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Method Article

造血干细胞与祖细胞克隆的培养与收获:一种获取单细胞分选造血干细胞与祖细胞克隆的方法

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⸱

April 30th, 2023

In This Article

Abstract

来源:Huber, A. R.,等。人类血液突变负荷与克隆组成的表征。J. Vis. Exp. (2019)。

本视频介绍了从骨髓中分离造血干细胞和祖细胞(HSPCs)并使用荧光激活细胞分选技术对其进行分选的实验方案,该方法可用于获得单细胞分选的HSPCs。我们将这些分选后的细胞进行培养,以获得HSPC克隆。

Protocol

1. HSPC 的分离、分选与培养

  1. 在 350 × g 条件下离心 1–2 × 107 个单个核细胞 5 分钟,弃上清,将细胞重悬于 50 μL FACS 缓冲液中。再将细胞沉淀重悬于 100 μL 抗 CD3 染色液中(抗 CD 抗体以 FACS 缓冲液按 1:100 稀释)。将细胞转移至微量离心管中。
    注意:当分选细胞数量超过 >2 × 107 个时,应相应增加抗体混合液和 FACS 缓冲液的体积。
  2. 根据表 1中的配方配制 50 μL 2× HSC 染色混合液。
  3. 将 50 μL 细胞悬液与已配制的 HSC 染色混合液混合,在室温(RT)孵育 15 分钟,或在冰上孵育 1 小时,以使抗体充分结合。
  4. 加入 1 mL FACS 缓冲液洗涤细胞,然后在 350 × g 条件下离心 5 分钟,收集细胞沉淀。
  5. 将细胞重悬于 300 μL FACS 缓冲液中,并通过装有 35 µm 细胞滤网帽的 5 mL 聚苯乙烯管过滤细胞悬液,以去除细胞团块,随后进行荧光激活细胞分选(FACS)。
  6. 配制 25 mL HSPC 培养基,成分为含 100 ng/mL SCF、100 ng/mL Flt3、50 ng/mL TPO、10 ng/mL IL-3、20 ng/mL IL-6 和 100 ng/mL 抗生素制剂的 1× SFEM 培养基(参见材料表)。
  7. 向 384 孔细胞培养板的每个孔中加入 75 μL HSPC 培养基。
    注意:为防止边缘孔中培养基蒸发,可在边缘孔中加入 75 μL 无菌水或 PBS,且这些孔不用于细胞分选。
  8. 单个 HSPC 的分选
    1. 根据未染色对照(单独分选的 HSC)和染色样本中的 10,000 个细胞设定 HSPC 分选门控。门控设置的代表性结果见图 1。通过在 FSC-高度与 FSC-面积散点图中圈选线性分布区域来设定单细胞门控。使用未染色对照样本设定谱系- 细胞门控。设定 CD34+ 细胞门控,并进一步通过设定 CD38- CD45RA- 细胞的特异性门控对该亚群进行表征。
    2. 将 384 孔板装载至 FACS 仪器上,进行单细胞分选。
      注意:若 FACS 仪器支持,请开启索引分选数据记录功能,以便后续追溯已分选细胞。
  9. 单独分选 HSC 的培养
    1. 立即将 384 孔板转移至含 5% CO2 的 37 °C 恒温湿润培养箱中。
      注意:为防止培养过程中培养基蒸发,应用透明聚乙烯薄膜包裹 384 孔培养板(带盖)。
    2. 将 384 孔板在培养箱中培养 3–4 周,直至可见克隆形成。克隆培养的代表性图像见图 2。根据起始材料的状态,约有 5%–30% 的分选细胞可发生克隆扩增。
抗体体积 [μL]
BV421-CD345
FITC-谱系混合抗体(CD3/14/19/20/56)5
PE-CD382
APC-CD900.5
PerCP/Cy5.5-CD45RA5
PE/Cy7-CD49f1
FITC-CD161
FITC-CD11b5
FACS 缓冲液25.5

表1:造血干细胞分选混合液。 下表列出了用于分选造血干细胞的抗体稀释比例。

2. 收获HSPC克隆

  1. 培养 4 周后,确定哪些孔的融合度达到 30% 或更高。
  2. 为每个单克隆扩增样本,预先在 1.5 mL 离心管中加入 1 mL 含 1% BSA 的 PBS,并根据对应的孔标记管子。
  3. 用含 1% BSA 的 PBS 预润湿移液枪头,以尽量减少细胞黏附在枪头上的数量。
  4. 使用 200 μL 移液器(设定体积为 75 μL)在孔中剧烈吹打培养基上下至少 5 次,并刮擦孔底以使细胞充分脱落,随后将细胞悬液收集至对应标记的离心管中。
  5. 吸取 75 μL 新鲜的含 1% BSA 的 PBS,重复吹打孔内残留物,以确保最大程度回收细胞。
    注意: 单克隆培养的细胞可能黏附于孔底。请使用标准倒置光学显微镜检查各孔,确认所有细胞是否已被完全收集。
  6. 若所有融合度 >30% 的孔均已收集完毕,将 384 孔板放回培养箱继续培养。单克隆培养物可继续增殖长达 5 周。
  7. 将细胞悬液在 350 × g 条件下离心 5 分钟,应可见少量沉淀。
  8. 小心吸除上清液,仅保留约 5 μL。细胞沉淀可在 -20 °C 冻存,并可保存数月后再进行 DNA 提取。

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Results

细胞分选流程图:从新鲜/冷冻样本通过克隆培养、T细胞分离获得DNA。
图1:根据起始材料显示实验流程的流程图。 请点击此处查看此图的放大版本。

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
CD11c FITCBioLegend301603克隆 3.9
CD16 FITCBioLegend302005克隆 3G8
CD3 BV650BioLegend300467克隆 UCHT1
CD34 BV421BioLegend343609561
CD38 PEBioLegend303505克隆 HIT2
CD45RA PerCP/Cy5.5BioLegend304121克隆 HI100
CD49f PE/Cy7BioLegend313621克隆 GoH3
CD90 APCBioLegend328113克隆 5E10
5 mL 细胞筛Corning352235
CELLSTAR 384 孔板,130 µL,F 型底,组织培养级,带盖Greiner781182
人 Flt3 配体,高纯度级别Miltenyi Biotech130-096-479用含 0.1% BSA 的 PBS 重悬,分装为单次使用量(25 μL),浓度为 100 μg/mL
人重组 IL-3(大肠杆菌表达)Stem Cell Technologies78040.1用含 0.1% BSA 的 PBS 重悬,分装为单次使用量(2.5 μL),浓度为 100 μg/mL
人重组 IL-6(大肠杆菌表达)Stem Cell Technologies78050.1用含 0.1% BSA 的 PBS 重悬,分装为单次使用量(5 μL),浓度为 100 μg/mL
人 SCF,高纯度级别Miltenyi Biotech130-096-695用含 0.1% BSA 的 PBS 重悬,分装为单次使用量(25 μL),浓度为 100 μg/mL
人 TPO,高纯度级别Miltenyi Biotech130-095-752用含 0.1% BSA 的 PBS 重悬,分装为单次使用量(12.5 μL),浓度为 100 μg/mL
谱系标记抗体(CD3/14/19/20/56)FITCBioLegend348701克隆:UCHT1、HCD14、HIB19、2H7、HCD56
PBS由研究所设施配制,也可使用市售 PBS
PrimocinInvivogenant-pm-1抗生素制剂

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