Summary

Tissue Engineering af tarmen i en murin model

Published: December 01, 2012
doi:

Summary

Denne artikel og den ledsagende video præsentere vores protokol for frembringelse tissue-engineered tarmen hos mus under anvendelse af en organoid enheder-on-skelet fremgangsmåde.

Abstract

Tissue-engineered tyndtarmen (Tesi) har med held blevet anvendt til at redde Lewis-rotter efter massiv resektion af tyndtarmen, hvilket medfører tilbagevenden til præoperative vægte inden for 40 dage. En Hos mennesker kan massiv resektion af tyndtarmen resultere i korttarmssyndrom, en funktionel malabsorptive stat, der giver høj sygelighed, dødelighed og udgifter til sundhedsvæsenet, herunder parenteral ernæring afhængighed, leversvigt og skrumpelever, og behovet for multivicerale organtransplantation. 2 I dette papir, vi beskrive og dokumentere vores protokol for at skabe væv-manipuleret tarmen i en musemodel med en multicellulær organoid enheder-on-skelet fremgangsmåde. Organoid enheder er flercellede aggregater stammer fra tarmen, der indeholder både mucosale og mesenchymal elementer, 3 forholdet mellem der bevarer den intestinale stamceller niche. 4 I igangværende og fremtidige forskning, overgangen fra vores teknik tilmus vil give mulighed for undersøgelse af de processer, der er involveret i løbet af Tesi dannelse ved at udnytte de transgene tilgængelige værktøjer i denne art. 5 Tilgængeligheden af immunkompromitterede musestammer vil også tillade os at anvende teknikken til menneskelig tarmvæv og optimere dannelsen af menneskelig Tesi som en mus xenograft før dens overgang til mennesker. Vores metode anvender god fremstillingspraksis (GMP) reagenser og materialer, der allerede er godkendt til brug i humane patienter, og derfor giver en betydelig fordel i forhold til tilgange, der er baseret på decellulariseret dyrevæv. Det endelige mål med denne metode er dens translation til mennesker som en regenerativ medicin terapeutisk strategi for korttarmssyndrom.

Protocol

1. Organoid Units Forberedelse Instrumenter egnede til muse-dissektion (saks og pincet) bør steriliseres ved autoklavering. Humant aflive donormus efter lokale IACUC protokoller. Sørg for, at dyret er dødt, før du fortsætter. Foretag en midtlinjeincision for at få adgang til bughulen. Hudlapper kan reflekteres efter behov for at forbedre eksponering. Eviscerate tyndtarmen og dividere det bare distalt for ligament af Treitz. Adskil tyndtarmen fra sit mesenterium med skarp og…

Representative Results

Figur 1 viser et samlet skema for protokollen dokumenteret her. Slutresultatet af denne protokol er en globus eller sfærisk struktur af vævs-engineering murint tarmen med et lumen, slimhinder, submucosa, og omgivende muscularis. Figur 2A viser en typisk globus i forhold til et udgangspunkt polymerskelet. Figur 2B viser den samme konstruktion kraftigt bivalved at afsløre dets lumen. Figur 3 viser et hematoxylin / eosin-stained paraffin-monteret tværs…

Discussion

Vi præsenterer en protokol til fremstilling af vævs-manipuleret tarmen hos mus ved hjælp af en organoid enheder-on-stillads tilgang. De mest kritiske trin er sådanne med organoid enheder præparatet. Der skal udvises forsigtighed for tilstrækkeligt rene og mekanisk behandle væv, men lige man skal passe på ikke at overdigest eller overtriturate de organoid enheder efter fordøjelsen udføres (trin 1,11). Hvis dette sker, kan de organoid enheder reduceres til enkelte celler, som kan gå tabt i supernatanten af ​?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Tracy C. Grikscheit, Erik R. Barthel, og Frédéric G. Sala er understøttet af California Institute til regenerativ medicin (CIRM), tilskud numre RN2-00.946-1 (TCG) og TG2-01.168 (ERB, FGS). Allison L. Speer er en Society of University Surgeons Ethicon lærd. Yashuhiro Torashima er finansieret af et børnehospital Los Angeles Saban Institute Research Career Development Fellowship.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments (optional)
HBSS Gibco 114170-112
Antibiotic-Antimycotic 100X Invitrogen 15240-062
Dispase Gibco 17105-041
Collagenase Type 1 Worthington LS004194
DMEM High Glucose 1X Gibco 11995-065
Heat inactivated FBS Invitrogen 16140-071
Biofelt 100% PGA Concordia Medical FELT01-1005 For polymer preparation as in Ref. 4
Poly-L-lactic acid Durect B6002-1 For polymer preparation as in Ref. 4
Type I Collagen, rat tail Sigma-Aldrich C3867-1VL For polymer preparation as in Ref. 4
Ketoprofen 100 mg/ml Fort Dodge Animal Health 71-KETOI-100-50
LabDiet 5001 rodent chow LabDiet 5001
Septra 200 mg / 40 mg per 5 ml, USP Hi-Tech Pharmacal 50383-824-16
Isoflurane, USP Phoenix Pharmaceuticals 57319-507-06

