Summary

Insamling Protokoll för human pankreas

Published: May 23, 2012
doi:

Summary

Denna video visar en dissektion förfarande för bearbetning av mänskliga bukspottkörteln i flera lagringsformat. Anatomisk orientering upprätthålls hela pankreas regioner så att definitionen av regional ö sammansättning och densitet.

Abstract

Denna dissektion och provtagning förfarande utvecklades för nätverket för givare bukspottkörtel orgel med Diabetes (nPOD) för att standardisera beredning av bukspottkörteln återhämtat sig från avlidna organdonatorer. Bukspottkörteln är uppdelad i 3 huvudsakliga områden (huvud, kropp, svans) följt av seriella tvärgående snitt i hela den mediala till lateral axel. Alternerande sektionerna används för fast paraffin och färska frusna blocken och prover kvarleva finfördelas för snabbfrystes provberedningar, antingen med eller utan RNAs hämmare, till DNA, RNA eller protein isolering. Det övergripande målet för bukspottkörteln dissekering förfarandet är att sampla hela bukspottkörteln bibehållen anatomiska orientering.

Endokrina celler heterogenitet i termer av ö sammansättning, storlek och antal redovisas för humana öar jämfört med gnagare öar 1. Majoriteten av humana öar från bukspottkörteln huvudet är kropp och svans regioner som består av insulin-containing p-celler följt av en lägre andel av glukagon innehållande alfa-celler och somatostatin-innehållande ö-celler. Pankreatiska polypeptiden innehållande PP-celler och ghrelin-innehållande celler epsilon är också närvarande men i små antal. I motsats härtill innehåller uncinate regionen cellöar som primärt är sammansatta av pankreatiska polypeptiden innehållande PP-celler 2. Dessa regionala ö variationer uppstå skillnader i utveckling. Bukspottkörteln utvecklas från de ventrala och dorsala pankreas knoppar i framtarmen och efter rotation av magen och tolvfingertarmen, ventralloben drag och säkringar med ryggens 3. Den ventrala loben bildar den bakre delen av huvudet, inklusive uncinate processen medan dorsala loben ger upphov till resten av orgeln. Regional pankreas variation har också rapporterats i samband med svansen regionen har en högre holmen densitet jämfört med andra regioner och den dorsala lob-härledda komponenter som genomgår selektiv atrofi i typ 1-diabetes <sup> 4,5.

Ytterligare organ och vävnader är ofta återhämtat sig från organdonatorer och inkluderar noder pankreas lymfkörtlar, mjälte och icke-pankreas lymfkörtlar. Dessa prover återvunna med liknande format som för bukspottkörteln med tillsats av isolering av kryokonserverade celler. När proximala duodenum medföljer bukspottkörteln, kan duodenal slemhinna tas ut för paraffin och frysta block och malet snabbfrystes preparat.

Protocol

1. Set-up Etikettkassetter för paraffinblock manuellt med en penna, eller automatiskt med en kassett skrivare. Inkludera givaren identifierare (CaseID), provtyp, alikvot nummer och ytterligare unik identifikation (mål kalkylblad, bilaga 1 ). Label ULT formar som för kassetter med en märkpenna. Klipp ut 5-10 cm rektanglar av aluminiumfolie. Skriv ut eller manuellt etikett med permanent markering alla f…

