Summary

En Screeningsteknikken å isolere Toxoplasma gondii Host-celle Egress Mutants

Published: February 08, 2012
doi:

Summary

Forward genetikk er en kraftig metode for å avdekke molekylære nivå av hvordan<em> Toxoplasma</em> Egresses fra sin vertscellen. Protokollene er gitt til kjemisk mutagenize parasitter, berike for mutanter med defekter i indusert egress, og validere fenotype av klonede mutanter.

Abstract

Den utbredte, obligate intracellulære, protozo parasitten Toxoplasma gondii forårsaker opportunistisk sykdom i immuno-kompromitterte pasienter og forårsaker fødselsdefekter ved medfødt infeksjon. Den lytisk replikasjon syklusen er preget av tre stadier: 1. aktiv invasjon av en kjerneholdige vertscelle; to. replikering inne i vertscellen, 3. aktiv egress fra vertscellen. Mekanismen for egress blir i økende grad verdsatt som en unik, svært regulert prosess, som fortsatt er dårlig forstått på molekylært nivå. De signalveier underliggende egress har vært preget gjennom bruk av farmakologiske preparater som virker på ulike aspekter av banene 1-5. Som sådan har flere uavhengige utløsere av egress blitt identifisert som alle konvergerer på utgivelsen av intracellulær Ca 2 +, et signal som også er kritisk for vertscelle invasjon 6-8. Denne innsikten informert en kandidat gen tilnærming som førte til identifiseringen av anlegget som kalsium avhengig protein kinase (CDPK) involvert i egress 9. I tillegg har flere nylige gjennombrudd i forståelsen egress blitt gjort ved hjelp av (kjemisk) genetiske tilnærminger 10-12. Å kombinere vell av farmakologiske informasjon med økende genetisk tilgjengeligheten av Toxoplasma vi nylig etablert en skjerm tillater berikelse for parasitten mutanter med en defekt i vertscelle egress 13. Selv om kjemisk mutagenese bruke N-etyl-N-nitrosourea (ENU) eller etyl methanesulfonate (EMS) har vært brukt i flere tiår i studiet av Toxoplasma biologi 11,14,15, bare nylig har genetisk kartlegging av mutasjoner som ligger bak fenotyper bli rutine 16 -18. Videre, ved å generere temperaturfølsomme mutanter, kan viktige prosesser bli dissekert og de underliggende genene direkte identifisert. Disse mutantene oppfører seg som vill-type under ettergivende temperatur (35 ° C), men mislykkes i å proliferate ved den restriktive temperatur (40 ° C) som følge av mutasjon i spørsmålet. Her har vi illustrere en ny fenotypisk screening metode for å isolere mutanter med en temperatur-sensitiv egress fenotype 13. Utfordringen for utgående skjermer er å skille egressed fra ikke-egressed parasitter, som kompliseres av rask re-invasjon og generell Stickiness av parasittene til vertsceller. En tidligere etablert egress skjerm var basert på en tungvint serie biotinylation skritt for å skille intracellulær fra ekstracellulære parasitter 11. Denne metoden heller ikke generere betingede mutanter resulterer i svake fenotyper. Metoden beskrevet her overvinner den sterke tilknytning til egressing parasitter ved å inkludere en glykan konkurrent, dekstransulfat (DS), som hindrer parasitter fra stikker til vertscellen 19. Videre er ekstracellulære parasitter spesifikt drept av ved pyrrolidine dithiocarbamate (PDTC), som etterlater intracellulære parasitteruskadd 20. Derfor, med en ny fenotypisk skjermen for å spesifikt isolere parasitten mutanter med defekter i indusert egress, kan kraften av genetikk nå bli fullt utviklet for å avdekke molekylære mekanismene bak vertscellen egress.

