Summary

Quantitativa FRET (Förster Resonance Energy Transfer) analisi per la determinazione della proteasi SENP1 Cinetica

Published: February 21, 2013
doi:

Summary

Un nuovo metodo che utilizza l'analisi quantitativa di FRET (Förster Resonance Energy Transfer) segnali è descritto per lo studio di cinetica enzimatica.<em> K<sub> M</sub</em> E<em> K<sub> Cat</sub</em> Sono stati ottenuti per l'idrolisi del dominio catalitico di SENP1 (SUMO / Sentrin specifica proteasi 1) di controllare la validità SUMO1 (Small ubiquitina-like Modifier). I principi generali della presente quantitativa-FRET-based studio cinetico proteasi può essere applicato ad altre proteasi.

Abstract

Reversibili modificazioni post-traduzionali di proteine ​​con proteine ​​ubiquitina o ubiquitina-like (Ubls) sono ampiamente utilizzati per regolare in modo dinamico l'attività della proteina e hanno ruoli diversi in molti processi biologici. Ad esempio, SUMO modifica covalentemente un numero grande o proteine ​​con un ruolo importante in molti processi cellulari, tra cui cellule-regolazione del ciclo, la sopravvivenza cellulare e la morte, danno la risposta del DNA e risposta allo stress 1-5. SENP, come SUMO-specifiche proteasi, funziona come un endopeptidasi nella maturazione dei precursori SUMO o come isopeptidase per rimuovere SUMO dalle sue proteine ​​bersaglio e aggiornare il ciclo sumoilazione 1,3,6,7.

L'efficienza catalitica o specificità di un enzima è meglio caratterizzato dal rapporto delle costanti cinetiche, k cat / K M. In diversi studi, i parametri cinetici di SUMO-SENP coppie sono state determinate con vari metodi, tra cui gel di poliacrilammide-based western blot, radIOActive-marcato substrato, composto fluorescente o proteina marcata substrato 8-13. Tuttavia, le poliacrilammide-gel a base di tecniche, che hanno utilizzato i "nativi", ma le proteine ​​sono laboriosi e tecnicamente impegnativo, che non si prestano ad una dettagliata analisi quantitativa. Il ottenuta k cat / K M da studi usando tetrapeptidi o proteine ​​con ACC (7-ammino-4-carbamoylmetylcoumarin) o AMC (7-ammino-4-metil) fluoroforo erano o fino a due ordini di grandezza inferiore ai substrati naturali o non può chiaramente distinguere le iso-e attività di endopeptidasi SENPs.

Saggi della proteasi Recentemente, FRET-based sono stati utilizzati per studiare gli enzimi deubiquitinating (Dubs) o SENPs con il FRET coppia di proteina fluorescente ciano (PCP) e giallo proteina fluorescente (YFP) 9,10,14,15. Il rapporto di emissione dell'accettore di emissione del donatore è stato utilizzato come parametro quantitativo per FRET segnale monitor per proteasi acproduttività determinazione. Tuttavia, questo metodo ignorato segnale contaminazioni crociate al accettore e lunghezze d'onda di emissione del donatore e accettore da donatore auto-fluorescenza e quindi non era accurata.

Abbiamo sviluppato un nuovo altamente sensibile e quantitativa FRET saggio basato proteasi per determinare i parametri cinetici di pre-SUMO1 maturazione da SENP1. Un multistrato FRET CyPet coppia e YPet con significativamente migliorato FRET efficienza e resa quantica di fluorescenza, sono stati utilizzati per generare il CyPet-(pre-SUMO1)-YPet substrato 16. Abbiamo differenziato e quantificato assoluti segnali di fluorescenza fornite dal donatore e accettore FRET e alle lunghezze d'onda di emissione e accettori, rispettivamente. Il valore di k cat / K M è stato ottenuto come (3,2 ± 0,55) x10 7 M -1 s -1 SENP1 verso di pre-SUMO1, che è in accordo con i parametri generali cinetica enzimatica. Pertanto, questo metodo è valido e può essere utilizzato unsa generale approccio per caratterizzare proteasi anche altri.

