Summary

Collectie Protocol for Human Pancreas

Published: May 23, 2012
doi:

Summary

Deze video toont een dissectie procedure voor de verwerking van de menselijke pancreas in meerdere opslagformaten. Anatomische oriëntatie wordt gedurende de gehele pancreas regio's definitie van regionale eilandje samenstelling en dichtheid mogelijk te maken.

Abstract

Deze dissectie en bemonsteringsprocedure is ontwikkeld voor het netwerk voor Pancreatic Organ Donors met diabetes (nPOD) programma om de voorbereiding van de alvleesklier hersteld van postmortale orgaandonoren te standaardiseren. De alvleesklier is verdeeld in 3 grote regio's (hoofd, lichaam, staart), gevolgd door seriële dwarsprofielen in de mediale naar laterale as. Afwisselend secties worden gebruikt voor vaste paraffine en vers bevroren blokken en resterende monsters worden versneden voor snap bevroren monster preparaten, met of zonder RNAse inhibitoren DNA, RNA of eiwit isolatie. Het algemene doel van de alvleesklier dissectie procedure is om de hele alvleesklier te proeven met behoud van anatomische oriëntatie.

Endocriene cellen heterogeniteit op het vlak van eilandje samenstelling, grootte, en getallen wordt gerapporteerd voor de menselijke eilandjes ten opzichte van knaagdieren eilandjes 1. De meerderheid van de menselijke eilandjes uit de alvleesklier hoofd, lichaam en staart regio's bestaat uit insuline-containing β-cellen gevolgd door lagere aantal glucagon bevattende α-cellen en somatostatine bevattende δ-cellen. Alvleesklier polypeptide bevattende PP cellen en ghreline-bevattende epsilon-cellen zijn ook aanwezig, maar in kleine aantallen. In tegenstelling, de uncinate gebied bevat eilandjes die hoofdzakelijk bestaan ​​uit pancreas polypeptide bevatten PP cellen 2. Deze regionale eilandje verschillen komen voort uit verschillen in ontwikkeling. De alvleesklier ontwikkelt zich uit de ventrale en dorsale alvleesklier knoppen in de voordarm en na rotatie van de maag en de twaalfvingerige darm, de ventrale lob beweegt en zekeringen met de dorsale 3. De ventrale lob vormt het achterste deel van de kop met de uncinate proces terwijl de dorsale nok geeft aanleiding tot de rest van het orgel. Regionale pancreas variatie wordt ook gemeld met de staart gebied met hogere dichtheid eilandje in vergelijking met andere regio's en de dorsale lob-afgeleide componenten die een selectief atrofie bij type 1 diabetes <sup> 4,5.

Extra organen en weefsels worden vaak hersteld van de orgaandonoren en zijn lymfklieren, milt en niet-lymfklieren. Deze monsters worden teruggewonnen met soortgelijke formaten de pancreas met de toevoeging van isolatie van cryogeconserveerde cellen. Wanneer de proximale twaalfvingerige darm wordt meegeleverd met de alvleesklier, de twaalfvingerige darm slijmvlies kan worden verzameld voor paraffine en bevroren blokken en gehakt snap bevroren bereidingen.

Protocol

1. Set-up Label cassettes voor paraffine blokken handmatig met een potlood, of automatisch met een cassette printer. Neem de donor identifier (CaseID), monster type, aliquot-nummer, en eventuele aanvullende unieke identificatie (zaak werkblad, bijlage 1 ). Label oktober mallen als voor cassettes met een permanent marker. Knip 5-10 cm rechthoeken van aluminium folie. Print of handmatig label met permanente…

Discussion

Het doel van deze procedure is om een ​​standaard alvleesklier verwerking die kunnen worden geharmoniseerd over meerdere inzamelpunten dus definiëren en vergelijkingen van de resultaten verkregen door verschillende groepen mogelijk te maken. De dissectie methode is gebaseerd op standaard chirurgische pathologie praktijken met extra stappen voor annotatie van de grote pancreas regio's, gevolgd door de intra-regionale onderverdelingen. Standaardisatie van biospecimen verwerkingsmethoden is nodig om collectie van …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

