Summary

En genetisk skärm för att isolera Toxoplasma gondii Host-cell avstigning mutanter

Published: February 08, 2012
doi:

Summary

Forward genetik är en kraftfull metod att riva upp molekylär nivå hur<em> Toxoplasma</em> Utträder från sin värdcell. Protokoll finns att kemiskt mutera parasiter, anrika mutanter med defekter i inducerad utträde, och validera fenotypen av klonade mutanter.

Abstract

Den utbredda, obligat intracellulär, protozoparasit Toxoplasma gondii orsakar opportunistisk sjukdom hos immunkomprometterade patienter och orsakar fosterskador vid kongenital infektion. Den lytiska replikationscykeln kännetecknas av tre steg: 1. aktivt invasion av en kärnförsedda värdcell, 2. replikation inuti värdcellen, 3. aktiv utstigning ur värdcellen. Mekanismen för avstigning i allt högre grad uppskattad som en unik, starkt reglerad process, som fortfarande är dåligt förstådd på molekylär nivå. De signalvägar bakom utträde har präglats genom användning av farmakologiska substanser som påverkar olika aspekter av de vägar 1-5. Som sådan har flera oberoende utlöser utträde identifierats vilka alla konvergerar på frisättningen av intracellulära Ca 2 +, en signal som är också kritisk för värdcellen invasion 6-8. Denna insikt informerat en strategi kandidat gen som ledde till identiklassificering av växter som kalcium beroende proteinkinas (CDPK) som deltar i avstigning 9. Dessutom har flera nya genombrott i förståelsen utträde gjorts med (kemisk) genetiska metoder 10-12. Att kombinera den rikedom av farmakologiska information med den ökande genetiska tillgängligheten av Toxoplasma vi nyligen inrättat en skärm som tillåter anrikning för parasitens mutanter med en defekt i värdcell utträde 13. Även kemisk mutagenes med användning av N-etyl-N-nitrosokarbamid (ENU) eller etylmetansulfonat (EMS) har använts under årtionden för studier av Toxoplasma biologi 11,14,15, först nyligen har genetisk kartläggning av mutationer som ligger bakom de fenotyper blivit rutin 16 -18. Vidare, genom att generera temperaturkänsliga mutanter, kan väsentliga processer dissekerades och de underliggande gener direkt identifieras. Dessa mutanter uppträder som vild-typ enligt den tillåtna temperaturen (35 ° C), men misslyckas med att proliferate vid den restriktiva temperaturen (40 ° C) som en följd av mutationen i fråga. Här illustrerar vi en ny fenotypisk screening metod för att isolera mutanter med en temperaturkänslig utträde fenotyp 13. Utmaningen för utträde skärmar är att separera egressed från icke-egressed parasiter, vilket kompliceras av snabb åter-invasion och allmänt klibbighet av parasiterna till värdcellerna. En tidigare etablerade avstigning skärmen bygger på en besvärlig serie biotinyleringsbeting åtgärder för att separera intracellulär från extracellulära parasiter 11. Denna metod inte heller genererar villkorliga mutanter resulterar i svaga fenotyper. Den metod som beskrivs här övervinner starka engagemang för utträder parasiter genom att inkludera en glykan konkurrent dextransulfat (DS), som förhindrar parasiter fastnar värdcellen 19. Dessutom är extracellulära parasiter specifikt avdödades genom pyrrolidin-ditiokarbamat (PDTC), vilket lämnar intracellulära parasiteroskadda 20. Därför, med en ny fenotypisk skärm för att specifikt isolera parasiter mutanter med defekter i inducerad utträde, kan kraften i genetik nu fullt ut för att reda ut de molekylära mekanismerna bakom utträde värdcell.

Protocol

Översikt Protokoll är anordnade för att först definiera den dosering av den mutagena leder till en 70% avdödning av parasiterna (protokoll 1). Nästa förfarande för att berika inducerade avstigning mutanter från en muterad parasit pool (protokoll 2, figur 2). Detta följs av ett protokoll för att testa förekomsten av avstigning mutanter i den anrikade poolen, eller för att validera utgångsprocessen fenotypen i individuella mutanter (protokoll 3). Slutligen, är ett protokoll för at…

