Förmågan att manipulera mänskliga neurala stamceller / föregångare celler (hNSPCs) in vitro gör det möjligt att undersöka deras nytta som cell transplantationer i terapeutiskt syfte och för att utforska människans neurala utveckling. Detta protokoll presenteras en metod för odling och passaging hNSPCs i hopp om att öka reproducerbarhet av mänskliga stamceller.
Abstract
Förmågan att manipulera mänskliga neurala stamceller / föregångare celler (hNSPCs) in vitro ger en möjlighet att undersöka deras nytta som cell transplantationer för terapeutiska ändamål samt att utforska många grundläggande processer av mänskliga neurala utveckling och patologi. Detta protokoll utgör en enkel metod för odling och passaging hNSPCs i hopp om att standardisera denna teknik och ökad reproducerbarhet av mänskliga stamceller. Det hNSPCs vi använder var isolerade från avliden efter födsel hjärnans cortex av National Human Neural Stem Cell Resurs och vuxit som anhängare kulturer på flaskor belagda med fibronektin (Palmer et al, 2001;.. Schwartz et al, 2003). Vi kulturen våra hNSPCs i en DMEM: F12 serumfritt medier kompletteras med fonden, FGF och PDGF och passagen dem 01:02 ungefär var sjunde dag. Med hjälp av dessa villkor, majoriteten av cellerna i kulturen upprätthålla en bipolär morfologi och uttrycka markörer för odifferentierade neurala stamceller (som nestin och sox2).
Protocol
Obs: För rutinmässig odling av våra hNSPCs, vi ändrar 50-100% av media varannan dag och oftast passagen dem 1:02 gång i veckan. Kulturen medier innehåller 20% BIT-9500, 1X antibiotika / antimykotika och tillväxtfaktorer (EGF, FGF och PDGF vardera 40 ng / ml) i DMEM: F12 basen medier. Förbereda Coated Flask och ta avstånd Celler För att förbereda nya flaskor för passerats celler, päls T25 kolvar med 10 mikrogram / ml humant fibronektin i EMEM i 4 timmar eller ?…
Discussion
Vi har funnit att detta protokoll ger tillförlitliga kulturer hNSPCs. En kritisk faktor för våra celler är att de måste hållas som tämligen tät kulturer och kan inte passerats till den grad att cellerna är gles. I våra händer, glesa kulturer växer mycket långsamt eller helt upphör att dela sig. Av denna anledning delar vi oftast våra kulturer 1:2 eller 1:3 när en kultur är mycket tät. Beläggning ytan av en kultur fat med fibronektin är viktigt eftersom det främjar god cellbindning och migration, men till skillnad från …
Acknowledgements
Författarna erkänner tacksamt Dr Philip H. Schwartz av den nationella människorättskommissionen Neural Stem Cell Resurs vid barnsjukhuset i Orange County Forskningscentralen för att ge hNSPCs och inledande undervisning i sin odling.
Materials
Material Name
Type
Company
Catalogue Number
Comment
BIT-9500 (BSA, Insulin, Transferrin)
Reagent
Stem Cell Technologies
09500
Antibiotic-Antimycotic
Reagent
Invitrogen
15240-062
DMEM:F12 (1X)
Reagent
Invitrogen
11330-032
EMEM (1X)
Reagent
Mediatech
MT-10-010-CV
Distributed by Fisher under the indicated catalog #
Fetal Bovine Serum
Reagent
Invitrogen
10437-028
FGF, human basic recombinant
Reagent
Peprotech
100-18B
PDGF-AB
Reagent
Peprotech
100-00AB
EGF, human recombinant
Reagent
BD Biosciences
CB40052
Distributed by Fisher under the indicated catalog #
Cell Culture Flask, 25 cm2
Tool
Corning
10-126-28
Distributed by Fisher under the indicated catalog #
Fibronectin, human, natural
Reagent
BD Biosciences
CB40008A
Distributed by Fisher under the indicated catalog #
Human Neural Stem/Precursor Cells
Cells
National Human Neural Stem Cell Resource http://www.nhnscr.org/default.htm
Nethercott, H. N., Maxwell, H., Schwartz, P. H., Loring, J. F., Wesselschmidt, R. W., Schwartz, P. H. Neural stem cell culture.Human Stem Cell Manual: A Laboratory Guide. , (2007).