Summary

Musmodell av allergen astma

Published: May 14, 2012
doi:

Summary

Experimentella musmodeller av allergisk astma ger nya möjligheter för att studera sjukdomar patogenes och utveckla nya läkemedel. Dessa modeller är väl lämpade för mätning faktorer som styr allergiska immunsvar, luftvägsinflammation och pulmonell patofysiologi.

Abstract

Astma är en viktig orsak till sjuklighet och dödlighet och drabbar cirka 300 miljoner människor över hela världen. 1 Mer än 8% av den amerikanska befolkningen har astma, med förekomsten ökar. 2 som med andra sjukdomar, djurmodeller av allergisk luftvägssjukdom i hög grad underlätta förståelse för den underliggande patofysiologin, hjälpa till att identifiera potentiella terapeutiska mål och möjliggöra preklinisk testning av eventuella nya behandlingar. Modeller av allergisk luftvägssjukdom har utvecklats i flera djurarter, men musmodeller är särskilt attraktiva på grund av den låga kostnaden, lättillgänglighet, och väl karakteriserade immunförsvar hos dessa djur. 3 Tillgång till en mängd av transgena stammar ökar ytterligare attraktionskraft av dessa modeller. 4 Här beskriver vi två musmodeller av allergisk luftvägssjukdom, både använder ovalbumin som antigen. Efter inledande sensibilisering genom intraperitoneal injektion, en modell leveERS provokation med antigen genom nebulisering, den andra genom intratrakeal leverans. Dessa två modeller erbjuder kompletterande fördelar med varje imitera de viktigaste egenskaperna hos människans astma. 5

De viktigaste funktionerna i akut astma inkluderar en överdriven luftvägar respons på stimuli såsom metakolin (luftvägsöverkänslighet, AHR) och eosinofil-rik luftvägsinflammation. Dessa är också framträdande effekter av allergen utmaning i våra musmodeller, 5,6 och vi beskriver tekniker för att mäta dem och på så sätt utvärdera effekterna av experimentell manipulation. Specifikt beskriver vi både invasiva 7 och icke-invasiv 8 tekniker för mätning av luftvägshyperresponsivitet och metoder för bedömning av infiltrering av inflammatoriska celler till luftvägarna och lungan. Luftvägarna inflammatoriska celler uppsamlas genom bronkoalveolar tvätt medan lunga histopatologi används för att bedöma markörer för inflammation i hela organet. Dessateknikerna ger kraftfulla verktyg för att studera astma på ett sätt som inte skulle vara möjligt i människor.

Protocol

I. Allergen Sensibilisering och Challenge (se figur 1) A. För Intratrakeal Challenge För inledande sensibilisering, injicera manlig eller kvinnlig C57BL / 6 eller Balb / c-möss (6-8 veckor gamla) intraperitonealt på dag 0 och återigen på dag 7 med 20 | ig av ovalbumin (OVA; Sigma-Aldrich, St Louis, MO) emulgerad i 0,2 ml steril fosfatbuffrad saltlösning (PBS) innehållande 2 mg aluminiumhydroxid (Sigma-Aldrich) eller med 2 mg aluminiumhydroxid i 0,2 ml steril …

Discussion

Djurmodeller av allergisk luftvägssjukdom utgör viktiga verktyg för studier som är relevanta för klinisk astma. Ett antal olika modeller, som utnyttjar olika arter och antigener, har utvecklats. Musen, en attraktiv och ofta används försöksdjur som erbjuder också ett antal fördelar för modeller av allergisk luftvägssjukdom. 9,10 Trots att sådana modeller inte efterlikna astma i alla avseenden, 11 med aspekter av kronisk sjukdom är särskilt svåra att reproducera, 12,13 vi b…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete stöddes av NIH Grant HL093196 (RCR) och Atlanta forskning och utbildning Foundation (AREF).

