Summary

メチル化DNA免疫沈降

Published: January 02, 2009
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Summary

このビデオでは、メチル化DNA免疫沈降(MeDIP)のためのプロトコルを示しています。 MeDIPは、選択的に5 – メチルシトシン(抗- 5 MC)のための特異性を有する抗体を用いてゲノムDNAのサンプルからメチル化DNA断片を抽出する二日間の手順です。

Abstract

DNAのメチル化パターンの識別には、メチル化が遺伝子発現に大きな影響を持つことが知られているように、エピジェネティクスの研究では一般的な手順であり、通常の開発だけでなく、病気に関与している<sup> 1月4日</sup>。従って、メチル化DNAと非メチル化DNAとを区別する能力は、そのような研究のためにメチル化プロファイルを生成するために不可欠です。メチル化DNA免疫沈降(MeDIPは)興味のサンプルからのメチル化DNAの抽出のための効率的な手法です。<sup> 5月7日</sup>。 DNAのようにわずか200 ngのサンプルは、抗体、または免疫沈降(IP)、反応に十分です。 DNAは、約300〜1,000 bpからサイズの範囲のフラグメントに超音波処理され、そして免疫沈降(IP)と入力(IN)部分に分かれています。 IPのDNAは、その後、熱変性し、モノクローナル抗体は、メチル化DNAを結合させること、抗5'mCとインキュベートされる。この後、一次抗体に対する親和性を有する二次抗体を含む磁性ビーズを添加し、インキュベートする。これらのビーズにリンクされた抗体は、最初のステップで使用されるモノクローナル抗体をバインドします。抗体複合体(メチル化DNA)に結合したDNA溶液から複合体を引き出すために磁石を使用してDNAの残りの部分から分離されている。 IPバッファを使用して数回の洗浄が結合していない、非メチル化DNAを除去するために実行されます。メチル化DNA /抗体複合体は、唯一のメチル化DNAをそのまま残し抗体を消化するためにプロテイナーゼKで消化されています。蛋白質の物質を除去するためにクロロホルム抽出し、後で使用するために沈殿し、水に再懸濁さ:濃縮されたDNAは、フェノールによって精製する。 PCR技術は、IPの増幅産物を分析することにより、地域の欠如に知られているとメチル化配列を含むように知られているため、DNAのMeDIPの手順の効率性を検証するために使用することができます。精製したメチル化DNAは、遺伝子座特異的(PCR)またはゲノムワイド(マイクロアレイやシーケンシング)メチル化の研究に使用し、そのような遺伝子発現プロファイリングとアレイ比較ゲノムハイブリダイゼーションなどの他の研究ツールと組み合わせて適用する場合に特に有用であることができる( CGH)<sup> 8</sup>。 DNAメチル化へのさらなる調査は、順番に、異常にメチル化DNAを特徴とする、癌などの疾患の新しい治療や予後の研究ツールの開発に便利だと思われる、新たなエピジェネティックなターゲットの発見につながる<sup> 2、4、9-11</sup>。

Protocol

DNAの抽出および検体の調製異なるさまざまなサンプル(培養細胞、新鮮なだけでなく、ホルマリン固定パラフィン包埋組織として冷凍)からDNAをMeDIPに使用することができます。このようなヒストンなどの関連蛋白質することなく、高度に精製されたDNAを使用することが重要です。それはDNAの定量と抗​​体の結合の両方を妨げることができるように、試料からできるだ?…

Discussion

疾患において重要な役割のDNAメチル化の戯曲の認識が広がりつつあります、この修正を測定するアッセイのため、開発は13、12、3重要性を増してきています。 MeDIP技術は、全ゲノムと遺伝子座特異的レベル6、7の両方でのスクリーニングのための従順なツールです。この手法は、DNAを始めるの限られた量を使用してDNAのメチル化レベルの急速なビューを提供し、異なるソース?…

Acknowledgements

我々は、このビデオと記事を批評への参加のためにブラウンとラムラボのメンバーに感謝したい。この作品は、健康研究と健康研究のためのマイケルスミス財団のためのカナダの協会からの資金によって支えられている。

Materials

Material Name Tipo Company Catalogue Number Comment
Biorupter sonicator Tool Diagenode UCD-200 TM  
1.7ml SafeSeal Microcentrifuge Tubes Outro Sorenson BioScience 11510  
ND 3300 Spectrophotometer Tool NanoDrop    
Primary Antibody: Anti-5′-methylcytosine mouse mAb Reagent CalBiochem 162 33 D3  
Secondary Antibody: Dynabeads M-280 Sheep anti-mouse IgG Reagent Invitrogen 112-01D  
Magnetic Tube Rack Tool Invitrogen CS15000  
Mini LabRoller Tool Labnet International H5500  
IP Buffer       10 mM NaPO4 pH 7.0, 140 mM NaCl, 0.05% Triton X-100. Stored at room temperature
Digestion Buffer       10 mM Tris pH8.0, 100 mM EDTA, 0.5% SDS, 50 mM NaCl

Referências

  1. Beck, S., Rakyan, V. K. The methylome: approaches for global DNA methylation profiling. Trends Genet. 24, 231-237 (2008).
  2. Lu, Q., et al. Epigenetics, disease, and therapeutic interventions. Ageing research reviews. 5, 449-467 (2006).
  3. Zilberman, D., Henikoff, S. Genome-wide analysis of DNA methylation patterns. Development. 134, 3959-3965 (2007).
  4. Feinberg, A. P., Tycko, B. The history of cancer epigenetics. Nature reviews. 4, 143-153 (2004).
  5. Weber, M., et al. Distribution, silencing potential and evolutionary impact of promoter DNA methylation in the human genome. Nat Genet. 39, 457-466 (2007).
  6. Weber, M., et al. Chromosome-wide and promoter-specific analyses identify sites of differential DNA methylation in normal and transformed human cells. Nat Genet. 37, 853-862 (2005).
  7. Wilson, I. M., et al. Epigenomics: mapping the methylome. Cell Cycle. 5, 155-158 (2006).
  8. Gazin, C., Wajapeyee, N., Gobeil, S., Virbasius, C. M., Green, M. R. An elaborate pathway required for Ras-mediated epigenetic silencing. Nature. 449, 1073-1077 (2007).
  9. Karpinski, P., Sasiadek, M. M., Blin, N. Aberrant epigenetic patterns in the etiology of gastrointestinal cancers. Journal of applied. 49, 1-10 (2008).
  10. Maekawa, M., Watanabe, Y. Epigenetics: relations to disease and laboratory findings. Current medicinal chemistry. 14, 2642-2653 (2007).
  11. Vucic, E. A., Brown, C. J., Lam, W. L. Epigenetics of cancer progression. Pharmacogenomics. 9, 215-234 (2008).
  12. Egger, G., Liang, G., Aparicio, A., Jones, P. A. Epigenetics in human disease and prospects for epigenetic therapy. Nature. 429, 457-463 (2004).
  13. Jones, P. A., Baylin, S. B. The fundamental role of epigenetic events in cancer. Nat Rev Genet. 3, 415-428 (2002).
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Citar este artigo
Thu, K. L., Vucic, E. A., Kennett, J. Y., Heryet, C., Brown, C. J., Lam, W. L., Wilson, I. M. Methylated DNA Immunoprecipitation. J. Vis. Exp. (23), e935, doi:10.3791/935 (2009).

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