O presente protocolo descreve medidas de pH em organoides gástricos derivados de tecidos humanos usando microeletrodos para caracterização espaço-temporal da fisiologia intraluminal.
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Artigo de método
O presente protocolo descreve medidas de pH em organoides gástricos derivados de tecidos humanos usando microeletrodos para caracterização espaço-temporal da fisiologia intraluminal.
A otimização e caracterização detalhada de modelos organoides gastrointestinais requerem métodos avançados para analisar seus ambientes luminais. Este artigo apresenta um método altamente reprodutível para a medição precisa do pH dentro do lúmen de organoides gástricos humanos 3D por meio de microeletrodos controlados por micromanipuladores. Os microeletrodos de pH estão disponíveis comercialmente e consistem em pontas de vidro chanfradas de 25 μm de diâmetro. Para medições, o microeletrodo de pH é avançado no lúmen de um organoide (>200 μm) que é suspenso em Matrigel, enquanto um eletrodo de referência repousa submerso no meio circundante na placa de cultura.
Usando esses microeletrodos para traçar o perfil de organoides derivados do corpo gástrico humano, demonstramos que o pH luminal é relativamente consistente dentro de cada poço de cultura em ~ 7,7 ± 0,037 e que medições contínuas podem ser obtidas por um mínimo de 15 min. Em alguns organoides maiores, as medições revelaram um gradiente de pH entre a superfície epitelial e o lúmen, sugerindo que as medições de pH em organoides podem ser alcançadas com alta resolução espacial. Em um estudo anterior, microeletrodos foram usados com sucesso para medir as concentrações luminais de oxigênio em organoides, demonstrando a versatilidade desse método para análises de organoides. Em resumo, este protocolo descreve uma ferramenta importante para a caracterização funcional do complexo espaço luminal dentro de organoides 3D.
Organoides - estruturas multicelulares em miniatura derivadas de células-tronco - revolucionaram nossa capacidade de estudar a fisiologia humana e estão começando a substituir modelos animais, mesmo em ambientes regulatórios1. Desde a descrição inicial dos organoides intestinais por Sato et al. em 2009, a tecnologia organoide tornou-se imensamente popular2. Um grande número de estudos caracterizou a composição celular e a função dos modelos organoides em grande detalhe 3,4,5,6. No entanto, o e....
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Este protocolo requer organoides 3D de pelo menos 200 μm de diâmetro que tenham um lúmen distinto e que estejam embutidos em uma matriz extracelular artificial (ECM, por exemplo, Matrigel). Os tecidos gástricos humanos para derivação de organoides foram obtidos com a aprovação do Conselho de Revisão Institucional da Montana State University e consentimento informado de pacientes submetidos a endoscopia digestiva alta na Bozeman Health (protocolo # 2023-48-FCR, para DB) ou como amostras isentas de gastrectomia total do estômago inteiro ou gastrectomia vertical do National Disease Research Interchange (protocolo #DB062615-EX). As informações sobre as linhas organoides e....
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A secreção de ácido é uma função crucial do estômago humano. No entanto, até que ponto a secreção ácida pode ser modelada em organoides ainda é uma questão de debate 6,32,33,34. Portanto, desenvolvemos o protocolo detalhado acima para medir com precisão a produção de ácido em organoides gástricos. Notavelmente, usamos organoides derivados de células-tronco adultas não estimuladas cultivadas em .......
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O acesso limitado ao espaço luminal dos organoides restringiu severamente nossa compreensão da dinâmica fisiológica desse microambiente. Uma ferramenta confiável para análises funcionais da fisiologia luminal expandirá nossa capacidade de alavancar organoides como modelos in vitro para fisiologia, farmacologia e pesquisa de doenças. Os organoides são modelos fisiologicamente relevantes e altamente ajustáveis, com potencial adicional para replicar a variabilidade genética na população humana. Os métodos existente.......
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Os autores não têm conflitos de interesse a divulgar.
Os autores gostariam de agradecer à Dra. Ellen Lauchnor, Dr. Phil Stewart e Bengisu Kilic por seu trabalho anterior e assistência com os microssensores O2 ; Andy Sebrell pelo treinamento em cultura organoide e micromanipulação; Lexi Burcham pela assistência na cultura de organoides, preparação de meios, registro de dados e organização; e Dra. Susy Kohout para aconselhamento geral em eletrofisiologia. Gostaríamos de agradecer à Dra. Heidi Smith por sua assistência com imagens e reconhecer o Centro de Engenharia de Biofilme Bioimaging da Universidade Estadual de Montana, que é apoiado por financiamento do Programa de Ressonância Magnética da National Science ....
