Summary

Bärbar pappersbaserad immunanalys i kombination med smartphone-applikation för kolorimetrisk och kvantitativ detektion av dengue NS1-antigen

Published: January 26, 2024
doi:

Summary

För att ta itu med brådskande behov av denguediagnostik introducerar vi här en smartphone-app-integrerad Dengue NS1 Paper-based Analytical Device (DEN-NS1-PAD) för kvantifiering av Dengue NS1-antigenkoncentration i kliniska serum-/blodprover. Denna innovation förbättrar hanteringen av denguefeber genom att underlätta kliniskt beslutsfattande i olika vårdmiljöer, även resursbegränsade sådana.

Abstract

Denguevirusinfektion (DENV), som överförs av Aedes-myggor , är ett stort folkhälsoproblem i tropiska och subtropiska länder. Med en årlig incidens på cirka 10 miljoner fall och 20 000-25 000 dödsfall, särskilt bland barn, finns det ett akut behov av praktiska diagnostiska verktyg. Förekomsten av icke-strukturellt dengueprotein 1 (NS1) under tidig infektion har kopplats till cytokinfrisättning, vaskulärt läckage och endoteldysfunktion, vilket gör det till en potentiell markör för svår dengue.

Pappersbaserade immunanalyser som laterala flödesanalyser (LFA) och mikrofluidiska pappersbaserade analysanordningar (PAD) har vunnit popularitet som diagnostiska tester på grund av deras enkelhet, snabbhet, billighet, specificitet och enkla tolkning. Konventionella pappersbaserade immunanalyser för detektion av NS1 i denguefeber förlitar sig dock vanligtvis på visuell inspektion och ger endast kvalitativa resultat. För att ta itu med denna begränsning och förbättra känsligheten föreslog vi en mycket portabel NS1-detektionsanalys av denguefeber på en pappersbaserad analysenhet (PAD), nämligen DEN-NS1-PAD, som integrerar en smartphone-applikation som en kolorimetrisk och kvantitativ läsare. Utvecklingssystemet möjliggör direkt kvantifiering av NS1-koncentrationer i kliniska prover.

Serum- och blodprover från patienter användes för att demonstrera systemprototypens prestanda. Resultaten erhölls omedelbart och kan användas för klinisk bedömning, både i välutrustade vårdinrättningar och i resursbegränsade miljöer. Denna innovativa kombination av en pappersbaserad immunanalys med en smartphone-applikation erbjuder ett lovande tillvägagångssätt för förbättrad detektion och kvantifiering av NS1-dengueantigen. Genom att öka känsligheten bortom blotta ögats kapacitet har detta system stor potential för att förbättra det kliniska beslutsfattandet vid hantering av denguefeber, särskilt i avlägsna eller underbetjänade områden.

Introduction

Denguevirusinfektion (DENV) är den myggburnasjukdomen som sprids snabbast 1, och mer än 390 miljoner människor är infekterade med 96 miljoner symtomatiska infektioner, 2 miljoner fall av allvarlig sjukdom och mer än 25 000 dödsfall per år inträffar i världen 1,2. Enligt Världshälsoorganisationen (WHO) är uppskattningsvis 3,9 miljarder människor i riskzonen för denguefeber. ~70% bor i länder i Asien och Stillahavsområdet och främst i Sydostasien3. År 2019 rapporterades 4,2 miljoner fall av denguefeber till WHO, och Thailand bidrog med minst 136 000 fall av denguefeber och 144 dödsfall till följd av dengueinfektion4. Dengueutbrottet i Thailand sker under regnperioden, från april till december, i både stads- och landsbygdsområden, särskilt i det nordöstra området.