Discussion

Den beskrivna protokollet tillhandahåller en effektiv metod för att isolera Toxoplasma mutanter med en utgång defekt. Vi har med framgång isolerat mutanter längs olika stegen av egress-vägen, av vilka några har en dubbel invasion fenotyp 13. Potentiella effekter på invasion kan bestämmas med hjälp av så kallade röd-gröna analys, som skiljer invaderade från icke-invaderat parasiter av differentiell antikroppsfärgning 23,24. För båda invasion och avstigning analyser ka…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete har finansierats av American Heart Association Scientist utveckling Grant 0635480N och National Institutes of Health forskningsanslag AI081220. BIC stöds av en Tempelherreorden Eye Foundation forskningsanslag.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments
ENU Sigma-Aldrich N3385 1 M Stock in DMSO, store at -20°C
EMS Sigma-Aldrich M0880 1 M Stock in DMSO, store at -20°C
Dextran Sulfate Sigma-Aldrich D4911  
PDTC Sigma-Aldrich P8765 100 mM Stock in PBS
Diff Quick EMD Chemicals 65044-93  
Filter holder Cole-Parmer 540100  
3 μm polycarbonate filter Whatman Schleicher & Schuell 110612  
Hemocytometer Hausser Scientific 1475  
CO2 incubators Various manufacturers   Humidified, 5% CO2, at 35, 37 and 40°C
Fluorescence microscope Various manufacturers   Ideally inverted, wide-field with 63x or 100x oil objective

HBSSc (according to Black et al.11):

  • 98.0 ml Hanks Balanced Salt Solution (Hyclone catalog number SH30588)
  • 100 μl 1M MgCl2 (100 mM end)
  • 100 μl 1M CaCl2 (100 mM end)
  • 2.0 ml 1M Hepes pH 7.3 (20 mM end)
  • 84 mg NaHCO3 (10 mM end)

