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Article de méthode

Administration intraventriculaire de médicaments et échantillonnage pour l’étude pharmacocinétique et pharmacodynamique

2.5K vues

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DOI :

10.3791/63540

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31 mars 2022

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Dans cet article

Résumé

L’administration de produits thérapeutiques directement dans le système nerveux central est un moyen de contourner la barrière hémato-encéphalique. Le présent protocole démontre l’injection intra-ventriculaire pour le prélèvement ultérieur de liquide céphalo-rachidien et d’organes corporels. Cela facilite l’étude de la pharmacocinétique et de la pharmacodynamique des médicaments dans des modèles animaux pour le développement de nouveaux traitements.

Résumé

Bien que la barrière hémato-encéphalique (BHE) protège le cerveau des entités étrangères, elle empêche également certains traitements de pénétrer dans le système nerveux central (SNC) pour améliorer les maladies ou les infections. Les médicaments sont administrés directement dans le SNC chez les animaux et les humains pour contourner la BHE. Le protocole actuel décrit une façon unique de traiter les infections cérébrales par l’administration intraventriculaire d’antibiotiques, c’est-à-dire les polymyxines, les antibiotiques de dernière intention pour traiter les bactéries à Gram négatif multirésistantes. Un protocole de chirurgie stéréotaxique simple a été mis au point pour implanter une canule guide atteignant le ventricule latéral chez le rat. Après une période de récupération de 24 h, les rats peuvent être injectés consciemment et à plusieurs reprises à travers une canule ajustée au guide. Les injections peuvent être administrées manuellement en bolus ou en perfusion à l’aide d’une pompe de micro-injection pour obtenir un débit lent et contrôlé. L’injection intraventriculaire a été confirmée avec succès avec le colorant Evans Blue. Le liquide céphalorachidien (LCR) peut être drainé, et le cerveau et d’autres organes peuvent être prélevés. Cette approche se prête tout particulièrement bien aux études impliquant l’administration de médicaments dans le SNC et l’évaluation ultérieure de l’activité pharmacocinétique et pharmacodynamique.

Introduction

La barrière hémato-encéphalique (BHE) est un mécanisme de protection crucial pour le système nerveux central (SNC). La barrière anatomique sélectivement perméable sépare le sang circulant et ses solutés du liquide extracellulaire du cerveau, empêchant ainsi la plupart des molécules de pénétrer dans le cerveau 1,2,3,4, en fonction de leur taille, de leur lipophilie 5 et de la disponibilité d’un mécanisme de transport actif 2.

Cette ba....

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Protocole

Toutes les expériences ont été menées conformément au code australien pour le soin et l’utilisation des animaux à des fins scientifiques. Les expériences ont été approuvées par le comité d’éthique de l’Université de Melbourne (demande #1914890). Des rats Sprague-Dawley mâles et femelles âgés de 8 à 14 semaines ont été utilisés pour les expériences.

1. Chirurgie stéréotaxique pour la canulation du ventricule latéral

  1. Utilisez des embouts en coton autoclavés et des champs chirurgicaux pendant la chirurgie.
  2. Configurez ce qui suit pour la chirurgie.
    1. Insta....

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Résultats

Le protocole chirurgical présenté est très efficace, les chirurgiens formés atteignant un taux de survie de >99,8 % et les animaux montrant un poids corporel stable après l’opération le jour 1, par rapport à leur poids préopératoire le jour 0 (moyenne ± ET de 315,8 g ± 42,1 g pour le jour 0 et 314,1 g ± 43,0 g pour le jour 1, figure 3).

Avant de prélever le LCR, une injection de colorant Evans Blue à 1,1 % dans la canule implantée peut aider à confirmer que l’i.......

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Discussion

Les chercheurs et les cliniciens utilisent des injections ICV pour contourner le mécanisme de protection de la BHE et administrer des médicaments directement dans le SNC 12,18,19,21,24. Le présent travail est un protocole ICV complet pour administrer efficacement des médicaments dans le SNC et extraire le LCR pour l’analyse ph.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont aucun conflit d’intérêts à divulguer.

Remerciements

Les auteurs remercient le Biomedical Science Animal Facility de l’Université de Melbourne pour la fourniture et les soins aux animaux. Cette recherche a été soutenue par une subvention de recherche de l’Institut national des allergies et des maladies infectieuses de l’Institut national de la santé (R01 AI146241, GR et TV). JL est chercheur principal du Conseil national australien de la recherche médicale en santé (NHMRC). Le contenu relève de la seule responsabilité des auteurs et ne représente pas nécessairement les opinions officielles de l’Institut national des allergies et des maladies infectieuses ou de l’Institut national de la ....

