Summary

FRET microscopie pour Surveillance en temps réel des événements de signalisation dans les cellules vivantes en utilisant Biocapteurs unimoléculaires

Published: August 20, 2012
doi:

Summary

Förster énergie de résonance de transfert (FRET) microscopie est une technique puissante pour surveiller en temps réel des événements de signalisation dans les cellules vivantes en utilisant différents biocapteurs en tant que journalistes. Ici, nous décrivons comment construire un épifluorescence personnalisée FRET système d'imagerie à partir de composants disponibles dans le commerce et la façon de l'utiliser pour des expériences de FRET.

Abstract

Förster énergie de résonance de transfert (FRET) microscopie continue de gagner un intérêt croissant en tant que technique de suivi en temps réel des événements biochimiques et de signalisation dans les cellules vivantes et les tissus. Par rapport aux méthodes classiques biochimiques, cette nouvelle technologie est caractérisée par la résolution temporelle et spatiale. Expériences de FRET utiliser différents génétiquement codés biocapteurs qui peuvent être exprimées et imagée au fil du temps in situ ou in vivo 1-2. Biocapteurs typiques peuvent signaler supporte interactions protéine-protéine par mesure de FRET entre une paire fluorophore marqué de protéines ou de changements conformationnels de la protéine unique qui abrite donneur et fluorophores accepteurs reliés entre eux par un groupement de liaison pour une molécule d'intérêt 3-4. Biocapteurs pour bimoléculaires interactions protéine-protéine, par exemple, construit conçu pour surveiller la protéine G d'activation dans les cellules 5, tandis que les capteurs unimoléculaires meaSuring changements conformationnels sont largement utilisés pour des messagers de la seconde image tels que le calcium 6, AMPc 7-8, inositol phosphates 9 et cGMP 10-11. Ici, nous décrivons comment construire un épifluorescence personnalisée FRET système d'imagerie à partir de simples composants disponibles dans le commerce et la façon de contrôler l'ensemble de l'installation en utilisant le logiciel gratuit Micro-Manager. Cet instrument simple mais puissant est conçu pour des mesures de routine ou plus sophistiquées FRET dans des cellules vivantes. Les images acquises sont traitées à l'aide d'auto-écrite plug-ins de visualiser les changements dans les taux de FRET en temps réel au cours des expériences avant d'être stockées dans un format graphique compatible avec le build-in freeware ImageJ utilisé pour l'analyse ultérieure des données. Ce système à faible coût se caractérise par une grande flexibilité et peut être utilisé avec succès pour contrôler divers événements biochimiques et des molécules de signalisation par une pléthore de biocapteurs disponibles FRET dans des cellules vivantes et des tissus. A titre d'exemple, nous démontrons homment utiliser ce système d'imagerie pour effectuer un suivi en temps réel de l'AMPc dans des cellules vivantes 293A lors de la stimulation avec un agoniste des récepteurs β-adrénergiques et bloqueur.

Protocol

1. Mise en place d'un FRET microscope d'imagerie En principe, toute microscope à fluorescence inversé qui est disponible dans le laboratoire et dispose d'un port de l'appareil peut être adapté à l'imagerie FRET. La configuration finale devrait inclure les éléments suivants essentiels: un microscope, une source lumineuse avec ou sans obturation supplémentaire, un séparateur de faisceau pour l'émission de lumière et d'une caméra CCD (voir Figure 1)…

Discussion

dans ce protocole, nous montrons comment construire un système d'imagerie simple et peu coûteuse mais puissante FRET pour les applications de routine avec une variété de biocapteurs disponibles. Le système présenté ici est conçu pour les CFP et YFP ou des types similaires de protéines fluorescentes, comme la paire donneur-accepteur. Pendant ce temps, d'autres biocapteurs individuels sont disponibles qui utilisent par exemple vert et rouge protéines fluorescentes 14. Pour adapter le système …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Les auteurs tiennent à remercier Anke Rüttgeroth et Karina Zimmermann pour l'assistance technique. Ce travail a été soutenu par la Deutsche Forschungsgemeinschaft (subvention NI 1301/1-1 à VON) et de l'Université de Göttingen Medical Center («pro futura" subvention à VON).

Materials

Name of the reagent/equipment Company Catalogue number Comments
BES Buffer Grade AppliChem A1062  
CaCl2 dihydrate Sigma-Aldrich C5010  
Glass coverslides Thermo Scientific 004710781 Diameter 24 mm
Glass-bottomed cell-culture dishes World Precision Instruments FD3510-100  
D-MEM medium Biochrom AG F0445  
Fetal calf serum (FCS) Thermo Scientific SH30073.02  
L-Glutamine Biochrom AG K0283  
HEPES Sigma H4034  
KCl Sigma P5405  
MgCl2 hexahydrate AppliChem A4425  
NaCl AppliChem A1149  
Na2HPO4 Sigma-Aldrich S9707  
Penicillin/Streptomycin Biochrom AG A2213  
Inverted fluorescent microscope e.g. Nikon Request at Nikon  
CoolLED CoolLED pE-100 440 nm
DualView Photometrics DV2-SYS  
DualView filter slider Photometrics 05-EM  
CFP/YFP filter set Chroma Technology 49052 without the emission filter
ORCA-03G camera Hamamatsu Photonics C8484-03G02  
Arduino I/O board Sparkfun Electronics DEV-00666  
Attofluor cell chamber Invitrogen A-7816  
Personal computer with WindowsXP or Windows7 system Any supplier   Include hard-drive with high capacity

References

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Cite This Article
Sprenger, J. U., Perera, R. K., Götz, K. R., Nikolaev, V. O. FRET Microscopy for Real-time Monitoring of Signaling Events in Live Cells Using Unimolecular Biosensors. J. Vis. Exp. (66), e4081, doi:10.3791/4081 (2012).

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