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Articolo metodologico

Determinazione del tessuto Utilizzando il trapianto Cap animali (ACT) Assay in Xenopus laevis

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DOI:

10.3791/1932

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16 maggio 2010

 , 

In questo articolo

Sommario

Animale tappi iperespressione del gene prodotto (s) sono trapiantati al fianco di sviluppo Xenopus laevis Embrioni al fine di stabilire se il tessuto è determinata.

Abstract

Molte proteine ​​svolgono un duplice ruolo nello sviluppo embrionale. Quelle che regolano il destino determinazione delle cellule in un tessuto specifico può anche influenzare lo sviluppo di una regione più ampia dell'embrione. Questo rende la definizione del suo ruolo in un tessuto particolare difficile da analizzare. Per esempio,

Protocollo

Parte I. Set-up per l'analisi ACT

  1. Generare RNA ricoperto per iniezione come suggerito dal produttore, usando il loro fenolo: cloroformio metodo di purificazione (es. mMessage mMachine Kit; Applied Biosystems / Ambion, Austin, TX). RNA che codifica per una proteina fluorescente viene usato come tracciante. Trascriviamo sia proteina fluorescente gialla (YFP) o mCherry 5 cDNA, che si trova in un vettore di espressione pCS2 +.
  2. Tirare tubi in vetro borosilicato capillari per formare punte di vetro affusolata con un estrattore micropipetta. Noi usiamo Sutter Micropipetta Puller, P-97 (Sutter Instruments, Inc., Novato, CA), come descritto in ....

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Discussione

In questo video, abbiamo dimostrato la nostra versione di tecniche classiche utilizzate dai biologi Xenopus, che noi ruotare per ottenere il tappo test animali trapianto. A temperatura ambiente, embrioni di Xenopus sviluppano molto rapidamente attraverso le fasi 9 e 15. Ponendoli a 14 ° C, lo sviluppo dell'embrione viene rallentato e trapianti di molti altri possono essere eseguite in un esperimento. Se è necessario far crescere gli embrioni a stadi vecchi (> 42/43), poi si consiglia di utilizza.......

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Ringraziamenti

Questo lavoro è stato supportato anche da finanziamenti di ricerca per la Prevenzione della Cecità (Career Development Awards di MEZ e ASV e un finanziamento non vincolante per il Dipartimento di Oftalmologia), la Fondazione E. Matilda Zeigler (MEZ e ASV) e il National Eye Institute / NIH (MEZ , borse di studio e R01EY015748 R01EY017964).

....

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Kit mMessage mMachine SP6Applied BiosystemsAM1340
Tubi capillari in borosilicato (1,0 mm di diametro esterno x 0,5 mm di diametro interno)FHC, Inc.27-30-1
Tiratore di micropipette SutterSutter Instrument Co.P-97
Solfato di gentamicina [50 mg/ml]Fisher ScientificBW17-528Z
Kit Sylgard/elastomero 1,1 lbFisher ScientificNC9644388
Piatto di Petri in polistirene 60 x 15 mmUSA Scientific, Inc.8609-0160
gonadotropina corionica umanaIntervet Inc.22219
Sistemi di microiniezione Pico-InjectorHarvard Apparatus650003
Incubatore Torrey Pines Scientific ECHOthermFisher Scientific11-680-21
Pipetta di trasferimentoKrackeler Scientific, Inc.6290-20635A
Pinzette Dumostar n. 5Fisher Scientific11295-10

Riferimenti

  1. Smith, W. C., Harland, R. M. Expression cloning of noggin, a new dorsalizing factor localized to the Spemann organizer in Xenopus embryos. Cell. 70, 829-840 (1992).
  2. Lamb, T. M. Neural induction by the secreted polypeptide noggin. Science. 262

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Ristampe e permessi

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