Discussion

Målet med detta förfarande är att definiera en standard bukspottkörteln behandling som kan harmoniseras på flera insamlingsplatser och därmed möjliggöra jämförelser av resultat från olika grupper. Den dissekering Metoden bygger på standard kirurgiska patologi praxis med ytterligare åtgärder för notering av större bukspottkörteln regioner följt av intra-regionala underavdelningar. Standardisering av metoder biospecimen bearbetning behövs för att underlätta insamling av högkvalitativa prov exemplifie…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Författarna tackar givarna familjer och orgeln organisationer för tillvaratagande som deltar i denna forskning och Maria Martino och Irina Kusmartseva för deras experthjälp. Detta arbete har finansierats av Juvenile Diabetes Research Foundation (MC-T., MA) till stöd för nätverket för givare bukspottkörtel Organ med diabetes.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments
Dissection instruments including scalpels with 22 blades Various Various  
Centrifuge tubes (15 and 50 ml) Fisher Scientific 05-539-5, 430828 Sterile
Cryotubes(1.8 ml) VWR North America 89004-300 Sterile, bar codes optional
RNAlater Ambion AM7021  
Surgical Pathology Ink      
Cassettes Mercedes Medical CAS ECO109  
10% Neutral Buffered Formalin Fisher Scientific 23-245-685  
OCT Freezing Media TissueTek 4583  
Molds ThermoScientific 58952 Various sizes
Isopentane Fisher Scientific O3551-4 OCT chilling bath
Dry ice     OCT chilling bath
Liquid nitrogen in Dewar flask     Snap freezing cryovials
Cell culture dish (100mm) Corning 430167 Sterile
Hyclone DMEF ThermoScientific SH30023.01 Sterile, store refrigerated, glutamine included
Fetal Bovine Serum Cellgro 35-010-CV Sterile, store frozen aliquots
Penicillin/Streptomycin/Antifungal GIBCO 15240-062 Sterile, store frozen aliquots
Type 9 Paraffin Richard-Allan Scientific 8337  
1X D-PBS GIBCO 14190-144 Sterile
16% Paraformaldehyde EM Sciences 15710 Make fresh, store refrigerated
8% Glutaraldehyde EM Sciences 16019 Make fresh, store refrigerated
Biosafety Level 2 hood Various    
Ultra-low freezer Various    
Sakura Cassette Printer Sakura    
Sakura VIP300 Sakura   Automatic paraffin processor
Paraffin Embedding Station ThermoFisher    

Table 1. Specific reagents and equipment.

References

  1. Brissova, M. Assessment of human pancreatic islet architecture and composition by laser scanning confocal microscopy. J. Histochem. Cytochem. 53, 1087-1097 (2005).
  2. Rahier, J. The pancreatic polypeptide cells in the human pancreas: the effects of age and diabetes. J. Clin. Endocrinol. Metab. 56, 441-444 (1983).
  3. Uchida, T., Takada, T., Ammori, B. J., Suda, K., Takahashi, T. Three-dimensional reconstruction of the ventral and dorsal pancreas: a new insight into anatomy and embryonic development. J. Hepatobiliary Pancreat. Surg. 6, 176-180 (1999).
  4. Wittingen, J., Frey, C. F. Islet concentration in the head, body, tail and uncinate process of the pancreas. Ann. Surg. 179, 412-414 (1974).
  5. Rahier, J., Goebbels, R., Henquin, J. Cellular composition of the human diabetic pancreas. Diabetologia. 24, 366-371 (1983).
  6. Vaught, J. An NCI perspective on creating sustainable biospecimen resources. J. Natl. Cancer Inst. Monogr. 42, 1-7 (2011).
  7. Gianani, R. Initial results of screening of nondiabetic organ donors for expression of islet autoantibodies. J. Clin. Endocrinol. Metab. 91, 1855-1861 (2006).
  8. Tauriainen, S., Salmela, K., Rantala, I., Knip, M., Hyöty, H. Collecting high-quality pancreatic tissue for experimental study from organ donors with signs of β-cell autoimmunity. Diabetes Metab. Res. Rev. 26, 585-592 (2010).
  9. In’t Veld, P. Screening for insulitis in adult autoantibody-positive organ donors. Diabetes. 56, 2400-2404 (2007).
  10. Töns, H. A., Terpstra, O. T., Bouwman, E. Heterogeneity of human pancreata in perspective of the isolation of the islets of langerhans. Transplant Proc. 40, 367-369 (2008).

Play Video

Cite This Article
Campbell-Thompson, M. L., Montgomery, E. L., Foss, R. M., Kolheffer, K. M., Phipps, G., Schneider, L., Atkinson, M. A. Collection Protocol for Human Pancreas. J. Vis. Exp. (63), e4039, doi:10.3791/4039 (2012).

View Video