Summary

Inmunoprecipitación de ADN metilado

Published: January 02, 2009
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Summary

Este video muestra el protocolo para la inmunoprecipitación de ADN metilado (MeDIP). MeDIP es un procedimiento de dos días que selectivamente extrae fragmentos de ADN metilado de una muestra de ADN genómico utilizando anticuerpos con especificidad para el 5-metilcitosina (anti-5 MC).

Abstract

La identificación de los patrones de metilación del ADN es un procedimiento común en el estudio de la epigenética, como la metilación se sabe que tiene efectos significativos en la expresión génica, y está involucrado con el desarrollo normal, así como la enfermedad<sup> 4.1</sup>. Por lo tanto, la capacidad de discriminar entre el ADN metilado y no metilado de ADN es esencial para la generación de perfiles de metilación de estos estudios. Inmunoprecipitación de ADN metilado (MeDIP) es una técnica eficiente para la extracción de ADN metilado de una muestra de interés<sup> 5.7</sup>. Una muestra de tan poco como 200 ng de ADN es suficiente para que el anticuerpo, o inmunoprecipitación (IP), la reacción. ADN se somete a sonicación en fragmentos que van desde 300-1000 pb, y se divide en immunoprecipitated (IP) y entrada (IN) porciones. ADN IP posteriormente el calor desnaturalizado y luego incubadas con anticuerpos anti-5'mC, permitiendo que el anticuerpo monoclonal de unirse al ADN metilado. Después de esto, partículas magnéticas que contienen un anticuerpo secundario con afinidad por el anticuerpo primario se agregan y se incuban. Estos anticuerpos de cuentas vinculadas se une al anticuerpo monoclonal que se usa en el primer paso. ADN unido al complejo anticuerpo (ADN metilado) se separa del resto del ADN mediante el uso de un imán para tirar de los complejos de la solución. Varios lavados con buffer de propiedad intelectual se ejecutan después de quitar la consolidados, no ADN metilado. El ADN metilado / anticuerpo se digiere con proteinasa K para digerir los anticuerpos dejando sólo el ADN metilado intacto. El ADN se purifica enriquecido con fenol: cloroformo extracción para eliminar el material de proteína y luego se precipitó y se resuspendió en agua para su uso posterior. Técnicas de PCR se puede utilizar para validar la eficacia del procedimiento MeDIP mediante el análisis de los productos de amplificación de IP y en el ADN de las regiones conocidas de la falta y se sabe que contiene secuencias de metilación. El ADN purificado metilado se puede utilizar para el locus-específica (PCR) o todo el genoma (microarrays y la secuenciación) estudios de metilación, y es particularmente útil cuando se aplica en conjunción con las herramientas de investigación tales como perfiles de expresión genética y la hibridación amplia comparativo del genoma ( CGH)<sup> 8</sup>. La investigación adicional en la metilación del ADN se llevará al descubrimiento de nuevas dianas epigenéticos, que a su vez, puede ser útil en el desarrollo de nuevas herramientas de investigación terapéutica o pronóstico de enfermedades como el cáncer que se caracterizan por ADN aberrantemente metilados<sup> 2, 4, 9-11</sup>.

Protocol

Extracción de ADN y preparación de muestras ADN de una variedad de diferentes muestras (células cultivadas, fresco congelado, así como tejidos en parafina fijado en formol e incrustados) puede ser utilizado para MeDIP. Es importante usar el ADN altamente purificado sin proteínas asociadas, como las histonas. También es importante para eliminar el ARN tanto como sea posible de la muestra, ya que puede interferir con la cuantificación del ADN y la unión del anticuerpo. La cantidad de ADN…

Discussion

Hay una creciente conciencia de los juegos de rol significativo en la enfermedad de la metilación del ADN, por lo tanto el desarrollo de ensayos para medir esta modificación se están convirtiendo cada vez más importante 3, 12, 13. La técnica MeDIP es una herramienta susceptible de cribado, tanto en el de todo el genoma y el lugar específico de nivel 6, 7. Esta técnica proporciona una vista rápida de los niveles de metilación del ADN usando una cantidad limitada de partida de ADN y permite …

Acknowledgements

Queremos agradecer a los miembros de la Brown y laboratorios de Lam por su participación en la crítica de este video y en el artículo. Este trabajo fue financiado por los fondos de los Institutos Canadienses de Investigación en Salud y la Michael Smith Fundación para la Investigación de la Salud.