References

  1. Grikscheit, T. C., Siddique, A., Ochoa, E. R., et al. Tissue-engineered small intestine improves recovery after massive small bowel resection. Ann. Surg. 240, 748-754 (2004).
  2. Wales, P. W., Christison-Lagay, E. R. Short bowel syndrome: epidemiology and etiology. Sem. Ped. Surg. 19, 3-9 (2010).
  3. Evans, G. S., Flint, N., Somers, A. S., et al. The development of a method for the preparation of rat intestinal epithelial cell primary cultures. J. Cell Sci. 101, 219-231 (1992).
  4. Sala, F. G., Matthews, J. A., Speer, A. L., et al. A multicellular approach forms a significant amount of tissue-engineered small intestine in the mouse. Tiss. Eng. Part A. 17, 1841-1850 (2011).
  5. Speer, A. L., Sala, F. G., Matthews, J. A., Grikscheit, T. C. Murine tissue-engineered stomach demonstrates epithelial differentiation. J. Surg. Res. 171, 6-14 (2011).
  6. Haxhija, E. Q., Yang, H., Spencer, A. U., et al. Intestinal epithelial cell proliferation is dependent on the site of massive small bowel resection. Pediatr. Surg. Int. 23, 379-390 (2007).
  7. Zhao, L., Cheng, Z., Dhall, D., et al. A novel corrective pullthrough surgery in a mouse model of Hirschsprung’s disease. J. Pediatr. Surg. 44, 759-766 (2009).
  8. Petrosyan, M., Guner, Y. S., Williams, M., et al. Current concepts regarding the pathogenesis of necrotizing enterocolitis. Ped. Surg. Int. 25, 309-318 (2009).
  9. Shew, S. B. Surgical concerns in malrotation and midgut volvulus. Ped. Radiol. 39, S167-S171 (2009).
  10. Sampietro, G. M., Corsi, F., Maconi, G., et al. Prospective study of long-term results and prognostic factors after conservative surgery for small bowel Crohn’s disease. Clin. Gastroenterol. Hepatol. 7, 183-191 (2009).
  11. Klempnauer, J., Grothues, F., Bektas, H., Pichlmayr, R. Long-term results after surgery for acute mesenteric ischemia. Surgery. , 121-239 (1997).
  12. Fitzgibbons, S. C., Jones, B. A., Hull, M. A., et al. Relationship between biopsy-proven parenteral nutrition-associated liver fibrosis and biochemical cholestasis in children with short bowel syndrome. J. Ped. Surg. 45, 95-99 (2010).
  13. Spencer, A. U., Kovacevich, D., McKinney-Barnett, M., et al. Pediatric short bowel syndrome: the cost of comprehensive care. Am. J. Clin. Nutr. 88, 1552-1559 (2008).
  14. Kato, T., Tzakis, A. G., Selvaggi, G., et al. Intestinal and multivisceral transplantation in children. Ann. Surg. 243, 756-766 (2006).
  15. Reyes, J., Bueno, J., Kocoshis, S., et al. Current status of intestinal transplantation in children. J. Ped. Surg. 33, 243-254 (1998).

Play Video

Cite This Article
Barthel, E. R., Speer, A. L., Levin, D. E., Sala, F. G., Hou, X., Torashima, Y., Wigfall, C. M., Grikscheit, T. C. Tissue Engineering of the Intestine in a Murine Model. J. Vis. Exp. (70), e4279, doi:10.3791/4279 (2012).

View Video