DENV-infektioner har olika kliniska manifestationer som sträcker sig från subkliniska symtom, mild denguefeber (DF) till svår dengue hemorragisk feber (DHF). Det huvudsakliga kännetecknet för allvarligt DHF-tillstånd är ökad vaskulär permeabilitet följt av chock och organdysfunktion1. Att förstå den molekylära vägen som kan orsaka kärlläckage är mycket viktigt för att utveckla effektiva denguebehandlingar. Dengue icke-strukturellt protein 1 (NS1) är ett utsöndrat glykoprotein under tidig virusinfektion 5,6, och det fungerar som en kofaktor för viral RNA-replikation7. NS1 kan utlösa cytokinfrisättning och bidra till vaskulärt läckage genom att binda till toll-like receptor 4 (TLR4) och endotelglykokalyx 8,9. In vitro-forskning har visat att NS1 interagerar med endotelceller och inducerar apoptos. Detta tillstånd kan bidra till endoteldysfunktion och vaskulärt läckage10. NS1-antigennivåer, korrelerade med serumnivåer av interleukin (IL)-10, ökade signifikant hos patienter med svår klinisk sjukdom11. Dengue NS1 bidrar också till sjukdomspatogenesen genom att inducera IL-10 och undertrycka DENV-specifika T-cellssvar12,13. Dessutom var NS1-proteinet denguefeber relaterat till svår klinisk sjukdom, och koncentrationen av NS1 > 600 ng ml-1 under de första 3 dagarna av sjukdomen var associerad med utvecklingen av DHF14.

Persistensen av dengue NS1-antigenet hos patienter med DHF kan användas som en markör för svår dengue6. Det finns flera metoder för att detektera NS1 i kliniska prover, t.ex. enzymkopplad immunadsorberande analys (ELISA) och snabbtest15. Guldstandarden för att mäta koncentrationen av NS1-proteiner i en klinisk miljö är ELISA-metoden. ELISA-metoden är dock dyr och kräver kvalificerad personal och laboratorieutrustning16. Därför pågår fortfarande utvecklingen av teknik för att detektera och kvantifiera NS1-proteiner i patientnära test (POCT). Under det senaste decenniet har pappersbaserade immunanalyser som laterala flödesanalyser (LFA) och mikrofluidiska pappersbaserade analysanordningar (μPAD) blivit populära som diagnostiska tester på grund av deras enkelhet, snabbhet, billighet och specificitet 17,18,19. I en pappersbaserad immunanalys har flera etiketter använts för att generera signaler, såsom guldnanopartiklar (AuNPs)20, magnetiska nanopartiklar21,22, kvantprickar23 och fluorescensmaterial24,25. AuNP är de vanligaste etiketterna som används i pappersbaserade immunanalyser på grund av deras billiga produktionskostnad, enkla tillverkning, stabilitet och enkla avläsning. För närvarande används laterala flödesanalyser (LFA) för dengue NS1 i den kliniska miljön26,27. Konventionell LFA-etikettdetektering använder dock vanligtvis blotta ögat och ger endast kvalitativa resultat.

Under det senaste decenniet har mer än 5 miljarder smartphones använts i stor utsträckning globalt, och det finns potential för att utveckla bärbar detektering 28,29. Smartphones har multifunktionell kapacitet som inbyggda fysiska sensorer, flerkärniga processorer, digitalkameror, USB-portar, ljudportar, trådlös och applikationsprogramvara, vilket gör dem lämpliga för användning i olika biosensorplattformar30. Dessutom gör trådlös teknik det möjligt att skicka data snabbt och kan användas för övervakning i realtid och på plats31. Mudanyali et al. kombinerade den pappersbaserade immunanalysen och smartphones för att utveckla en bärbar, utrustningsfri, snabb, billig och användarvänlig POCT-plattform för malaria, tuberkulos och HIV32. Ling et al. rapporterade en lateral flödesanalys i kombination med en smartphonekamera för att kvantitativt detektera alkalisk fosfatasaktivitet i mjölk33. Hou et al. utvecklade också ett smartphone-baserat, dual-modality imaging system för kvantitativa signaler från färg eller fluorescens i den laterala flödesanalysen34. Att använda smarttelefonen som en kolorimetrisk och kvantitativ läsare kan dessutom förbättra känsligheten medan blotta ögat inte med säkerhet kan rapportera närvaron av målet35.

DEN-NS1-PAD 36,37,38 (hädanefter kallad enheten) är ett genombrott inom denguediagnostik och erbjuder en bärbar och effektiv lösning. Med hjälp av vaxtryckt mikrofluidisk pappersbaserad teknik kvantifierar denna enhet NS1 med hög känslighet och specificitet genom bildbehandling. För att ytterligare förbättra dess användbarhet har vi utvecklat en användarvänlig smartphone-app för kolorimetrisk och kvantitativ avläsning. Klinisk validering med hjälp av patientprover från thailändska sjukhus understryker dess omedelbara inverkan på patientbedömning i realtid. Vår innovation markerar ett avgörande framsteg inom strömlinjeformad, patientnära denguehantering, och lovar att revolutionera diagnostiken i resursbegränsade vårdlandskap.