Protocol

Oversikt Protokoller er forutsatt å først definere dosering av mutagen fører til en 70% drap av parasitter (protokoll 1). Den neste prosedyre for å berike de induserte utgående mutantene fra en mutagenized parasitt basseng (protokoll 2, figur 2). Dette etterfølges av en protokoll for å teste forekomst av utgående mutanter i anriket bassenget, eller å validere egress fenotypen i enkelte mutanter (protokoll 3). Endelig er en protokoll gis for å generere enkle parasitten kloner fra berik…

Discussion

Den beskrives protokollen gir en effektiv metode for å isolere Toxoplasma mutanter med en egress defekt. Vi har lyktes i å isolere mutanter langs ulike stegene i egress vei, hvorav noen har en dobbel invasjon fenotype 13. Potensielle effekter på invasjon kan bestemmes ved hjelp av såkalt rød-grønn-analysen, som skiller invaderte fra ikke-invaderte parasitter ved differensial antistoff farging 23,24. For både invasjonen og egress analysene kan det være praktisk å uttrykke en …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble finansiert av American Heart Association Scientist Development Grant 0635480N og National Institutes of Health forskningsstipend AI081220. BIC er støttet av en tempelridderne Eye Foundation forskningsstipend.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments
ENU Sigma-Aldrich N3385 1 M Stock in DMSO, store at -20°C
EMS Sigma-Aldrich M0880 1 M Stock in DMSO, store at -20°C
Dextran Sulfate Sigma-Aldrich D4911  
PDTC Sigma-Aldrich P8765 100 mM Stock in PBS
Diff Quick EMD Chemicals 65044-93  
Filter holder Cole-Parmer 540100  
3 μm polycarbonate filter Whatman Schleicher & Schuell 110612  
Hemocytometer Hausser Scientific 1475  
CO2 incubators Various manufacturers   Humidified, 5% CO2, at 35, 37 and 40°C
Fluorescence microscope Various manufacturers   Ideally inverted, wide-field with 63x or 100x oil objective

HBSSc (according to Black et al.11):

  • 98.0 ml Hanks Balanced Salt Solution (Hyclone catalog number SH30588)
  • 100 μl 1M MgCl2 (100 mM end)
  • 100 μl 1M CaCl2 (100 mM end)
  • 2.0 ml 1M Hepes pH 7.3 (20 mM end)
  • 84 mg NaHCO3 (10 mM end)