References

  1. Carruthers, V. B., Moreno, S. N., Sibley, L. D. Ethanol and acetaldehyde elevate intracellular [Ca2+] and stimulate microneme discharge in Toxoplasma gondii. Biochem. J. 342 (Pt 2), 379-386 (1999).
  2. Moudy, R., Manning, T. J., Beckers, C. J. The loss of cytoplasmic potassium upon host cell breakdown triggers egress of Toxoplasma gondii. J. Biol. Chem. 276 (44), 41492-41501 (2001).
  3. Silverman, J. A. Induced activation of the Toxoplasma gondii nucleoside triphosphate hydrolase leads to depletion of host cell ATP levels and rapid exit of intracellular parasites from infected cells. J. Biol. Chem. 273 (20), 12352-12359 (1998).
  4. Stommel, E. W., Ely, K. H., Schwartzman, J. D., Kasper, L. H. Toxoplasma gondii: dithiol-induced Ca2+ flux causes egress of parasites from the parasitophorous vacuole. Exp. Parasitol. 87 (2), 88-97 (1997).
  5. Fruth, I. A., Arrizabalaga, G. Toxoplasma gondii: induction of egress by the potassium ionophore nigericin. Int. J. Parasitol. 37 (14), 1559-1567 (2007).
  6. Endo, T., Sethi, K. K., Piekarski, G. Toxoplasma gondii: calcium ionophore A23187-mediated exit of trophozoites from infected murine macrophages. Exp. Parasitol. 53 (2), 179-188 (1982).
  7. Hoff, E. F., Carruthers, V. B. Is Toxoplasma egress the first step in invasion. Trends Parasitol. 18 (6), 251-255 (2002).
  8. Wetzel, D. M., Chen, L. A., Ruiz, F. A., Moreno, S. N., Sibley, L. D. Calcium-mediated protein secretion potentiates motility in Toxoplasma gondii. J. Cell. Sci. 117 (Pt 24), 5739-5748 (2004).
  9. Lourido, S. Calcium-dependent protein kinase 1 is an essential regulator of exocytosis in Toxoplasma. Nature. 465 (7296), 359-362 (2010).
  10. Arrizabalaga, G., Ruiz, F., Moreno, S., Boothroyd, J. C. Ionophore-resistant mutant of Toxoplasma gondii reveals involvement of a sodium/hydrogen exchanger in calcium regulation. J. Cell. Biol. 165 (5), 653-662 (2004).
  11. Black, M. W., Arrizabalaga, G., Boothroyd, J. C. Ionophore-resistant mutants of Toxoplasma gondii reveal host cell permeabilization as an early event in egress. Mol. Cell. Biol. 20 (24), 9399-9408 (2000).
  12. Chandramohanadas, R. Apicomplexan Parasites Co-Opt Host Calpains to Facilitate Their Escape from Infected Cells. Science. , (2009).
  13. Eidell, K. P., Burke, T., Gubbels, M. J. Development of a screen to dissect Toxoplasma gondii egress. Mol. Biochem. Parasitol. 171 (2), 97-103 (2010).
  14. Pfefferkorn, E. R., Pfefferkorn, L. C. Toxoplasma gondii: isolation and preliminary characterization of temperature-sensitive mutants. Exp. Parasitol. 39 (3), 365-376 (1976).
  15. Pfefferkorn, E. R., Schwartzman, J. D., Kasper, L. H. Toxoplasma gondii: use of mutants to study the host-parasite relationship. Ciba. Found. Symp. 99, 74-91 (1983).
  16. Striepen, B. Genetic complementation in apicomplexan parasites. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 99 (9), 6304-6309 (2002).
  17. White, M. W. Genetic rescue of a Toxoplasma gondii conditional cell cycle mutant. Mol. Microbiol. 55 (4), 1060-1071 (2005).
  18. Gubbels, M. J. Forward Genetic Analysis of the Apicomplexan Cell Division Cycle in Toxoplasma gondii. PLoS Pathog. 4 (2), e36-e36 (2008).
  19. Carruthers, V. B., Hakansson, S., Giddings, O. K., Sibley, L. D. Toxoplasma gondii uses sulfated proteoglycans for substrate and host cell attachment. Infect. Immun. 68 (7), 4005-4011 (2000).
  20. Camps, M., Boothroyd, J. C. Toxoplasma gondii: selective killing of extracellular parasites by oxidation using pyrrolidine dithiocarbamate. Exp. Parasitol. 98 (4), 206-214 (2001).
  21. Roos, D. S., Donald, R. G., Morrissette, N. S., Moulton, A. L. Molecular tools for genetic dissection of the protozoan parasite Toxoplasma gondii. Methods Cell Biol. 45, 27-63 (1994).
  22. Gubbels, M. J., Li, C., Striepen, B. High-throughput growth assay for Toxoplasma gondii using yellow fluorescent protein. Antimicrob. Agents Chemother. 47 (1), 309-316 (2003).
  23. Carey, K. L., Westwood, N. J., Mitchison, T. J., Ward, G. E. A small-molecule approach to studying invasive mechanisms of Toxoplasma gondii. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 101 (19), 7433-7438 (2004).
  24. Kafsack, B. F., Carruthers, V. B., Pineda, F. J. Kinetic modeling of Toxoplasma gondii invasion. J. Theor. Biol. 249 (4), 817-825 (2007).
  25. Hanash, S. M., Boehnke, M., Chu, E. H., Neel, J. V., Kuick, R. D. Nonrandom distribution of structural mutants in ethylnitrosourea-treated cultured human lymphoblastoid cells. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 85 (1), 165-169 (1988).
  26. Kafsack, B. F. Rapid membrane disruption by a perforin-like protein facilitates parasite exit from host cells. Science. 323 (5913), 530-533 (2009).
  27. Lovett, J. L., Marchesini, N., Moreno, S. N., Sibley, L. D. Toxoplasma gondii microneme secretion involves intracellular Ca(2+) release from inositol 1,4,5-triphosphate (IP(3))/ryanodine-sensitive stores. J. Biol. Chem. 277 (29), 25870-25876 (2002).
  28. Nagamune, K. Abscisic acid controls calcium-dependent egress and development in Toxoplasma gondii. Nature. 451 (7175), 207-210 (2008).
  29. Tomita, T., Yamada, T., Weiss, L. M., Orlofsky, A. Externally triggered egress is the major fate of Toxoplasma gondii during acute infection. J. Immunol. 183 (10), 6667-6680 (2009).
  30. Persson, E. K. Death receptor ligation or exposure to perforin trigger rapid egress of the intracellular parasite Toxoplasma gondii. J. Immunol. 179 (12), 8357-8365 (2007).
check_url/3807?article_type=t&slug=a-genetic-screen-to-isolate-toxoplasma-gondii-host-cell-egress-mutants

Play Video

Cite This Article
Coleman, B. I., Gubbels, M. A Genetic Screen to Isolate Toxoplasma gondii Host-cell Egress Mutants. J. Vis. Exp. (60), e3807, doi:10.3791/3807 (2012).

View Video