Protocol

Etikkommittén vid Institutional Review Board, Royal Thai Army Medical Department, Phramongkutklao Hospital, Bangkok, Thailand (IRBRTA 1218/2562) beviljade godkännande. När vi genomförde denna studie följde vi alla nödvändiga etiska regler. 1. Tillverkning av produkter för den pappersbaserade immunanalysen OBS: Den pappersbaserade immunanalysenheten tillverkades enligt tidigare etablerade metoder36,37<sup clas…

Representative Results

Att välja en tillverkningsmetod är avgörande för att säkerställa reproducerbara analysprestanda i pappersbaserade immunanalysenheter. I vår studie undersökte vi olika tillverkningsprocesser och material i samband med att demonstrera en pappersbaserad immunanalys. Vår valda metod använder ett vaxutskriftssystem för att skapa hydrofoba barriärer i pappersbaserade mikrofluidiska enheter. Detta tillvägagångssätt sticker ut på grund av dess enkelhet, snabbhet och konsekventa resultat. Värt att notera är att …

Discussion

En av de viktiga designparametrarna för ett smartphone-baserat läsarsystem är förmågan att tillhandahålla reproducerbar bildbehandling av prover. I den här studien togs bilderna från tre olika smartphone-märken med 12-13 MP-kameror utan att använda en bildbox eller tillbehör. Varierande förhållanden för bildtagning, såsom kamerans upplösning, bildtagningstid, ljusförhållanden och miljö, kan påverka färgintensiteten på test- och kontrollpunkterna på enheten. Effekten av olika bildtagningstider på b…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

M.H.P. är tacksamma för stipendieforskningsfonden från Universitas Islam Indonesia (UII). Författarna uttrycker sin tacksamhet till Mr. Nutchanon Ninyawee för hans värdefulla expertis och hjälp under utvecklingen av mobilapplikationen och hans bidrag till manuskriptet. Dessutom uppskattar författarna det ekonomiska stödet från Thailand Science Research and Innovation (TSRI), Basic Research Fund: Fiscal year 2023 (projekt nr. FRB660073/0164) under Program Smart Healthcare vid King Mongkuts tekniska universitet Thonburi.

Materials

Materials
0.1 M phosphate-buffered saline (PBS, pH 7.2) 
BBS containing 0.1% Tween 20, 10% sucrose, and 1% casein   the conjugate area treatment and blocking buffer
Borate buffered saline (BBS) (25 mM sodium borate and 150 mM sodium chloride at pH 8.2) supplemented with 1% BSA  the washing buffer during the conjugation process AuNPs with the antibody
Boric acid Merck 10043-35-3
Bovine serum albumin fraction V (BSA)   PAA Lab GmbH (Germany) K41-001 
Casein Merck 9005-46-3
Chromatography paper Grade 2  GE Healthcare 3002-911 
Clear laminate film 3M (Stationery shops)
Disodium hydrogen phosphate Merck 7558-79-4
Double tape side Stationery shops
Goat anti-mouse IgG antibody  MyBiosource (USA) MBS435013
Gold nanoparticles (40 nm)   Serve Science Co., Ltd. (Thailand)
Human IgG polyclonal antibody   Merck AG711-M
Mouse dengue NS1 monoclonal antibody  MyBiosource (USA) MBS834415
Mouse dengue NS1 monoclonal antibody  MyBiosource (USA) MBS834236
NS1 serotype 2 antigens MyBiosource (USA) MBS 568697
PBS 1X containing 0.1% Tween 20 was used as t elution buffer
Plastic backing card 10×30 cm Pacific Biotech Co., Ltd. (Thailand)
Poly-L-lysine (PLL) Sigma Aldrich P4832
Potassium Chloride Merck 104936
Potassium monophosphate Merck 104877
Sodium Chloride Merck 7647-14-5
Sodium tetraborate  Sigma Aldrich 1303-96-4
Sucrose Merck 57-50-1
Tween 20 Sigma Aldrich 9005-64-5
Instruments
CytationTM 5 multimode reader BioTek
Mobile phones Huawei Y7, iPhone 11, Samsung a20
Photo scanner Epson Perfection V30
Oven Memmert
Wax printer  Xerox ColorQube 8880-PS
Software
Could AutoML Vision Object Detection documentation Google Cloud
ImageJ National Institute of Health, Bethesda, MD, USA
Inkscape 0.91 Software