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| Nome | Empresa | Número de catálogo | Comentários |
|---|---|---|---|
| 3 M KCl | Unisense | ||
| 5 mL Pipeta sorológica oscilante-não, embalada individualmente, papel/plástico, saco, estéril | CellTreat | 229091B | |
| 10 mL pipeta sorológica oscilante-não, embalada individualmente, papel/plástico, saco, estéril | CellTreat | 229092B | |
| Tubo de centrífuga de 15 mL - rack de espuma, estéril | CellTreat | 229412 | |
| Placa de Cultura de Tecidos de 24 Poços, CellTreat Estéril | 229124 Pipeta | ||
| Sorológica Oscilante de 25 mL, Embalada Individualmente, Papel/Plástico, Saco, Estéril | CellTreat | 229093B | |
| Prato de 35 mm | Nº 1.5 Lamínula | Diâmetro do vidro de 20 mm | Tubo | MatTek | P35G-1.5-20-C | |
| - Rack de Espuma, Estéril | CellTreat | 229422 | |
| 70% Etanol | BP82031GAL | BP82031GAL | |
| 70 μ m Cell Strainer, Embalado Individualmente, Esterilizado | CellTreat | 229483 | |
| 1.000 µ L Pontas de Pipeta de Baixa Retenção de Comprimento Estendido, Rack, Estéril | Solução | CellTreat 229037 | |
| Anfotericina B (Fungizone) | HyClone Laboratories, Inc | SV30078.01 | |
| Gabinete de Biossegurança | Nuaire | NU-425-600 | Classe II Tipo A / B3 |
| Albumina de soro bovino | Fisher Biorreagentes | BP1605-100 | |
| Solução de recuperação celular | Corning | 354253 | Solução de dissociação celular |
| DMEM / F-12 (DMEM avançado) | Gibco | 12-491-015 | |
| Modificação de Dulbecco do meio de águias (DMEM) | Fisher Scientific | 15017CV | |
| Soro Fetal Bovino | HyClone Laboratories, Inc | SH30088 | |
| G418 Sulfato | Corning | 30-234-CR | |
| Sulfato de Gentamicina | IBI Scientific | IB02030 | |
| HEPES, Ácido Livre | Cytiva | SH30237.01 | |
| HP Pavillion 2-em-1 14" Laptop Intel Core i3 | HP | M03840-001 | |
| Ácido clorídrico | Fisher Incubadora Científica | A144C-212 | |
| Fisher Scientific | 11676604 | ||
| Câmera iPhone 12 | Apple | ||
| L-glutamina | Cytiva | SH3003401 | |
| Grande Kimberly-Clark Professional Kimtech Science Kimwipes Delicados Limpadores de Tarefa, 1-Ply | Fisher Scientific | 34133 | |
| M 205 FA Estereomicroscópio | Leica | ||
| Matriz de Membrana Matrigel 354234 | Corning | CB-40234 | |
| MC-1 UniMotor Controlador | Unisense | ||
| Metil vermelho | |||
| MM33 Micromanipulador | Marzhauser Wetzlar | 61-42-113-0000 | Destro |
| MS-15 Estágio Motorizado | Unisense | ||
| Nanoject-II | Autoinjetor de nanolitros | Drummond | 3-000-204 |
| Penicilina/Estreptomicina (10,000 U/mL) | Gibco | 15-140-148 | |
| pH Microeletrodos | Unisense | 50-109158, 25-203452, 25-205272, 25-111626, 25-109160 | O software SensorTrace não é compatível com computadores Apple |
| Eletrodo de referência | Unisense | REF-RM-001652 | O software SensorTrace não é compatível com Computadores Apple |
| SB 431542 | Tocris Bioscience | 16-141-0 | |
| Adaptador de câmera para smartphone | Gosky | ||
| Especificações Suporte de laboratório LS | Unisense | LS-009238 | |
| Tripsina-EDTA 0,025%, vermelho de fenol | Gibco | 25-200-056 | |
| UniAmp | Unisense | 11632 | |
| United Biosystems Inc RASPADORES DE CÉLULAS MINI 200/PK | Fisher | MCS-200 | |
| Y-27632 dicloridrato | Tocris Bioscience | 12-541-0 | |
| µ Kit de Calibração do Sensor | Unisense/ Mettler Toledo | 51-305-070, 51-302-069 | pH 4,01 e 9,21, pacotes de 20 mL |
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