References

  1. Carruthers, V. B., Moreno, S. N., Sibley, L. D. Ethanol and acetaldehyde elevate intracellular [Ca2+] and stimulate microneme discharge in Toxoplasma gondii. Biochem. J. 342 (Pt 2), 379-386 (1999).
  2. Moudy, R., Manning, T. J., Beckers, C. J. The loss of cytoplasmic potassium upon host cell breakdown triggers egress of Toxoplasma gondii. J. Biol. Chem. 276 (44), 41492-41501 (2001).
  3. Silverman, J. A. Induced activation of the Toxoplasma gondii nucleoside triphosphate hydrolase leads to depletion of host cell ATP levels and rapid exit of intracellular parasites from infected cells. J. Biol. Chem. 273 (20), 12352-12359 (1998).
  4. Stommel, E. W., Ely, K. H., Schwartzman, J. D., Kasper, L. H. Toxoplasma gondii: dithiol-induced Ca2+ flux causes egress of parasites from the parasitophorous vacuole. Exp. Parasitol. 87 (2), 88-97 (1997).
  5. Fruth, I. A., Arrizabalaga, G. Toxoplasma gondii: induction of egress by the potassium ionophore nigericin. Int. J. Parasitol. 37 (14), 1559-1567 (2007).
  6. Endo, T., Sethi, K. K., Piekarski, G. Toxoplasma gondii: calcium ionophore A23187-mediated exit of trophozoites from infected murine macrophages. Exp. Parasitol. 53 (2), 179-188 (1982).
  7. Hoff, E. F., Carruthers, V. B. Is Toxoplasma egress the first step in invasion. Trends Parasitol. 18 (6), 251-255 (2002).
  8. Wetzel, D. M., Chen, L. A., Ruiz, F. A., Moreno, S. N., Sibley, L. D. Calcium-mediated protein secretion potentiates motility in Toxoplasma gondii. J. Cell. Sci. 117 (Pt 24), 5739-5748 (2004).
  9. Lourido, S. Calcium-dependent protein kinase 1 is an essential regulator of exocytosis in Toxoplasma. Nature. 465 (7296), 359-362 (2010).
  10. Arrizabalaga, G., Ruiz, F., Moreno, S., Boothroyd, J. C. Ionophore-resistant mutant of Toxoplasma gondii reveals involvement of a sodium/hydrogen exchanger in calcium regulation. J. Cell. Biol. 165 (5), 653-662 (2004).
  11. Black, M. W., Arrizabalaga, G., Boothroyd, J. C. Ionophore-resistant mutants of Toxoplasma gondii reveal host cell permeabilization as an early event in egress. Mol. Cell. Biol. 20 (24), 9399-9408 (2000).
  12. Chandramohanadas, R. Apicomplexan Parasites Co-Opt Host Calpains to Facilitate Their Escape from Infected Cells. Science. , (2009).
  13. Eidell, K. P., Burke, T., Gubbels, M. J. Development of a screen to dissect Toxoplasma gondii egress. Mol. Biochem. Parasitol. 171 (2), 97-103 (2010).
  14. Pfefferkorn, E. R., Pfefferkorn, L. C. Toxoplasma gondii: isolation and preliminary characterization of temperature-sensitive mutants. Exp. Parasitol. 39 (3), 365-376 (1976).
  15. Pfefferkorn, E. R., Schwartzman, J. D., Kasper, L. H. Toxoplasma gondii: use of mutants to study the host-parasite relationship. Ciba. Found. Symp. 99, 74-91 (1983).
  16. Striepen, B. Genetic complementation in apicomplexan parasites. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 99 (9), 6304-6309 (2002).
  17. White, M. W. Genetic rescue of a Toxoplasma gondii conditional cell cycle mutant. Mol. Microbiol. 55 (4), 1060-1071 (2005).
  18. Gubbels, M. J. Forward Genetic Analysis of the Apicomplexan Cell Division Cycle in Toxoplasma gondii. PLoS Pathog. 4 (2), e36-e36 (2008).
  19. Carruthers, V. B., Hakansson, S., Giddings, O. K., Sibley, L. D. Toxoplasma gondii uses sulfated proteoglycans for substrate and host cell attachment. Infect. Immun. 68 (7), 4005-4011 (2000).
  20. Camps, M., Boothroyd, J. C. Toxoplasma gondii: selective killing of extracellular parasites by oxidation using pyrrolidine dithiocarbamate. Exp. Parasitol. 98 (4), 206-214 (2001).
  21. Roos, D. S., Donald, R. G., Morrissette, N. S., Moulton, A. L. Molecular tools for genetic dissection of the protozoan parasite Toxoplasma gondii. Methods Cell Biol. 45, 27-63 (1994).
  22. Gubbels, M. J., Li, C., Striepen, B. High-throughput growth assay for Toxoplasma gondii using yellow fluorescent protein. Antimicrob. Agents Chemother. 47 (1), 309-316 (2003).
  23. Carey, K. L., Westwood, N. J., Mitchison, T. J., Ward, G. E. A small-molecule approach to studying invasive mechanisms of Toxoplasma gondii. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 101 (19), 7433-7438 (2004).
  24. Kafsack, B. F., Carruthers, V. B., Pineda, F. J. Kinetic modeling of Toxoplasma gondii invasion. J. Theor. Biol. 249 (4), 817-825 (2007).
  25. Hanash, S. M., Boehnke, M., Chu, E. H., Neel, J. V., Kuick, R. D. Nonrandom distribution of structural mutants in ethylnitrosourea-treated cultured human lymphoblastoid cells. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 85 (1), 165-169 (1988).
  26. Kafsack, B. F. Rapid membrane disruption by a perforin-like protein facilitates parasite exit from host cells. Science. 323 (5913), 530-533 (2009).
  27. Lovett, J. L., Marchesini, N., Moreno, S. N., Sibley, L. D. Toxoplasma gondii microneme secretion involves intracellular Ca(2+) release from inositol 1,4,5-triphosphate (IP(3))/ryanodine-sensitive stores. J. Biol. Chem. 277 (29), 25870-25876 (2002).
  28. Nagamune, K. Abscisic acid controls calcium-dependent egress and development in Toxoplasma gondii. Nature. 451 (7175), 207-210 (2008).
  29. Tomita, T., Yamada, T., Weiss, L. M., Orlofsky, A. Externally triggered egress is the major fate of Toxoplasma gondii during acute infection. J. Immunol. 183 (10), 6667-6680 (2009).
  30. Persson, E. K. Death receptor ligation or exposure to perforin trigger rapid egress of the intracellular parasite Toxoplasma gondii. J. Immunol. 179 (12), 8357-8365 (2007).
check_url/3807?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Coleman, B. I., Gubbels, M. A Genetic Screen to Isolate Toxoplasma gondii Host-cell Egress Mutants. J. Vis. Exp. (60), e3807, doi:10.3791/3807 (2012).

View Video