Summary

Bedömning av förändringar Nedsatt Metabola Under Progressiv koloniseringen av bakteriefri mus med 1 H NMR-spektroskopi

Published: December 15, 2011
doi:

Summary

En progressiv kolonisering förfarande beskrivs att ytterligare utvärdera dess effekter på värden levermetabolism. Colonization övervakas icke invasivt genom att utvärdera urinutsöndringen av mikrobiell samarbete metaboliter med hjälp av NMR-baserade metabolisk profilering medan levermetabolismen bedöms av tröjan Magiska Angle Spinning (HR MAS) NMR profilering av intakt biopsi.

Abstract

Det är väl känt att tarmbakterier bidra avsevärt till värden homeostas, vilket ger en rad fördelar såsom immun skydd och vitamin syntes. De levererar också värd en ansenlig mängd näringsämnen, vilket gör detta ekosystem en viktig metabolisk orgel. I samband med allt fler bevis om kopplingen mellan tarmfloran och det metabola syndromet, förstå den metaboliska interaktionen mellan värden och dess tarmfloran blir en viktig utmaning i modern biologi. 1-4

Colonization (även kallad normaliseringsprocess) betecknar inrättandet av mikroorganismer i en tidigare bakteriefri djur. Även om det är en naturlig process som uppstår vid födseln, är det också ges till vuxna bakteriefri djur för att kontrollera tarmen blommor ekosystemet och ytterligare bestämma dess påverkan på värden ämnesomsättningen. Ett gemensamt förfarande för att kontrollera kolonisationen processen är att använda sondmatning metod med en single eller en blandning av mikroorganismer. Metoden ger en mycket snabb kolonisering och presenterar nackdelen med att vara extremt stressande 5. Det är därför lämpligt att minimera stress och att få en långsammare kolonisering process för att följa successivt effekterna av bakteriell etablering på värden ämnesomsättningen.

I detta manuskript, beskriver vi ett förfarande för bedömning ändring av levermetabolismen under en successiv kolonisering process med hjälp av ett icke-förstörande tekniken metabolisk profilering. Vi föreslår att övervaka kolonisering tarmen mikrobiella genom att bedöma i tarmen aktivitet mikrobiell metabolism återspeglas i urinutsöndringen av mikrobiell samarbete metaboliter med 1 H NMR-baserade metabolisk profilering. Detta möjliggör en uppskattning av stabiliteten i tarmen mikrobiell aktivitet utanför stallet inrättandet av tarmen mikrobiella ekosystem vanligtvis kontrolleras genom avföringen bakterier genom DGGE (denaturering elektrofores gradient gel). 6kolonisering sker i en konventionell öppen miljö och inleds med en smutsig kull som förorenats med konventionella djur, som fungerar som kontroller. Gnagare är coprophagous djur, säkerställer detta en homogen kolonisering som tidigare beskrivits. 7

Nedsatt metabolisk profil mäts direkt från en intakt leverbiopsi med ett H Hög Vinkel upplösning Magiska Spinning NMR-spektroskopi. Detta semikvantitativ tekniken erbjuder ett snabbt sätt att bedöma, utan att skada cellstruktur, huvudmetaboliterna som triglycerider, glukos och glykogen för att ytterligare uppskatta det komplexa samspelet mellan kolonisation processen och levermetabolismen 7-10. Denna metod kan också tillämpas på alla vävnad biopsi 11,12.

Protocol

1. Kolonisering av bakterie-fria djur och provtagning Ta bort bakteriefri djur från isolatorer och hus dem i en konventionell djurhållning rum i burar utrustade med filter framför den konventionella djur som kommer att fungera som kontroller (Figur 1). Blanda hälften av kullen (3 dagar gamla) som tagits från kontroll konventionella bur med strö av grodden-fria djur. Håll alltid 1 / 3 av det smutsiga konventionella kullen varje gång det är nödvändigt att förnya för att upprätthålla en …

Discussion

I detta protokoll, beskrev vi en progressiv kolonisering förfarande i en öppen miljö för att ytterligare undersöka effekten av tarmfloran om levermetabolism bedömas av en H HR-MAS NMR profilering av intakt biopsi. Olika metoder för kolonisering har beskrivits i litteraturen. De vanligaste metoderna för att kolonisera djur med ett definierat mikrobiota är oral sondmatning eller förorenat dricksvatten 19,20. Fekal inokulationen kan också användas som tidigare beskrivits 21. Kol…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Alla NMR-spektra används som belysande exempel är hämtade från en tidigare publicerad studie 7 som ekonomiskt stöddes av Nestlé.