De auteurs danken de donateurs de familie en de Organ Procurement Organisaties die betrokken zijn bij dit onderzoek en Maria Martino en Irina Kusmartseva voor hun deskundige hulp. Dit werk werd gefinancierd door de Juvenile Diabetes Research Foundation (MC-T., MA) ter ondersteuning van het netwerk voor Pancreatic Organ Donors met diabetes.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments
Dissection instruments including scalpels with 22 blades Various Various  
Centrifuge tubes (15 and 50 ml) Fisher Scientific 05-539-5, 430828 Sterile
Cryotubes(1.8 ml) VWR North America 89004-300 Sterile, bar codes optional
RNAlater Ambion AM7021  
Surgical Pathology Ink      
Cassettes Mercedes Medical CAS ECO109  
10% Neutral Buffered Formalin Fisher Scientific 23-245-685  
OCT Freezing Media TissueTek 4583  
Molds ThermoScientific 58952 Various sizes
Isopentane Fisher Scientific O3551-4 OCT chilling bath
Dry ice     OCT chilling bath
Liquid nitrogen in Dewar flask     Snap freezing cryovials
Cell culture dish (100mm) Corning 430167 Sterile
Hyclone DMEF ThermoScientific SH30023.01 Sterile, store refrigerated, glutamine included
Fetal Bovine Serum Cellgro 35-010-CV Sterile, store frozen aliquots
Penicillin/Streptomycin/Antifungal GIBCO 15240-062 Sterile, store frozen aliquots
Type 9 Paraffin Richard-Allan Scientific 8337  
1X D-PBS GIBCO 14190-144 Sterile
16% Paraformaldehyde EM Sciences 15710 Make fresh, store refrigerated
8% Glutaraldehyde EM Sciences 16019 Make fresh, store refrigerated
Biosafety Level 2 hood Various    
Ultra-low freezer Various    
Sakura Cassette Printer Sakura    
Sakura VIP300 Sakura   Automatic paraffin processor
Paraffin Embedding Station ThermoFisher    

Table 1. Specific reagents and equipment.

References

  1. Brissova, M. Assessment of human pancreatic islet architecture and composition by laser scanning confocal microscopy. J. Histochem. Cytochem. 53, 1087-1097 (2005).
  2. Rahier, J. The pancreatic polypeptide cells in the human pancreas: the effects of age and diabetes. J. Clin. Endocrinol. Metab. 56, 441-444 (1983).
  3. Uchida, T., Takada, T., Ammori, B. J., Suda, K., Takahashi, T. Three-dimensional reconstruction of the ventral and dorsal pancreas: a new insight into anatomy and embryonic development. J. Hepatobiliary Pancreat. Surg. 6, 176-180 (1999).
  4. Wittingen, J., Frey, C. F. Islet concentration in the head, body, tail and uncinate process of the pancreas. Ann. Surg. 179, 412-414 (1974).
  5. Rahier, J., Goebbels, R., Henquin, J. Cellular composition of the human diabetic pancreas. Diabetologia. 24, 366-371 (1983).
  6. Vaught, J. An NCI perspective on creating sustainable biospecimen resources. J. Natl. Cancer Inst. Monogr. 42, 1-7 (2011).
  7. Gianani, R. Initial results of screening of nondiabetic organ donors for expression of islet autoantibodies. J. Clin. Endocrinol. Metab. 91, 1855-1861 (2006).
  8. Tauriainen, S., Salmela, K., Rantala, I., Knip, M., Hyöty, H. Collecting high-quality pancreatic tissue for experimental study from organ donors with signs of β-cell autoimmunity. Diabetes Metab. Res. Rev. 26, 585-592 (2010).
  9. In’t Veld, P. Screening for insulitis in adult autoantibody-positive organ donors. Diabetes. 56, 2400-2404 (2007).
  10. Töns, H. A., Terpstra, O. T., Bouwman, E. Heterogeneity of human pancreata in perspective of the isolation of the islets of langerhans. Transplant Proc. 40, 367-369 (2008).

Play Video

Cite This Article
Campbell-Thompson, M. L., Montgomery, E. L., Foss, R. M., Kolheffer, K. M., Phipps, G., Schneider, L., Atkinson, M. A. Collection Protocol for Human Pancreas. J. Vis. Exp. (63), e4039, doi:10.3791/4039 (2012).

View Video