Summary

مقايسة لتحريض العصبية في الأجنة الفرخ

Published: February 13, 2009
doi:

Summary

الحث العصبي هو الخطوة الأولى في تكوين الدماغ. وهو الآلية التي عقدة هنسن (المنظم) ، يرشد النسيج المجاور لاعتماد مصير العصبية ، أي أن تثير الجهاز العصبي. هذا الفيديو يوضح مقايسة لتحريض العصبي في الأجنة الفرخ.

Abstract

الجنين الفرخ هو أداة قيمة في دراسة التطور الجنيني المبكر. شفافيته ، وسهولة الوصول وسهولة التلاعب ، وجعلها أداة مثالية لدراسة تشكيل والزخرفة الأولية للنظام العصبي. هذا الفيديو يوضح كيفية نسيج منظم الكسب غير المشروع إلى المضيف ، والطريقة التي يتم المطعمة عقدة هنسن ق (المنظم في جنين الفرخ) إلى الأديم الظاهر المضيف المختصة. الكسب غير المشروع منظم يرشد المغطي غ لقد الأنسجة لاعتماد مصير العصبية عبر إشارات العصبية المحفزة. ويشار إلى هذه الآلية والحث العصبي ، ويشكل الخطوة الأولى في تكوين الدماغ والحبل الشوكي في amniotes. ويستخدم هذا الأسلوب أساسا لتوصيف جزيئات المفترضة تحريض العصبي في الفرخ. هذا الفيديو يوضح الخطوات المختلفة في مقايسة لتحريض العصبي ؛ أولا ، explanted الجنين donnor ويعلق على طبق. ثم ، على استعداد الجنين المضيف للثقافة الجديدة. والكسب غير المشروع ورفعه إلى الهامش زرع المنطقة الشفافة المضيف. هو مثقف المضيف 18-22 ساعة. تم إصلاح التجمع وتجهيزها لتطبيقات أخرى (مثل التهجين في الموقع). ولقد ابتكر هذا الأسلوب أصلا بواسطة ادينغتون<sup> 1،2</sup> وGallera<sup> 3،4</sup>.

Protocol

أولا تخطيطي لمحة عامة : هذا الفيديو يوضح الخطوات المختلفة في مقايسة لتحريض العصبي في الأجنة الفرخ. الأول ، هو explanted الجنين المضيف ف…

Discussion

هذا الفيديو يوضح الخطوات المختلفة في إجراء عملية فحص لتحريض العصبي ، ويستخدم هذا الاختبار أساسا لتوصيف جزيئات المفترضة تحريض العصبي في الفرخ ، وبالتالي يمكن استخدامه لمجموعة متنوعة واسعة من التطبيقات ، بدءا من micromanipulations الجنينى 1-4 ؛ 6 إلى شلالات جديدة كشف إشار…

Acknowledgements

موانئ دبي هي المستفيدة من جائزة روث 1F32 – 01A1 كيرشتاين DA021977 من المعهد الوطني لتعاطي المخدرات. وأيد هذا العمل من قبل مؤسسة مارغريت Alkek M. إلى RHF.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Eggs Animal Charles River Laboratories Premium Fertile Fertilized, HH3+ (14 hr)
Stereomicroscope Microscope Leica Microsystems MZ9.5 or similar  
Hybridization Incubator Equipment Robbins Scientific M1000 Use with inverted Pyrex dish and 500 ml ddH2O beaker
Marsh Automatic Incubator Equipment Lyon RX  
Pyrex dish        
Watchmaker’s glass 50mm Tool VWR 66112-060  
Glass rings Tool Physical Plant facility   cut 4 mm thick sections of glass tubing (27 mm outer diam, 25 mm inner diam). Do not fine polish.
Curved Forceps (1) Tool Electron Microscopy Sciences 72991-4C  
Forceps (2) Tool Fine Science Tools 11002-13 blunt ended using sharpening Stone and 100ul mineral oil
Fine scissors Tool Fine Science Tools 14161-10  
Plastic dishes Tool Falcon 353001  
Rubber Bulb Tool Electron Microscopy Sciences 70980  
DiI Reagent Invitrogen D-282  
Aspirator tube assembly Tool Sigma A5177-5EA  
Microelectrode puller Equipment Sutter Instruments Sutter Instruments P-97 Flaming/Brown Micropipette  
Pasteur Capillary Pipette Tool Electron Microscopy Sciences 70950-12 round edge under flame
Culture chamber Tool Pioneer Plastics 030C  
Microcapillary tube Tool Sigma P1049-1PAK  
Microdissecting knife Tool Fine Science Tools 10056-12 Use to puncture cavities prior to in situ hybridization
Minuten pins 0.2mm diam Tool Fine Science Tools 26002-20 Mix 1 part Curing Agent, 9 parts Base; set O/N at 37C
Diethylpyrocarbonate (depc) Reagent Electron Microscopy Sciences 15710  
Sylgard 184 Silicon Elastomer Curing Agent and Base   Dow Corning 0001986475 Mix 1 part Curing Agent, 9 parts Base; set O/N at 37C
Diethylpyrocarbonate (depc)   Acros Organics 10025025 Add 1ml depc to 1l PBS; shake; autoclave
16% PFA   Electron Microscopy Sciences 15710  

References

  1. Waddington, C. H. Experiments on the development of chick and duck embryos, cultivated in vitro. Phil. Trans. R. Soc. Lond. B. 221, 179-230 (1932).
  2. Waddington, C. H. Induction by the primitive streak and its derivatives in the chick. J. Exp. Biol. 10, 38-46 (1933).
  3. Gallera, J. Excision et transplantation des diff&eacute;rentes r&eacute;gions de la ligne primitive chez le poulet. C. R. Ass. Anat. 49, 632-639 (1964).
  4. Gallera, J. Primary induction in birds. Adv. Morph. 9. , 149-180 (1971).
  5. Serbedzija, G. N., Fraser, S. E., Bronner-Fraser, M. Pathways of neural crest cell migration in the mouse embryo as revealed by vital dye labeling. Development 108. , 605-612 (1990).
  6. Psychoyos, D., Stern, C. D. Restoration of the organizer after radical ablation of Hensen’s node and the anterior primitive streak in the chick embryo. Development 122. , 3263-3273 (1996).
  7. Joubin, K., Stern, C. D. Molecular interactions continuously define the organizer during the cell movements of gastrulation. Cell. 98, 559-571 (1999).
  8. Streit, A., Berliner, A. J., Papanayotou, C., Sirulnik, A., Stern, C. D. Initiation of neural induction by FGF signaling before gastrulation. Nature. , 406-474 (2000).
  9. Psychoyos, D., Finnell, R. Method for Culture of Early Chick Embryos ex vivo (New Culture. JoVE. 20, 10-3791 (2008).
check_url/1027?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Psychoyos, D., Finnell, R. Assay for Neural Induction in the Chick Embryo. J. Vis. Exp. (24), e1027, doi:10.3791/1027 (2009).

View Video