Materials

Table of specific reagents and equipment:

Name of the reagent Company Catalogue number Comments
2.5 mm microtube New Era NE-H5/2.5-V-Br
1.7 mm capillary tube Sigma-Aldrich NORS175001
Capillary adapter New Era NE-325-5/1.7
Extraction rod New Era NE-341-5
HR-MAS rotor BL4 with 50 μL
spherical Teflon spacer kit
Bruker HZ07213
Tool kit for 50 μL inserts Bruker B2950
Advance III 600 MHz NMR Bruker
1H HR MAS NMR solid probe Bruker
Deuterium oxide 99.9 % Sigma-Aldrich 530867-1L
3-(trimethylsilyl)propionic
acid-d4 (TSP)
Sigma-Aldrich 269913

References

  1. Cani, P. D., Delzenne, N. M. Gut microflora as a target for energy and metabolic. Curr. Opin. Clin. Nutr. Metab. Care. 10, 729-734 (2007).
  2. Ley, R. E., Turnbaugh, P. J., Klein, S., Gordon, J. I. Microbial ecology: human gut microbes associated with obesity. Nature. 444, 1022-1023 (2006).
  3. Raoult, D. Obesity pandemics and the modification of digestive bacterial flora. Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. 27, 631-634 (2008).
  4. Turnbaugh, P. J., Backhed, F., Fulton, L., Gordon, J. I. Diet-induced obesity is linked to marked but reversible alterations in the mouse distal gut microbiome. Cell. Host. Microbe. 3, 213-223 (2008).
  5. Balcombe, J. P., Barnard, N. D., Sandusky, C. Laboratory routines cause animal stress. Contemp. Top. Lab. Anim. Sci. 43, 42-51 (2004).
  6. Muyzer, G., Smalla, K. Application of denaturing gradient gel electrophoresis (DGGE) and temperature gradient gel electrophoresis (TGGE) in microbial ecology. Antonie van Leeuwenhoek. 73, 127-141 (1998).
  7. Claus, S. P. Colonization-induced host-gut microbial metabolic interaction. MBio. 2, (2011).
  8. Waters, N. J. High-resolution magic angle spinning 1H NMR spectroscopy of intact liver and kidney: optimization of sample preparation procedures and biochemical stability of tissue during spectral acquisition. Anal. Biochem. 282, 16-23 (2000).
  9. Bollard, M. E. High-resolution 1H and 1H-13C magic angle spinning NMR spectroscopy of rat liver. Magnetic resonance in medicine. 44, 201-207 (2000).
  10. Lindon, J. C., Holmes, E., Nicholson, J. Pattern recognition methods and applications in biomedical magnetic resonance. Progress in Nuclear Magnetic Resonance Spectroscopy. 39, 1-40 (2001).
  11. Tate, A. R. Distinction between normal and renal cell carcinoma kidney cortical biopsy samples using pattern recognition of (1)H magic angle spinning (MAS) NMR spectra. NMR. Biomed. 13, 64-71 (2000).
  12. Wang, Y. Topographical variation in metabolic signatures of human gastrointestinal biopsies revealed by high-resolution magic-angle spinning 1H NMR spectroscopy. Journal of Proteome Research. 6, 3944-3951 (2007).
  13. Meiboom, S., Gill, D. Modified spin-echo method for measuring nuclear relaxation times. The review of scientific instruments. 29, 688-691 (1958).
  14. Nicholson, J. K., Holmes, E., Wilson, I. D. Gut microorganisms, mammalian metabolism and personalized health care. Nat. Rev. Microbiol. 3, 431-438 (2005).
  15. Martin, F. P. Effects of probiotic Lactobacillus paracasei treatment on the host gut tissue metabolic profiles probed via magic-angle-spinning NMR spectroscopy. Journal of Proteome Research. 6, 1471-1481 (2007).
  16. Swann, J. R. Variation in Antibiotic-Induced Microbial Recolonization Impacts on the Host Metabolic Phenotypes of Rats. J. Proteome. Res. , (2011).
  17. Jacobs, D. M., Gaudier, E., van Duynhoven, J., Vaughan, E. E. Non-digestible food ingredients, colonic microbiota and the impact on gut health and immunity: a role for metabolomics. Curr. Drug. Metab. 10, 41-54 (2009).
