Summary

Multiphoton Mikroskopi av Rensat mushjärna uttrycker YFP

Published: September 23, 2012
doi:

Summary

Multiphoton mikroskopi av hela mus organ är möjlig genom optiskt rensa organet före avbildning, men inte alla protokoll bevara fluorescenssignalen av fluorescerande proteiner. Använda en optisk clearing metod med etanol-baserad uttorkning och bensylalkohol: bensylbensoat clearing visar vi högupplösta multiphoton bilder av hela mushjärna uttrycker YFP.

Abstract

Multiphoton mikroskopi av inneboende fluorescens och andra harmoniska generationen (SHG) av hela mus organ möjliggörs genom optiskt rensa organet före avbildning. 1,2 För organ som innehåller fluorescerande proteiner såsom GFP och YFP, optiska clearing protokoll som använder metanol uttorkning och tydlig med användande av bensylalkohol: bensylbensoat (BABB) medan oskyddad från ljus 3 inte bevarar inte den fluorescerande signalen. Protokollet presenteras här är ett nytt sätt för att utföra hela organ optisk clearing på mushjärna samtidigt som fluorescenssignalen av YFP uttryckt i nervceller. Ändra de optiska clearing-protokollet så att orgeln är uttorkad med en etanol graderad serie har visat sig minska skadorna på de fluorescerande proteiner och bevara sin fluorescerande signal för multiphoton avbildning. 4 Använda en optimerad metod för optisk clearing med etanol-baserad uttorkning och clearing av BABBmedan skyddad från ljus, visar vi högupplösta multiphoton bilder av gula fluorescerande protein (YFP) uttryck i nervceller i en mushjärna mer än 2 mm under vävnadsytan.

Protocol

1. Djurens Perfusion 5 och hela Mouse Brain Clearing Hela längden av förfarandet kan variera beroende på hur lång tid som används per dehydratiseringssteg, men totalt hela processen kan utföras i två dagar. Väg YFP möss och sedan djupt söva med en intraperitoneal injektion av ketamin / xylazin (100 mg / kg: 10 mg / kg). Bekräfta en kirurgisk plan av djup anestesi innan du fortsätter till operation. Kontrollera djuret var 5 minut för att se om den reagerar på en fas…

Discussion

Medan vanliga organiska färgämnen är kompatibla med en rad olika organiska lösningsmedel och därför inte utgör en särskild utmaning för att rensa protokoll, fluorescerande proteiner är ofta mindre toleranta mot förändringar i lösningsmedel. 4 Målet för föreliggande arbete var att övervinna en allvarlig begränsning av tidigare optiska clearing protokoll där fluorescens XFPs förlorades eller allvarligt skadad. De bilder som presenteras här visar att fluorescens från YFP bevarades. Den opti…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi vill tacka Jacob Solis för hans hjälp i videoredigering.

Detta arbete har finansierats delvis av en NSF KARRIÄR Award DBI-0953902 till MJ Levene.

Materials

Name of the reagent Company Catalog number Comments
Phosphate Buffered Saline Sigma-Aldrich, Inc. D8537 500 ml, pH 7.2
Paraformaldehyde Electron Microscopy Sciences 15710 10 x 10 ml, 16% paraformaldehyde
Ethyl alcohol American Bioanalytical AB00515-00500 500 ml, 200 proof
Ethyl alcohol Pharmco Products, Inc. 111000190 1 gal., 190 proof
Benzyl alcohol Sigma-Aldrich, Inc. 402834 500 ml, 99+%
Benzyl benzoate Sigma-Aldrich, Inc. B6630-IL 500 ml, ≥ 99%
5X/0.5 NA objective Nikon AZ Plan Flour 5X 15 WD

References

  1. Parra, S. G., Chia, T. H., Zinter, J. P., Levene, M. J. Multiphoton microscopy of cleared mouse organs. J. Biomed. Opt. 15, 036017 (2010).
  2. Vesuna, S., Torres, R., Levene, M. J. Multiphoton fluorescence, second harmonic generation, and fluorescence lifetime imaging of whole cleared mouse organs. J. Biomed. Opt. 16, 106009 (2011).
  3. Zucker, R. M. Whole insect and mammalian embryo imaging with confocal microscopy: Morphology and apoptosis. Cytometry. A69, 1143-1152 (2006).
  4. Sakhalkar, H. S. Functional imaging in bulk tissue specimens using optical emission tomography: Fluorescence preservation during optical clearing. Phys. Med. Biol. 52, 2035-2054 (2007).
  5. Dazai, J., Spring, S., Cahill, L. S., Henkelman, R. M. Multiple-mouse Neuroanatomical Magnetic Resonance Imaging. J. Vis. Exp. (48), e2497 (2011).
  6. Pologruto, T. A., Sabatini, B. L., Svoboda, K. ScanImage: flexible software for operating laser scanning microscopes. Biomed. Eng. Online. 2, (2003).
  7. Paxinos, G., Franklin, K. B. J. . The Mouse Brain in Stereotaxic Coordinates. , (2001).
  8. Abramoff, M. D., Magelhaes, P. J., Ram, S. J. Image Processing with ImageJ. Biophotonics International. 11, 36-42 (2004).
  9. Feng, G., Mellor, R. H., Bernstein, M., Keller-Peck, C., Nguyen, Q. T., Wallace, M., Nerbonne, J. M., Lichtman, J. W., Sanes, J. R. Imaging Neuronal Subsets in Transgenic Mice Expressing Multiple Spectral Variants of GFP. Neuron. 28, 41-51 (2000).
  10. Hama, H. Scale: a chemical approach for fluorescence imaging and reconstruction of transparent mouse brain. Nat. Neuro. 14, 1481-1488 (2011).

Play Video

Cite This Article
Parra, S. G., Vesuna, S. S., Murray, T. A., Levene, M. J. Multiphoton Microscopy of Cleared Mouse Brain Expressing YFP. J. Vis. Exp. (67), e3848, doi:10.3791/3848 (2012).

View Video