从大鼠股骨和胫骨中分离出MSCs,并通过磁性细胞分选进行富集。通过流式细胞术确认分选细胞表面标志物的表达。这些细胞还在克隆密度下培养以形成单个克隆,然后使用克隆环分离这些克隆。
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从大鼠股骨和胫骨中分离出MSCs,并通过磁性细胞分选进行富集。通过流式细胞术确认分选细胞表面标志物的表达。这些细胞还在克隆密度下培养以形成单个克隆,然后使用克隆环分离这些克隆。
1. 大鼠MSCs的分离
间充质干细胞取自6至8周龄的Sprague-Dawley雌性大鼠,分离方法如前所述1, 2。分离得到的MSCs可贴附于塑料表面,并在体外培养中易于扩增。
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本方案描述了如何分离和富集间充质干细胞(MSCs),并包含一种分离单克隆来源细胞的方法。成功的分离、富集及克隆分离涉及多个关键步骤。从大鼠中进行细胞分离时,建议通过细胞筛网或类似孔径的无菌尼龙膜过滤,以去除血凝块和骨碎片。细胞接种过夜后,培养基中会漂浮大量死亡细胞,此时更换新鲜培养基可去除死细胞,从而促进贴壁细胞的生长。
本方案中的磁性细胞分选技术描述了如何进行阳性筛选,类似的操作流程也可用于进行阴性筛选。抗体的添加量可能有所不同,需进行优化以获得更佳的分选效果。细胞标记用于流式细胞术分析时同样需要优化。若标记后的样本不能立即进行流式细胞术分析,可用2%甲醛固定后延迟检测。然而,不建议长期保存样本,因为这往往会导致自发荧光增强,从而降低样本质量。
菌落分离的关键在于以合适的细胞密度进行接种(需通过实验优化确定)以及挑选周围无其他克隆的单个克隆。如果附近存在其他克隆,克隆环可能会覆盖邻近的克隆,导致所获得的细胞不再来源于单一克隆。将克隆环放置于克隆上方时,注意不要在培养皿表面滑动,否则克隆环底部的硅脂会覆盖细胞,阻碍胰蛋白酶.......
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本工作部分得到了美国国立卫生研究院(R01GM079688、R21RR024439 和 R21GM075838)、美国国家科学基金会(CBET 0941055)以及密歇根州立大学基金会的资助。
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| 姓名 | 公司 | 目录编号 | 评论 |
|---|---|---|---|
| 1X D-PBS | Invitrogen | 14040-133 | |
| DMEM | Invitrogen | 11885-084 | |
| 细胞筛 | BD Biosciences | 352350 | |
| FBS | Invitrogen | 26140-079 | |
| 青霉素-链霉素 | Invitrogen | 15140 | |
| 胰蛋白酶-EDTA | Invitrogen | 25200-056 | |
| BD Imagnet | BD Biosciences | 552311 | |
| 生物素标记小鼠IgG2a | BD Biosciences | 555572 | |
| 生物素标记小鼠IgG1 | BD Biosciences | 555747 | |
| 生物素标记抗大鼠CD54抗体 | Cedarlane Labs | CL054B | |
| 生物素标记抗大鼠CD90抗体 | Cedarlane Labs | CL005B | |
| 生物素标记抗大鼠CD45抗体 | Cedarlane Labs | CL001B | |
| BD Imag缓冲液 | BD Biosciences | 552362 | |
| 圆底管 | BD Biosciences | 352063 | |
| 链霉亲和素磁珠 | BD Biosciences | 557812 | |
| SA-PE | R&D Systems | F0040 | |
| 克隆环 | Sigma-Aldrich | C2059 |
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