Referências

  1. Cattarino, L., Rodriguez-Barraquer, I., Imai, N., Cummings, D. A. T., Ferguson, N. M. Mapping global variation in dengue transmission intensity. Science Translational Medicine. 12 (528), 1-11 (2020).
  2. World Health Organization (WHO). . Treatment, prevention and control global strategy for dengue prevention and control. , 1-34 (2012).
  3. . WHO Dengue and severe dengue Available from: https://www.who.int/news-room/fact-sheets/detail/dengue-and-severe-dengue (2020)
  4. Department of Disease Control Ministry of Health Thailand. . Weekly Disease Forecast Dengue. , (2020).
  5. Malavige, G. N., Ogg, G. S. Pathogenesis of vascular leak in dengue virus infection. Immunology. 151 (3), 261-269 (2017).
  6. Paranavitane, S. A., et al. Dengue NS1 antigen as a marker of severe clinical disease. BMC Infectious Diseases. 14 (1), 570 (2014).
  7. Muller, D. A., Young, P. R. The flavivirus NS1 protein: Molecular and structural biology, immunology, role in pathogenesis and application as a diagnostic biomarker. Antiviral Research. 98 (2), 192-208 (2013).
  8. Modhiran, N., et al. Dengue virus NS1 protein activates cells via Toll-like receptor 4 and disrupts endothelial cell monolayer integrity. Science Translational Medicine. 7 (304), 304ra102 (2015).
  9. Glasner, D. R., et al. Dengue virus NS1 cytokine-independent vascular leak is dependent on endothelial glycocalyx components. PLOS Pathogens. 13 (11), e1006673 (2017).
  10. Lin, C. -. F., et al. Antibodies from dengue patient sera cross-react with endothelial cells and induce damage. Journal of Medical Virology. 69 (1), 82-90 (2003).
  11. Adikari, T. N., et al. Dengue NS1 antigen contributes to disease severity by inducing interleukin (IL)-10 by monocytes. Clinical and Experimental Immunology. 184 (1), 90-100 (2016).
  12. Malavige, G. N., et al. Suppression of virus specific immune responses by IL-10 in acute dengue infection. PLoS Neglected Tropical Diseases. 7 (9), e2409 (2013).
  13. Malavige, G. N., et al. Serum IL-10 as a marker of severe dengue infection. BMC Infectious Diseases. 13 (1), 341 (2013).
  14. Libraty, D. H., et al. High circulating levels of the dengue virus nonstructural protein NS1 early in dengue illness correlate with the development of dengue hemorrhagic fever. The Journal of Infectious Diseases. 186 (8), 1165-1168 (2002).
  15. World Health Organization (WHO) and the Special Programme for Research and Tropical Diseases (TDR). . Dengue: guidelines for diagnosis, treatment, prevention and control — New edition. , (2009).
  16. Axelrod, T., Eltzov, E., Marks, R. S. Capture-layer lateral flow immunoassay: a new platform validated in the detection and quantification of dengue NS1. ACS Omega. 5 (18), 10433-10440 (2020).
  17. Kim, S. -. W., Cho, I. -. H., Lim, G. -. S., Park, G. -. N., Paek, S. -. H. Biochemical-immunological hybrid biosensor based on two-dimensional chromatography for on-site sepsis diagnosis. Biosensors and Bioelectronics. 98, 7-14 (2017).
  18. Fu, Q., et al. Development of a novel dual-functional lateral-flow sensor for on-site detection of small molecule analytes. Sensors and Actuators B: Chemical. 203, 683-689 (2014).
  19. Dzantiev, B. B., Byzova, N. A., Urusov, A. E., Zherdev, A. V. Immunochromatographic methods in food analysis. TrAC Trends in Analytical Chemistry. 55, 81-93 (2014).
  20. Hu, J., et al. Advances in paper-based point-of-care diagnostics. Biosensors and Bioelectronics. 54 (4), 585-597 (2014).
  21. Zhong, Y., et al. Gold nanoparticles based lateral flow immunoassay with largely amplified sensitivity for rapid melamine screening. Microchimica Acta. 183 (6), 1989-1994 (2016).
