Summary

Murine Echocardiography 및 초음파 이미징

Published: August 08, 2010
doi:

Summary

이 동영상은 anesthetized 마우스 echocardiography을 수행하는 레일 마운트 고주파 초음파 프로브의 사용을 보여줍니다. 방법은 컬러 도플러, 스트레인 분석뿐만 아니라 일반 목표 대비 이미징과 같은 새로운,보다 강력한 도구 이외에도 심장 기능을 모두 종래의 2 차원 및 M 모드 측정을 설명합니다.

Abstract

심장 pathophysiology의 설치류 모델은 질병의 메커니즘뿐만 아니라, 시험 새로운 치료제 1. Echocardiography가 순차적으로 살아있는 동물에서 심장 morphometry과 기능을 평가하기위한 강력하고, 비침습 도구를 제공합니다을 조사하기위한 중요한 연구 도구를 나타냅니다. 2 그러나,이 기술을 사용 생쥐의 작은 크기와 이들 동물의 빠른 심장 박동에 때문에 독특한 도전 포즈. 3 최근까지 몇 초음파 시스템은 마우스의 품질 echocardiography을 수행할 수 있었는데, 이들은 일반적으로 이미지 해상도와 진정으로 양적 측정을 얻기 위해 필요한 프레임 속도 부족 . 같은 VisualSonics Vevo2100로 새롭게 출시된 시스템은 신중하게하고 비 invasively 생쥐의 심장 기능을 조사 연구를위한 새로운 도구를 제공합니다. 이 시스템은 고해상도 이미지를 생성하고 인간의 환자와 함께 사용할 것과 유사한 분석 기능을 제공합니다. 컬러 도플러 인간에서 30 년 이상 사용할 수 있지만,이 가치있는 기술은 최근 쥐 초음파 가능했습니다. 4,5 컬러 도플러는 신속하게 선박 및 밸브를 통해 유량 방향을 평가할 수있는 능력을 포함 echocardiography에 대한 광범위한 응용 프로그램을 가지고 빠르게 밸브 병리 현상을 식별할 수 있습니다. 스트레인 분석 양적 지역 심근 기능을 측정하기 위해 활용되는 중요한 발전이다. 6이 기술은 이전의 기존 기술보다, 병리의 병리 변화하거나, 해상도를 감지할 수있는 잠재력이있다. 입체 영상 재건의 추가, 전체 – 장기의 용적 평가와 결합하는 것은 심장과 혈관 구조의 시각화 및 평가를 포함하여 가능합니다. Murine 호환 대비 영상은 용적 측정과 조직 재관류 평가에 대해 허용할 수 있습니다.

Protocol

1. 이미지 준비 부정사 위치에 동물 처리 플랫폼 isoflurane anesthetized 마우스를 확보하여 시작합니다. 동물의 코와 마취를 유지하기 위해 isoflurane 0.5-1 %를 제공하는 입을 통해 코 콘 놓으십시오. 젤 수행과 전극 패드로 마우스의 갈퀴 손을 고정합니다. 적절한 ECG, 37에서 체온 ° C 및 이미징 동안 생리적 평가를위한 호흡 속도를 확인하십시오. 보장 마우스의 가슴과 복부 상단에 …

Discussion

시리얼 고주파 echocardiography 특히 심장 질환의 murine 모델에서 심장 형태 및 기능의 비침습, 고해상도의 평가를위한 강력한 도구로 떠오르고있다. 생리적 체온뿐만 아니라 전에 마취 수준을 조정 이미지를 획득하기 위해하여 생쥐 간의 비교 심장 속도를 유지하는 것이이 방법의 성공에 중요합니다. 모든 이미지는 같은 생체를 (젖꼭지 근육에서 예 parasternal 긴 축 영상)를 사용하여 얻을 수 있습니다…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

HL084087, HL089885, HL091475, S10RR027946, T32 GM07356 : 소스를 기금

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Vevo 2100 Imaging System (120V)   Visual Sonics VS-11945  
Vevo 2100 Imaging Station 1   Visual Sonics SA-11982  
Ultrasound Gel   Parker Laboratories 01-08  
Isoflurane   Abbott Laboratories 05260-05  
Vevo Compact Dual Anesthesia System   Visual Sonics SA-12055  

References

  1. Patten, R. D., Hall-Porter, M. R. Small animal models of heart failure: development of novel therapies, past and present. Circ Heart Fail. 2, 138-144 (2009).
  2. Li, Y. Quantification and MRI Validation of Regional Contractile Dysfunction in Mice Post Myocardial Infarction Using High Resolution Ultrasound. Ultrasound in Medicine & Biology. 33, 894-904 (2007).
  3. Gardin, J. M., Siri, F. M., Kitsis, R. N., Edwards, J. G., Leinwand, L. A. Echocardiographic Assessment of Left Ventricular Mass and Systolic Function in Mice. Circ Res. 76, 907-914 (1995).
  4. JG, S. t. e. v. e. n. s. o. n., Weiler, T. B. M., EA, H. o. w. a. r. d., Eyer, M. Digital multigate Doppler with color echo and Doppler display – Diagnosis of atrial and ventricular septal defects. Circulation. 60, (1979).
  5. Patten, R. D., Aronovitz, M. J., Bridgman, P., Pandian, N. G. Use of pulse wave and color flow Doppler echocardiography in mouse models of human disease. J Am Soc Echocardiogr. 15, 708-714 (2002).
  6. Hoit, B. D. Echocardiographic characterization of the cardiovascular phenotype in rodent models. Toxicol Pathol. 34, 105-110 (2006).
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Cite This Article
Pistner, A., Belmonte, S., Coulthard, T., Blaxall, B. C. Murine Echocardiography and Ultrasound Imaging. J. Vis. Exp. (42), e2100, doi:10.3791/2100 (2010).

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