  18. Beckonert, O. High-resolution magic-angle-spinning NMR spectroscopy for metabolic profiling of intact tissues. Nat. Protoc. 5, 1019-1032 (2010).
  19. Hooper, L. V., Sansonetti, P., Zychlinsky, A. . Methods in microbiology. 31, 559-589 (2002).
  20. Rahija, R. J., Fox, J. G. Ch. 7. The mouse in biomedical research. , 217-234 (2007).
  21. Goodwin, B. L., Ruthven, C. R., Sandler, M. Gut flora and the origin of some urinary aromatic phenolic compounds. Biochemical Pharmacology. 47, 2294-2297 (1994).
  22. Koopman, J. P. ‘Normalization’ of germfree mice after direct and indirect contact with mice having a ‘normal’ intestinal microflora. Lab Anim. 20, 286-290 (1986).
  23. Nishikata, N., Shikata, N., Kimura, Y., Noguchi, Y. Dietary lipid-dependent regulation of de novo lipogenesis and lipid partitioning by ketogenic essential amino acids in mice. Nutrition and Diabetes. 1, 1-12 (2011).
  24. Spagou, K. A GC-MS metabolic profiling study of plasma samples from mice on low- and high-fat diets. J. Chromatogr. B. Analyt. Technol. Biomed. Life. Sci. 879, 1467-1475 (2011).
  25. Sanchez-Patan, F., Monagas, M., Moreno-Arribas, M. V., Bartolome, B. Determination of microbial phenolic acids in human faeces by UPLC-ESI-TQ MS. J. Agric. Food. Chem. 59, 2241-2247 (2011).
  26. Roux, A., Lison, D., Junot, C., Heilier, J. F. Applications of liquid chromatography coupled to mass spectrometry-based metabolomics in clinical chemistry and toxicology: A review. Clin. Biochem. 44, 119-135 (2011).
  27. Ryan, D., Robards, K., Prenzler, P. D., Kendall, M. Recent and potential developments in the analysis of urine: a review. Anal. Chim. Acta. 684, 8-20 (2011).
  28. Nagayama, K., Wuthrich, K., Bachmann, P., Ernst, R. R. Two-dimensional J-resolved 1H n.m.r. spectroscopy for studies of biological macromolecules. Biochem. Biophys. Res. Commun. 78, 99-105 (1977).
  29. Aue, W. P., Bartholdi, E., Ernst, R. R. Two-dimensional spectroscopy. Application to nuclear magnetic resonance. J. Chem. Phys. 64, 2229-2246 (1975).
  30. Bodenhausen, G., Ruben, D. J. Natural abundance 15N NMR by enhanced heteronuclear spectroscopy. Chemical. Physics. Letters. 69, 185-189 (1980).
  31. Fan, T. W. -. M. Metabolite profiling by one- and two-dimensional NMR analysis of complex mixtures. Progress in nuclear magnetic resonance spectroscopy. 28, 161-219 (1996).
  32. Fan, T., Lane, A. Structure-based profiling of metabolites and isotopomers by NMR. Progress in Nuclear Magnetic Resonance Spectroscopy. 52, 48-48 (2008).
  33. Fonville, J. M. The evolution of partial least squares models and related chemometric approaches in metabonomics and metabolic phenotyping. Journal of Chemometrics. 24, 636-649 (2010).
  34. Merrifield, C. A. A metabolic system-wide characterisation of the pig: a model for human physiology. Mol. Biosyst. , (2011).
  35. Tugnoli, V. Molecular characterization of human gastric mucosa by HR-MAS magnetic resonance spectroscopy. International Journal of Molecular Medicine. 14, 1065-1071 (2004).
  36. Sitter, B. Comparison of HR MAS MR spectroscopic profiles of breast cancer tissue with clinical parameters. NMR Biomed. 19, 30-40 (2006).
  37. Beckonert, O. Metabolic profiling, metabolomic and metabonomic procedures for NMR spectroscopy of urine, plasma, serum and tissue extracts. Nat. Protoc. 2, 2692-2703 (2007).
check_url/3642?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Heath, P., Claus, S. P. Assessing Hepatic Metabolic Changes During Progressive Colonization of Germ-free Mouse by 1H NMR Spectroscopy. J. Vis. Exp. (58), e3642, doi:10.3791/3642 (2011).

View Video