Summary

RNAi Medierad Gene Knockdown och genmodifiering genom mikroinjektion i Necromenic Nematode Pristionchus pacificus</em

Published: October 16, 2011
doi:

Summary

I modellorganismer kan genmodifiering manipulera genfunktioner medan RNAi kan ÖVERVÄLDIGANDE specifika mRNA transkript 1-2. Detta protokoll syftar till att illustrera de tekniker som behövs för att införa stabilt överförs DNA och övergående dubbelsträngat RNA i necromenic nematoder<em> Pristionchus pacificus</em> För studier i evolutionär, utvecklings-och beteendevetenskaplig biologi.

Abstract

Även om det är allt överkomligt för nya modellorganismer för att få helt sekvenserade genom ytterligare fördjupad geners funktion och analyser uttryck genom RNA-interferens och stabil genmodifiering förblir begränsade i många arter på grund av särskilda anatomi och molekylär cellbiologi av organismen. Till exempel har utanför kronan gruppen Caenorhabditis som inkluderar Caenorhabditis elegans 3, stabilt överförs transgena linjerna i icke-Caenorhabditis arter som inte redovisats i denna bestickande fylum (Nematoda), med undantag för Strongyloides stercoralis 4 och Pristionchus pacificus 5. För att underlätta den växande roll P. pacificus i studien av utveckling, evolution och beteende 6-7, beskriver vi här de nuvarande metoderna att använda mikroinjektion för att göra transgena djur och genen slå ner med RNAi. Liksom gonaderna i <em> C. elegans och de flesta andra nematoder, könskörtlarna av P. pacificus är syncitial och kan integrera DNA och RNA i ägg när de levereras av direkta mikroinjektion. Till skillnad från C. elegans dock stabil transgenen arv och somatiska uttryck i P. pacificus kräver tillsats av själv arvsmassans DNA kokas med endonukleaser komplement till ändarna på mål transgener och markörer coinjection 5. Tillägget av bärare arvsmassans DNA liknar kravet på transgenen uttryck i Strongyloides stercoralis 4 och i könsceller av C. elegans. Det är dock oklart om specifika krav för djurens egna arvsmassans DNA beror på s. pacificus Soma är mycket effektiv att tysta okomplicerade flera exemplar gener eller att extrakromosomala arrayer i P. pacificus kräver genomiska sekvenser för korrekt kinetochor montering under mitosen. Den ventrala migrering av två beväpnade (didelphic) gonaderna hermafroditer ytterligare komplicerar möjligheten att injicera både gonader i enskilda maskar 8. Vi visar också användningen av mikroinjektion att ÖVERVÄLDIGANDE en dominant mutation (rulle, tu92) genom att injicera dubbelsträngat RNA (dsRNA) i könskörtlarna att få icke-rullande F 1 avkomma. Till skillnad från C. elegans, men liksom de flesta andra nematoder, s. pacificus PS312 är inte mottaglig för systemisk RNAi via matning och blötläggning och därför dsRNA måste administreras genom mikroinjektion i syncitial gonaderna. I den här aktuella studien hoppas vi att beskriva mikroinjektion processen som behövs för att förvandla en PPA-EGL-4 promotorn:: GFP fusion reporter och ÖVERVÄLDIGANDE en dominerande roller PRL-1 (tu92) mutant i en visuellt informativa protokoll.

Protocol

1. Genmodifiering: DNA-preparation Dominerande co-injektion markör: pRL3 [PPA-PRL-1 (tu92)] Den pRL3 plasmiden är en dominerande co-injektion markör för visuellt identifiera framgångsrika omvandling händelser. Denna plasmid kodar för en dominerande mutant allel (tu92) av PPA-PRL-1 genen nära samband med sqt-1 kollagen-genen i C. elegans och förvandlar wildtype sinusformade rörelseorganen i medurs vridning rörelser längs masken kropp axel…

Discussion

P. pacificus populationer finns i nära samarbete med olika arter skarabé skalbagge över hela världen och är en modell nematod mellanting mellan fria levande och parasitiska nematoder. Styrkan i P. pacificus som en ny modell organism låg i integrationen av genetiska och fysiska kartor som främjar positionella kartläggning av mutanter isolerade från objektiva framåt genetiska skärmar (dvs. inte bara för kandidatgener tidigare karaktäriserat i C. elegans) 6,10. Me…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Författarna är mycket tacksamma till RJ Sommer och X Wang för hjälp med mikroinjektion, samt kommentarer insiktsfulla från den anonyma granskare. Detta arbete stöds av NIH bidrag SC2GM089602.

