rijiravanich, P. Dengue NS1 detection in pediatric serum using microfluidic paper-based analytical devices. Analytical and Bioanalytical Chemistry. 412, 2915-2925 (2020).
  37. Prabowo, M. H., et al. Clinical evaluation of a developed paper-based Dengue NS1 rapid diagnostic test for febrile illness patients. International Journal of Infectious Diseases. 107, 271-277 (2021).
  38. Prabowo, M. H., et al. Preparation and detection method for the diagnostic device of dengue NS1 detection in serum, cell medium, and buffer. Thai Patent. , (2019).
  39. Kong, T., et al. Accessory-free quantitative smartphone imaging of colorimetric paper-based assays. Lab on a Chip. 19 (11), 1991-1999 (2019).
  40. Jung, Y., Heo, Y., Lee, J. J., Deering, A., Bae, E. Smartphone-based lateral flow imaging system for detection of food-borne bacteria E. coli O157:H7. Journal of Microbiological Methods. 168, 105800 (2020).
  41. Chen, G., et al. Improved analytical performance of smartphone-based colorimetric analysis by using a power-free imaging box. Sensors and Actuators B: Chemical. 281, 253-261 (2019).
  42. Kim, H., et al. Smartphone-based low light detection for bioluminescence application. Scientific Reports. 7 (1), 40203 (2017).
  43. Kim, H., Awofeso, O., Choi, S., Jung, Y., Bae, E. Colorimetric analysis of saliva-alcohol test strips by smartphone-based instruments using machine-learning algorithms. Applied Optics. 56 (1), 84 (2017).
  44. Qin, Q., et al. Algorithms for immunochromatographic assay: review and impact on future application. The Analyst. 144 (19), 5659-5676 (2019).
  45. Yan, W., et al. Machine learning approach to enhance the performance of MNP-labeled lateral flow immunoassay. Nano-Micro Letters. 11 (1), 7 (2019).
  46. Srisa-Art, M., Boehle, K. E., Geiss, B. J., Henry, C. S. Highly sensitive detection of Salmonella typhimurium using a colorimetric paper-based analytical device coupled with immunomagnetic separation. Analytical Chemistry. 90 (1), 1035-1043 (2018).
  47. Santiago, G. A., et al. Performance of the Trioplex real-time RT-PCR assay for detection of Zika, dengue, and chikungunya viruses. Nature Communications. 9 (1), 1391 (2018).
  48. Lanciotti, R. S., Calisher, C. H., Gubler, D. J., Chang, G. J., Vorndam, A. V. Rapid detection and typing of dengue viruses from clinical samples by using reverse transcriptase-polymerase chain reaction. Journal of Clinical Microbiology. 30 (3), 545-551 (1992).
  49. Yang, X., et al. Design and development of polysaccharide hemostatic materials and their hemostatic mechanism. Biomaterials Science. 5 (12), 2357-2368 (2017).
  50. Li, H., Han, D., Pauletti, G. M., Steckl, A. J. Blood coagulation screening using a paper-based microfluidic lateral flow device. Lab Chip. 14 (20), 4035-4041 (2014).
  51. Nilghaz, A., Shen, W. Low-cost blood plasma separation method using salt functionalized paper. RSC Advances. 5 (66), 53172-53179 (2015).
  52. Ataullakhanov, F. I., Pohilko, A. V., Sinauridze, E. I., Volkova, R. I. Calcium threshold in human plasma clotting kinetics. Thrombosis Research. 75 (4), 383-394 (1994).
  53. Pamies, R., et al. Aggregation behaviour of gold nanoparticles in saline aqueous media. Journal of Nanoparticle Research. 16 (4), 2376 (2014).
  54. Christau, S., Moeller, T., Genzer, J., Koehler, R., Von Klitzing, R. Salt-induced aggregation of negatively charged gold nanoparticles confined in a polymer brush matrix. Macromolecules. 50 (18), 7333-7343 (2017).
  55. Abe, K., Kotera, K., Suzuki, K., Citterio, D. Inkjet-printed paperfluidic immuno-chemical sensing device. Analytical and Bioanalytical Chemistry. 398 (2), 885-893 (2010).
  56. Sameenoi, Y., Nongkai, P. N., Nouanthavong, S., Henry, C. S., Nacapricha, D. One-step polymer screen-printing for microfluidic paper-based analytical device (µPAD) fabrication. The Analyst. 139 (24), 6580-6588 (2014).
  57. Mora, M. F., et al. Patterning and modeling three-dimensional microfluidic devices fabricated on a single sheet of paper. Analytical Chemistry. 91 (13), 8298-8303 (2019).
  58. Ng, J. S., Hashimoto, M. Fabrication of paper microfluidic devices using a toner laser printer. RSC Advances. 10 (50), 29797-29807 (2020).
  59. Pal, S., et al. Multicountry prospective clinical evaluation of two enzyme-linked immunosorbent assays and two rapid diagnostic tests for diagnosing dengue fever. Journal of Clinical Microbiology. 53 (4), 1092-1102 (2015).
check_url/pt/66130?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Prabowo, M. H., Chalermwatanachai, T., Surareungchai, W., Rijiravanich, P. Portable Paper-Based Immunoassay Combined with Smartphone Application for Colorimetric and Quantitative Detection of Dengue NS1 Antigen. J. Vis. Exp. (203), e66130, doi:10.3791/66130 (2024).

View Video