  22. Figueredo, F., Garcia, P. T., Cortón, E., Coltro, W. K. T. Enhanced analytical performance of paper microfluidic devices by using Fe 3 O 4 nanoparticles, MWCNT, and graphene oxide. ACS Applied Materials & Interfaces. 8 (1), 11-15 (2016).
  23. Bahadır, E. B., Sezgintürk, M. K. Lateral flow assays: Principles, designs and labels. TrAC – Trends in Analytical Chemistry. 82, 286-306 (2016).
  24. He, M., Liu, Z. Paper-based micro fluidic device with upconversion fluorescence assay. Analytical Chemistry. 85, 11691-11694 (2013).
  25. Derikvand, F., Yin, D. L. T., Barrett, R., Brumer, H. Cellulose-based biosensors for esterase detection. Analytical Chemistry. 88 (6), 2989-2993 (2016).
  26. Kumar, S., Bhushan, P., Krishna, V., Bhattacharya, S. Tapered lateral flow immunoassay-based point-of-care diagnostic device for ultrasensitive colorimetric detection of dengue NS1. Biomicrofluidics. 12 (3), 034104 (2018).
  27. Sinawang, P. D., Rai, V., Ionescu, R. E., Marks, R. S. Electrochemical lateral flow immunosensor for detection and quantification of dengue NS1 protein. Biosensors and Bioelectronics. 77, 400-408 (2016).
  28. Zhang, D., Liu, Q. Biosensors and bioelectronics on smartphone for portable biochemical detection. Biosensors and Bioelectronics. 75, 273-284 (2016).
  29. Preechaburana, P., Suska, A., Filippini, D. Biosensing with cell phones. Trends in Biotechnology. 32 (7), 351-355 (2014).
  30. Laksanasopin, T., et al. A smartphone dongle for diagnosis of infectious diseases at the point of care. Science Translational Medicine. 7 (273), 273re1 (2015).
  31. Kim, J., et al. Noninvasive alcohol monitoring using a wearable tattoo-based iontophoretic-biosensing system. ACS Sensors. 1 (8), 1011-1019 (2016).
  32. Mudanyali, O., et al. Integrated rapid-diagnostic-test reader platform on a cellphone. Lab on a Chip. 12 (15), 2678 (2012).
  33. Yu, L., Shi, Z., Fang, C., Zhang, Y., Liu, Y., Li, C. Disposable lateral flow-through strip for smartphone-camera to quantitatively detect alkaline phosphatase activity in milk. Biosensors and Bioelectronics. 69, 307-315 (2015).
  34. Hou, Y., et al. Smartphone-based dual-modality imaging system for quantitative detection of color or fluorescent lateral flow immunochromatographic strips. Nanoscale Research Letters. 12 (1), 291 (2017).
  35. You, D. J., Park, T. S., Yoon, J. -. Y. Cell-phone-based measurement of TSH using Mie scatter optimized lateral flow assays. Biosensors and Bioelectronics. 40 (1), 180-185 (2013).
  36. Prabowo, M. H., Chatchen, S., Rijiravanich, P. Dengue NS1 detection in pediatric serum using microfluidic paper-based analytical devices. Analytical and Bioanalytical Chemistry. 412, 2915-2925 (2020).
  37. Prabowo, M. H., et al. Clinical evaluation of a developed paper-based Dengue NS1 rapid diagnostic test for febrile illness patients. International Journal of Infectious Diseases. 107, 271-277 (2021).
  38. Prabowo, M. H., et al. Preparation and detection method for the diagnostic device of dengue NS1 detection in serum, cell medium, and buffer. Thai Patent. , (2019).
  39. Kong, T., et al. Accessory-free quantitative smartphone imaging of colorimetric paper-based assays. Lab on a Chip. 19 (11), 1991-1999 (2019).
  40. Jung, Y., Heo, Y., Lee, J. J., Deering, A., Bae, E. Smartphone-based lateral flow imaging system for detection of food-borne bacteria E. coli O157:H7. Journal of Microbiological Methods. 168, 105800 (2020).
  41. Chen, G., et al. Improved analytical performance of smartphone-based colorimetric analysis by using a power-free imaging box. Sensors and Actuators B: Chemical. 281, 253-261 (2019).