Materials

Material Name Tipo Company Catalogue Number Comment
Biorupter sonicator Tool Diagenode UCD-200 TM  
1.7ml SafeSeal Microcentrifuge Tubes Outro Sorenson BioScience 11510  
ND 3300 Spectrophotometer Tool NanoDrop    
Primary Antibody: Anti-5′-methylcytosine mouse mAb Reagent CalBiochem 162 33 D3  
Secondary Antibody: Dynabeads M-280 Sheep anti-mouse IgG Reagent Invitrogen 112-01D  
Magnetic Tube Rack Tool Invitrogen CS15000  
Mini LabRoller Tool Labnet International H5500  
IP Buffer       10 mM NaPO4 pH 7.0, 140 mM NaCl, 0.05% Triton X-100. Stored at room temperature
Digestion Buffer       10 mM Tris pH8.0, 100 mM EDTA, 0.5% SDS, 50 mM NaCl

Referências

  1. Beck, S., Rakyan, V. K. The methylome: approaches for global DNA methylation profiling. Trends Genet. 24, 231-237 (2008).
  2. Lu, Q., et al. Epigenetics, disease, and therapeutic interventions. Ageing research reviews. 5, 449-467 (2006).
  3. Zilberman, D., Henikoff, S. Genome-wide analysis of DNA methylation patterns. Development. 134, 3959-3965 (2007).
  4. Feinberg, A. P., Tycko, B. The history of cancer epigenetics. Nature reviews. 4, 143-153 (2004).
  5. Weber, M., et al. Distribution, silencing potential and evolutionary impact of promoter DNA methylation in the human genome. Nat Genet. 39, 457-466 (2007).
  6. Weber, M., et al. Chromosome-wide and promoter-specific analyses identify sites of differential DNA methylation in normal and transformed human cells. Nat Genet. 37, 853-862 (2005).
  7. Wilson, I. M., et al. Epigenomics: mapping the methylome. Cell Cycle. 5, 155-158 (2006).
  8. Gazin, C., Wajapeyee, N., Gobeil, S., Virbasius, C. M., Green, M. R. An elaborate pathway required for Ras-mediated epigenetic silencing. Nature. 449, 1073-1077 (2007).
  9. Karpinski, P., Sasiadek, M. M., Blin, N. Aberrant epigenetic patterns in the etiology of gastrointestinal cancers. Journal of applied. 49, 1-10 (2008).
  10. Maekawa, M., Watanabe, Y. Epigenetics: relations to disease and laboratory findings. Current medicinal chemistry. 14, 2642-2653 (2007).
  11. Vucic, E. A., Brown, C. J., Lam, W. L. Epigenetics of cancer progression. Pharmacogenomics. 9, 215-234 (2008).
  12. Egger, G., Liang, G., Aparicio, A., Jones, P. A. Epigenetics in human disease and prospects for epigenetic therapy. Nature. 429, 457-463 (2004).
  13. Jones, P. A., Baylin, S. B. The fundamental role of epigenetic events in cancer. Nat Rev Genet. 3, 415-428 (2002).
  14. Fraga, M. F., Esteller, M. DNA methylation: a profile of methods and applications. Biotechniques. 33, 632-649 (2002).
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Citar este artigo
Thu, K. L., Vucic, E. A., Kennett, J. Y., Heryet, C., Brown, C. J., Lam, W. L., Wilson, I. M. Methylated DNA Immunoprecipitation. J. Vis. Exp. (23), e935, doi:10.3791/935 (2009).

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