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
AcétoneTerumo, JaponSS+01T
Seringues de 5 mLTerumo, JaponSS+05S
AcétoneMerck, Allemagne67641
Feuilles de protection de bancHalyard, États-Unis2765-C
BetadineMundipharma, Pays-Bas1015695
Buprénorphine ; TemgesicClifford Hallam Healthcare, Australie1238366
CarprofèneZoetis, Australie10001132
ChlorhexidineTasman Chemicals, Australie890401
Chux superwipes (ou équivalent)Chux, Australien/aAutoclaved
Clippersn/an/a
Cotons-tigesLP Italiana, Italie112191autoclave
Poudre de ciment dentaire (poudre Vertex Self polymérisable)Henry Schein, États-UnisVX-SC500GVD5
Solvant de ciment dentaire (Vertex Self cure liquide)Henry Schein, États-UnisVX-SC250MLLQ
Aiguilles jetables : 18 G, 26 G, 30 GTerumo, JaponNN+2525RL
Lames chirurgicales jetablesWestlab, Australie663-255
Ciseaux DissectorF.S.T.14082-09
Canules facticesBio Scientific, AustralieC313DC/SPCcoupées à 4,05 pour s’adapter à la canule guide
Éthanol 80 %Merck, Australie10107
Evan’s blue dyeSigmaE2129 - 50G
Lubrifiant pour les yeuxClifford Hallam Healthcare, Australie2070491
FeutreSharpie, USAD-4236
Source lumineuse à fibre optiquen/an/a
Aiguille aplatie (18 G) ou similaire pour appliquer de la supergluen/an/a
Pipettes en verre, tiréesHirschmann Laborgeraete, Allemagne9100175
Seringue en verre 10 uLHamilton, États-UnisCanules guides 701 LT et 1701 LT
Bio Scientific, AustralieC313G/SPC22 G, coupé à 4 mm sous le socle pour la canulation du ventricule latéral chez les rats adultes Sprague Dawley
Hémostat
Stérilisateur à billes de chaleurInotech, SuisseIS-250
Coussin chauffantn/an/a
Peroxyde d’hydrogène 3 %Perrigo, Australie11383
Chambre d’induction (Perspex 300 mm x 200 mm)n/an/ une
canule d’injecteurBio Scientific, AustralieC313I/SPCcoupée pour s’adapter à la canule de 4 mm + projection de 0,5 mm
IsofluraneClifford Hallam Healthcare, Australie2093803
Vaporisateur d’isoflurane et système de balayage approprién/an/a n/a
Bateaux de pesée de taille moyennen/an/a
spatuleen métalMet-App, Australien/a
Micro pousse-seringueNew Era, États-UnisNE-300
MicrodrillRWD Life Science Co, Chine87001
Polymyxine BBeta Pharma, Chine86-40302
Tubes Protein LoBind, 0,5 mLEppendorf, AllemagneZ666491
Ropivacaïne 1 %; NaropinAstraZeneca, Royaume-UniPS09634
Ciseaux, grandF.S.T.14511-15
Ciseaux, petitsF.S.T.14079-10
Tournevisn/an/a
VisMr. Specs, Australien/a
Cadre stéréotaxiqueRWD Life Science Co, Chinen/aComposants nécessaires : barres d’oreille de rat, barre dentée, cône de nez d’anesthésie, bras avec affichage numérique (X, Y, Z) et porte-canule
Solution saline stérile 0,9 %Baxter, États-UnisAHB1323
Gel super mordançant (37 % d’acide phosphorique)SDI Limited, Australie8100045
SuperglueUHU, Allemagnen/a
Pince à tissus avec crochetsF.S.T.11027-12
Tube, PE-50Bio Scientific, AustralieC313CT

Références

  1. Goldmann, E. E. Vitalfärbung am Zentralnervensystem. Beitrag zur Physio-Pathologie des Plexus chorioideus und der Hirnhäute. Königl. Akademie der Wissenschaften. , Berlin. (1913).
  2. Koziara, J. M., Lockman, P. R., Allen, D. D., Mumper, R. J.

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Réimpressions et autorisations

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