Summary

Måling af cytosole Ca 2 + I isolerede kontraktile lymfekar

Published: December 08, 2011
doi:

Summary

Vi introducerer en tilgang til at evaluere cytosol Ca<sup> 2 +</sup> Koncentration i isolerede lymfevejene at studere Ca<sup> 2 +</sup>-Afhængige og Ca<sup> 2 +</sup>-Sensibiliserende mekanismer af lymfatisk glatte muskelsammentrækning.

Abstract

Lymfekar omfatter et multifunktionelt transport-system, der sikrer flydende homeostase, leverer lipider til den centrale cirkulation, og fungerer som et overvågningssystem for potentielt skadelige antigener, optimering slimhinde immunitet og adaptive immunrespons 1. Lymfeknuder er dannet af interstitiel væske, der kommer ind blind-ended indledende lymfevejene, og derefter transporteres mod et tryk gradient i større indsamling lymfevejene. Hver indsamle lymfe består af en række segmenter kaldet lymphangions, adskilt af bicuspid ventiler, der forhindrer tilbageløb. Hver lymphangion besidder en kontraktile cyklus, der driver lymfeknuder mod et tryk gradient mod det centrale cirkulation 2. Denne phasic kontraktile mønster svarer til hjertets cyklus, med et systolisk og diastolisk faser, og med en lavere sammentrækning frekvens 4. Desuden genererer lymfe glat muskeltonus og viser myogenic konstriktion og dilatation jegn reaktion på stigninger og fald i luminale pres, henholdsvis 5. En hybrid af molekylære mekanismer, der understøtter både phasic og tonic kontraktilitet af lymfevejene er således foreslået.

Sammentrækning af glat muskulatur er generelt reguleret af cytosole Ca 2 + koncentration ([Ca 2 +] i) plus følsomhed for Ca 2 +, af de kontraktile elementer i reaktion på ændringer i miljøet omkring cellen 6. [Ca 2 +] Jeg er bestemmes af kombinationen af den frie bevægelighed for Ca 2 + gennem plasmamembranen ligand eller spændingsfølsomme Ca 2 + kanaler og frigivelse og optagelse af Ca 2 + fra interne butikker. Cytosole Ca 2 + binder sig til calmodulin og aktiverer enzymer såsom myosin lyskæde (MLC) kinase (MLCK), som igen phosphorylates MLC fører til actin-myosin-medieret kontraktion 8. Men følsomheden af ​​denne vej til Ca <sup> 2 + kan reguleres af MLC fosfatase (MLCP) 9. MLCP virksomhed er omfattet af Rho-kinase (ROCK) og myosin fosfatase-hæmmer protein CPI-17.

Her præsenterer vi en metode til at vurdere ændringer i [Ca 2 +] i over tid i isolerede, perfunderet lymfevejene for at studere Ca 2 +-afhængige og Ca 2 +-sensibiliserende mekanismer af lymfatisk glatte muskelsammentrækning. Brug af isolerede rotte mesenteriallymfeknuderne indsamle lymfevejene vi studerede stretch-inducerede ændringer i [Ca 2 +] i og kontraktile aktivitet. Den isolerede lymfe-modellen har den fordel, tryk, flow, og den kemiske sammensætning af badet løsningen kan blive nøje kontrolleret. [Ca 2 +] Jeg blev bestemt ved at indlæse lymfevejene med ratiometrisk, Ca 2 +-bindende dye Fura-2. Disse undersøgelser vil give en ny tilgang til det bredere problem med at studere de forskellige molekylære mekanismer, der regulerer phasicsammentrækninger versus tonic konstriktion i lymfe glatte muskulatur.

Protocol

1. Dyr Alle procedurer blev godkendt af Institutional Animal Care og bruge udvalget ved Louisiana State University Health Sciences Center, og blev udført i overensstemmelse med retningslinjerne fra National Institute of Health (NIH publikation nr. 85-12, revideret 1996). Mand Sprague-Dawley rotter (Charles River Laboratories, 270-350 g krop wt) blev anbragt i en kontrolleret temperatur (22 ° C) og kontrolleret belysning (00:12 H lys mørke cyklus) miljø. Efter ankomsten blev rotterne indgivet til en uges a…

Discussion

En ny kombination af metoder, der var ansat til at studere iboende pumpning af lymfekar. Evnen til samtidigt at måle ændringer i [Ca 2 +] i og diameter i pumpe lymfevejene vil give mulighed for studier af de relative bidrag af Ca 2 +-afhængige og Ca 2 +-sensibiliserende signalveje i den samlede ordning, der gælder for lymfe kontraktile cyklus.