  42. Kim, H., et al. Smartphone-based low light detection for bioluminescence application. Scientific Reports. 7 (1), 40203 (2017).
  43. Kim, H., Awofeso, O., Choi, S., Jung, Y., Bae, E. Colorimetric analysis of saliva-alcohol test strips by smartphone-based instruments using machine-learning algorithms. Applied Optics. 56 (1), 84 (2017).
  44. Qin, Q., et al. Algorithms for immunochromatographic assay: review and impact on future application. The Analyst. 144 (19), 5659-5676 (2019).
  45. Yan, W., et al. Machine learning approach to enhance the performance of MNP-labeled lateral flow immunoassay. Nano-Micro Letters. 11 (1), 7 (2019).
  46. Srisa-Art, M., Boehle, K. E., Geiss, B. J., Henry, C. S. Highly sensitive detection of Salmonella typhimurium using a colorimetric paper-based analytical device coupled with immunomagnetic separation. Analytical Chemistry. 90 (1), 1035-1043 (2018).
  47. Santiago, G. A., et al. Performance of the Trioplex real-time RT-PCR assay for detection of Zika, dengue, and chikungunya viruses. Nature Communications. 9 (1), 1391 (2018).
  48. Lanciotti, R. S., Calisher, C. H., Gubler, D. J., Chang, G. J., Vorndam, A. V. Rapid detection and typing of dengue viruses from clinical samples by using reverse transcriptase-polymerase chain reaction. Journal of Clinical Microbiology. 30 (3), 545-551 (1992).
  49. Yang, X., et al. Design and development of polysaccharide hemostatic materials and their hemostatic mechanism. Biomaterials Science. 5 (12), 2357-2368 (2017).
  50. Li, H., Han, D., Pauletti, G. M., Steckl, A. J. Blood coagulation screening using a paper-based microfluidic lateral flow device. Lab Chip. 14 (20), 4035-4041 (2014).
  51. Nilghaz, A., Shen, W. Low-cost blood plasma separation method using salt functionalized paper. RSC Advances. 5 (66), 53172-53179 (2015).
  52. Ataullakhanov, F. I., Pohilko, A. V., Sinauridze, E. I., Volkova, R. I. Calcium threshold in human plasma clotting kinetics. Thrombosis Research. 75 (4), 383-394 (1994).
  53. Pamies, R., et al. Aggregation behaviour of gold nanoparticles in saline aqueous media. Journal of Nanoparticle Research. 16 (4), 2376 (2014).
  54. Christau, S., Moeller, T., Genzer, J., Koehler, R., Von Klitzing, R. Salt-induced aggregation of negatively charged gold nanoparticles confined in a polymer brush matrix. Macromolecules. 50 (18), 7333-7343 (2017).
  55. Abe, K., Kotera, K., Suzuki, K., Citterio, D. Inkjet-printed paperfluidic immuno-chemical sensing device. Analytical and Bioanalytical Chemistry. 398 (2), 885-893 (2010).
  56. Sameenoi, Y., Nongkai, P. N., Nouanthavong, S., Henry, C. S., Nacapricha, D. One-step polymer screen-printing for microfluidic paper-based analytical device (µPAD) fabrication. The Analyst. 139 (24), 6580-6588 (2014).
  57. Mora, M. F., et al. Patterning and modeling three-dimensional microfluidic devices fabricated on a single sheet of paper. Analytical Chemistry. 91 (13), 8298-8303 (2019).
  58. Ng, J. S., Hashimoto, M. Fabrication of paper microfluidic devices using a toner laser printer. RSC Advances. 10 (50), 29797-29807 (2020).
  59. Pal, S., et al. Multicountry prospective clinical evaluation of two enzyme-linked immunosorbent assays and two rapid diagnostic tests for diagnosing dengue fever. Journal of Clinical Microbiology. 53 (4), 1092-1102 (2015).
check_url/pt/66130?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Prabowo, M. H., Chalermwatanachai, T., Surareungchai, W., Rijiravanich, P. Portable Paper-Based Immunoassay Combined with Smartphone Application for Colorimetric and Quantitative Detection of Dengue NS1 Antigen. J. Vis. Exp. (203), e66130, doi:10.3791/66130 (2024).

View Video