Materials

Material Name Company Catalogue Number Comments
Ovalbumin Sigma-Aldrich
St. Louis, MO
A5503  
Aluminum hydroxide Sigma-Aldrich 239186  
Acetyl-β-methylcholine chloride Sigma-Aldrich A2251  
Pentobarbital sodium salt Sigma-Aldrich P3761  
Whole body plethysmography
(WBP) system
Buxco Research Systems
Wilmington, NC
  http://www.buxco.com
FlexiVent SCIREQ, Inc.
Montreal, Canada
  http://www.scireq.com
Light microscope Leica Microsystems, Inc.
Buffalo Grove, IL
   
Cytospin 4 Thermo Scientific
Asheville, NC
   
Diff-Quick stain Siemens
Newark, DE
B4132-1A  
Repetitive pipette Tridak
Torrington, CT
STP4001-0025  

References

  1. Braman, S. S. The global burden of asthma. Chest. 130, 4S-12S (2006).
  2. Akinbami, L. J., Mooman, J. E., Liu, X. Asthma Prevalence, Health Care Use, and Mortality: 2005-2009. National Health Statistics Reports. 32, 2005-2009 (2011).
  3. Bates, J. H., Rincon, M., Irvin, C. G. Animal models of asthma. Am. J. Physiol. Lung. Cell. Mol. Physiol. 297, 401-410 (2009).
  4. Drazen, J. M., Finn, P. W., De Sanctis, G. T. Mouse models of airway responsiveness: physiological basis of observed outcomes and analysis of selected examples using these outcome indicators. Annu. Rev. Physiol. 61, 593-625 (1999).
  5. Epstein, M. M. Do mouse models of allergic asthma mimic clinical disease. Int. Arch. Allergy Immunol. 133, 84-100 (2004).
  6. Blyth, D. I., Pedrick, M. S., Savage, T. J., Hessel, E. M., Fattah, D. Lung inflammation and epithelial changes in a murine model of atopic asthma. Am. J. Respir. Cell Mol. Biol. 14, 425-438 (1996).
  7. Martin, T. R., Gerard, N. P., Galli, S. J., Drazen, J. M. Pulmonary responses to bronchoconstrictor agonists in the mouse. J. Appl. Physiol. 64, 2318-2323 (1988).
  8. Hamelmann, E. Noninvasive measurement of airway responsiveness in allergic mice using barometric plethysmography. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 156, 766-775 (1997).
  9. Gelfand, E. W. Pro: mice are a good model of human airway disease. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 166, 5-8 (2002).
  10. Shapiro, S. D. Animal models of asthma: Pro: Allergic avoidance of animal (model[s]) is not an option. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 174, 1171-1173 (2006).
  11. Zosky, G. R. Ovalbumin-sensitized mice are good models for airway hyperresponsiveness but not acute physiological responses to allergen inhalation. Clin. Exp. Allergy. 38, 829-838 (2008).
  12. Nials, A. T., Uddin, S. Mouse models of allergic asthma: acute and chronic allergen challenge. Dis. Model. Mech. 1, 213-220 (2008).
  13. Wenzel, S., Holgate, S. T. The mouse trap: It still yields few answers in asthma. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 174, 1173-1178 (2006).
  14. Rayamajhi, M. Non-surgical Intratracheal Instillation of Mice with Analysis of Lungs and Lung Draining Lymph Nodes by Flow Cytometry. J. Vis. Exp. (51), e2702 (2011).
  15. Swedin, L. Comparison of aerosol and intranasal challenge in a mouse model of allergic airway inflammation and hyperresponsiveness. Int. Arch. Allergy Immunol. 153, 249-258 (2010).
  16. Gueders, M. M. Mouse models of asthma: a comparison between C57BL/6 and BALB/c strains regarding bronchial responsiveness, inflammation, and cytokine production. Inflamm. Res. 58, 845-854 (2009).
  17. Zhu, W., Gilmour, M. I. Comparison of allergic lung disease in three mouse strains after systemic or mucosal sensitization with ovalbumin antigen. Immunogenetics. 61, 199-207 (2009).
  18. Flandre, T. D., Leroy, P. L., Desmecht, D. J. Effect of somatic growth, strain, and sex on double-chamber plethysmographic respiratory function values in healthy mice. J. Appl. Physiol. 94, 1129-1136 (2003).
  19. Hoymann, H. G. Invasive and noninvasive lung function measurements in rodents. J. Pharmacol. Toxicol. Methods. 55, 16-26 (2007).
  20. Chong, B. T., Agrawal, D. K., Romero, F. A., Townley, R. G. Measurement of bronchoconstriction using whole-body plethysmograph: comparison of freely moving versus restrained guinea pigs. J. Pharmacol. Toxicol. Methods. 39, 163-168 (1998).
check_url/3771?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Reddy, A. T., Lakshmi, S. P., Reddy, R. C. Murine Model of Allergen Induced Asthma. J. Vis. Exp. (63), e3771, doi:10.3791/3771 (2012).

View Video