Det lymfe kontraktile cyklus består af phasic sammentrækninger ovenpå tone. Dataene viser, at hver …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

<p class="jove_content"> Dette arbejde blev støttet af NIH give P20RR018766 og en bevilling fra ABMRF / Foundation for Alkoholforskning.</p

Materials

<tdChemical
1. Ringer 5x Stock
Company Catalog Number Amount
Sodium Chloride EMD SX0420-3 35 g
Potassium Chloride J.T. Baker 3040 1.75 g
Calcium Chloride Sigma C-3881 1.47 g
Magnesium Sulfate Sigma M-9397 1.44 g
Sterile Filtered Water N/A N/A Bring to 1 L
Sterile filter into autoclaved bottles and stores at 4 °C
       
2. MOPS buffer      
Chemical Company Catalog Number Amount
MOPS Sigma M3183 125.6 g
Sterile Filtered Water N/A N/A Bring to 1 L
Sterile filter into autoclaved bottles and stores at 4 °C
       
3. Albumin Physiological Salt Solution (APSS)
Chemical Company Catalog Number Amount
Ringer stock (5x) N/A N/A 200 mL
Mops Buffer N/A N/A 5 mL
Sodium Phosphate Sigma S-9638 0.168 g
Sodium Pyruvate Sigma P5280 0.22 g
EDTA sodium salt Sigma ED2SS 0.0074 g
Glucose Sigma G7528 0.901 g
Albumin, Bovine USB 10856 10 g
Sterile Filtered Water N/A N/A Bring to 1 L
Adjust pH to 7.4 at 37° C, then sterile filter into autoclaved bottles and store at 4 °C.

Table 1. Specific Reagents Used. Store all at 4 °C.

References

  1. Chakraborty, S. Lymphatic system: a vital link between metabolic syndrome and inflammation. Ann. N. Y. Acad. Sci. 1207, 94-94 (2010).
  2. Zawieja, D. Lymphatic biology and the microcirculation: past, present and future. Microcirculation. 12, 141-141 (2005).
  3. Benoit, J. N., Zawieja, D. C., Goodman, A. H., Granger, H. J. Characterization of intact mesenteric lymphatic pump and its responsiveness to acute edemagenic stress. Am. J. Physiol. 257, H2059-H2059 (1989).
  4. Davis, M. J., Davis, A. M., Ku, C. W., Gashev, A. A. Myogenic constriction and dilation of isolated lymphatic vessels. Am. J. Physiol. Heart. Circ. Physiol. 296, H293-H293 (2009).
  5. Dougherty, P. J., Davis, M. J., Zawieja, D. C., Muthuchamy, M. Calcium sensitivity and cooperativity of permeabilized rat mesenteric lymphatics. Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 294, R1524-R1524 (2008).
  6. Fay, F. S., Shlevin, H. H., Granger, W. C., Taylor, S. R. Aequorin luminescence during activation of single isolated smooth muscle cells. Nature. 280, 506-506 (1979).
  7. Wang, W. Inhibition of myosin light chain phosphorylation decreases rat mesenteric lymphatic contractile activity. Am. J. Physiol. Heart. Circ. Physiol. 297, 726-726 (2009).
  8. Karaki, H. Calcium movements, distribution, and functions in smooth muscle. Pharmacol. Rev. 49, 157-157 (1997).
  9. Ratz, P. H., Berg, K. M., Urban, N. H., Miner, A. S. Regulation of smooth muscle calcium sensitivity: KCl as a calcium-sensitizing stimulus. Am. J. Physiol. Cell. Physiol. 288, C769-C769 (2005).
  10. Somlyo, A. P., Somlyo, A. V. Ca2+ sensitivity of smooth muscle and nonmuscle myosin II: modulated by G proteins, kinases, and myosin phosphatase. Physiol. Rev. 83, 1325-1325 (2003).
  11. Souza-Smith, F. M., Kurtz, K. M., Molina, P. E., Breslin, J. W. Adaptation of mesenteric collecting lymphatic pump function following acute alcohol intoxication. Microcirculation. 17, 514-514 (2010).
  12. Breslin, J. W., Yuan, S. Y., Wu, M. H. VEGF-C alters barrier function of cultured lymphatic endothelial cells through a VEGFR-3-dependent mechanism. Lymphat. Res. Biol. 5, 105-105 (2007).
  13. Shirasawa, Y., Benoit, J. N. Stretch-induced calcium sensitization of rat lymphatic smooth muscle. Am. J. Physiol. Heart. Circ. Physiol. 285, H2573-H2573 (2003).
  14. Imtiaz, M. S. Pacemaking through Ca2+ stores interacting as coupled oscillators via membrane depolarization. Biophys. J. 92, 3843-3843 (2007).
  15. Muller, J. M., Davis, M. J., Kuo, L., Chilian, W. M. Changes in coronary endothelial cell Ca2+ concentration during shear stress- and agonist-induced vasodilation. Am. J. Physiol. 276, 1706-1706 (1999).
  16. Ferrusi, I., Zhao, J., van Helden, D., von der Weid, P. Y. Cyclopiazonic acid decreases spontaneous transient depolarizations in guinea pig mesenteric lymphatic vessels in endothelium-dependent and -independent. 286, H2287-H2287 (2004).
check_url/3438?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Souza-Smith, F. M., Kurtz, K. M., Breslin, J. W. Measurement of Cytosolic Ca2+ in Isolated Contractile Lymphatics. J. Vis. Exp. (58), e3438, doi:10.3791/3438 (2011).

View Video