Materials

Product: Catalog #: Supplier:
DMI3000 Injection microscope DMI3000 Leica
Microinjector manipulator (Direct drive) Narashige BC-3 Ball joint Tritech Research
Needle Puller Narashige PC-10 Tritech Research
MicroInjector™ All-Digital Multi-pressure System Narashige MINJ-D Tritech Research
GeneElute™Mammalian Genomic DNA Miniprep Kit G1N70 Sigma
pJet Cloning Jet kit K1231 Fermentas
GeneJET plasmid Miniprep kit K0502 Fermentas
DNA Clean & Concentrator™ D4005 ZYMO Research
BLOCK-IT™ RNAi TOPO® transcription kit K3500-01 & K3650-01 Invitrogen
Difco™Agar Noble DF0142-15-2 Fisher Scientifi
Microscope cover glass (1.5 – 0.16 to 0.19mm thick; Size: 50 x 45mm) 12-554-F Fisher Scientific
Glass capillaries (filament) 615000 A-M systems
Paraffin Oil (Heavy) O122-1 Fisher Scientific
KH2PO4 P386-500 Fisher Scientific
Na2HPO4 AC20651-5000 Fisher Scientific
NaCl BP3581 Fisher Scientific
MgSO4 M80-500 Fisher Scientific

References

  1. Fire, A., Xu, S., Montgomery, M. K., Kostas, S. A., Driver, S. E., Mello, C. C. Potent and specific genetic interference by double-stranded RNA in Caenorhabditis elegans. Nature. 391, 806-811 (1998).
  2. Ahringer, J. Reverse Genetics. Wormbook. , (2006).
  3. Mello, C. C., Kramer, J. M., Stinchcomb, D., Ambros, V. Efficient gene transfer in C. elegans: extrachromosomal maintenance and integration of transforming sequences. EMBO J. 10, 3959-3970 (1991).
  4. Junio, A. J., Li, X., Massery, H. C., Nolan, T. J., Lamitina, S. T., Sundaram, M. V., Lok, J. B. Strongyloides stercoralis: cell- and tissue-specific transgene expression and co-transformation with vector constructs incorporating a common multifunctional 3′ UTR. Exp. Parasitology. 118, 253-265 (2008).
  5. Schlager, B., Wang, X., Braach, G., Sommer, R. J. Molecular cloning of a dominant roller mutant and establishment of DNA-mediated transformation in the nematode Pristionchus pacificus. Genesis. 47, 300-304 (2009).
  6. Hong, R. L., Sommer, R. J. Pristionchus pacificus: a well-rounded nematode. Bioessays. 28, 651-659 (2006).
  7. Hong, R. L., Sommer, R. J. Chemoattraction in Pristionchus nematodes and implications for insect recognition. Curr. Biol. 16, 2359-2365 (2006).
  8. Rudel, D., Riebesell, M., Sommer, R. J. Gonadogenesis in Pristionchus pacificus and organ evolution: development, adult morphology and cell-cell interactions in the hermaphrodite gonad. Dev. Biol. 277, 200-221 (2005).
  9. Chalfie, M., Tu, Y., Euskirchen, G., Ward, W. W., Prasher, D. C. Green fluorescent protein as a marker for gene expression. Science. 11, 802-805 (1994).
  10. Chaudhuri, J., Parihar, M., Pires-daSilva, A. An Introduction to Worm Lab: from Culturing Worms to Mutagenesis. J. Vis. Exp. (47), e2293-e2293 (2011).
  11. Evans, T. C. Transformation and Microinjection. Wormbook. , (2006).
check_url/3270?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Cinkornpumin, J. K., Hong, R. L. RNAi Mediated Gene Knockdown and Transgenesis by Microinjection in the Necromenic Nematode Pristionchus pacificus. J. Vis. Exp. (56), e3270, doi:10.3791/3270 (2011).

View Video