Protocol

1. Costrutti plasmidici Amplificare le fasi di lettura aperte dei geni mediante PCR, e clonare i prodotti di PCR in pCRII-TOPO vettore. Confermare i prodotti dal sequenziamento, e clonare il cDNA codificante CyPet-(pre-SUMO1)-YPet, CyPet-SUMO1, YPet e domini catalitici di SENP1 nella (b) pET28 vettore con un N-terminale tag hexahistidine. 2. Espressione e purificazione di proteine Trasformare cellule di Escherichia coli ceppo BL21 (DE3)…

Discussion

FRET tecnologia è stata usata per studiare la maturazione pre-SUMO1 da parte SENP1 9. CFP-YFP è stato usato come FRET coppia e analisi raziometrico, che è il rapporto tra accettore di emissioni donatori, è stato utilizzato per caratterizzare le proprietà cinetiche. Tuttavia, non vi è alcuna considerazione di donatore e accettore auto-fluorescenza nella raziometrica tradizionale analisi FRET. Il rapporto non è direttamente correlata con la quantità di substrato digerito.

Qu…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Siamo molto grati a Victor GJ Rodgers per preziosi consigli. Ringraziamo tutti i membri del gruppo di Liao per molto stretto lavoro di collaborazione e di aiuto con questo studio. Questo studio è stato sostenuto dal National Institutes of Health (Grant AI076504 a JL).

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number
PCR II TOPO Kit Invitrogen K466040
2xYT Research Products Internationa.l Corp. X15600
Ni-NTA Agrose Thermo Scientific 88222
Coomassie plus (Bradford) Assay Regent Thermo Scientific 23238
384-well plate (glass bottom) Greiner 781892
FlexStation II 384 plate reader Molecular Device

References

  1. Johnson, E. S. Protein modification By SUMO. Annual Review of Biochemistry. 73, 355-382 (2004).
  2. Gill, G. SUMO and ubiquitin in the nucleus: different functions, similar mechanisms. Genes & Development. 18, 2046-2059 (2004).
  3. Hay, R. T. SUMO: a history of modification. Molecular Cell. 18, 1-12 (2005).
  4. Müller, S., Hoege, C., Pyrowolakis, G., Jentsch, S. SUMO, ubiquitin’s mysterious cousin. Nature. , 202-210 (2001).
  5. Hochstrasser, M. SP-RING for SUMO: new functions bloom for a ubiquitin-like protein. Cell. , 5-8 (2001).
  6. Drag, M., Salvesen, G. S. DeSUMOylating enzymes-SENPs. IUBMB Life. 60, 734-742 (2008).
  7. Mukhopadhyay, D., Dasso, M. Modification in reverse: the SUMO proteases. Trends in Biochemical Sciences. 32, 286-295 (2007).
  8. Reverter, D., Lima, C. D. Structural basis for SENP2 protease interactions with SUMO precursors and conjugated substrates. Nature Structural & Molecular Biology. 13, 1060-1068 (2006).
  9. Shen, L., et al. SUMO protease SENP1 induces isomerization of the scissile peptide bond. Nature Structural & Molecular Biology. 13, 1069-1077 (2006).
  10. Horton, R., Strachan, E., Vogel, K., Riddle, S. A substrate for deubiquitinating enzymes based on time-resolved fluorescence resonance energy transfer between terbium and yellow fluorescent protein. Analytical Biochemistry. 360, 138-143 (2007).
  11. Mikolajczyk, J., et al. Small Ubiquitin-related Modifier (SUMO)-specific Proteases: PROFILING THE SPECIFICITIES AND ACTIVITIES OF HUMAN SENPs. Journal of Biological Chemistry. 282, 26217-26224 (2007).
  12. Kolli, N., Mikolajczyk, J., Drag, M., Mukhopadhyay, D., Moffatt, N., Dasso, M., Salvesen, G., Wilkinson, K. D. Distrubition and paralogue specificity of mammalian deSUMOylating enzymes. Biochem. J. , 335-344 (2010).
  13. Drag, M., Mikolajczyk, J., Krishnakumar, I. M., Huang, Z., Salvesen, G. S. Activity profiling of human deSUMOylating enzymes (SENPs) with synthetic substrates suggests an unexpected specificity of two newly characterized members of the family. Biochemical Journal. 409, 461 (2008).
  14. Engels, I. H., et al. A time-resolved fluorescence resonance energy transfer-based assay for DEN1 peptidase activity. Analytical Biochemistry. 390, 85-87 (2009).
  15. Martin, S., Hattersley, N., Samuel, I., Hay, R., Tatham, M. A fluorescence-resonance-energy-transfer-based protease activity assay and its use to monitor paralog-specific small ubiquitin-like modifier processing. Analytical Biochemistry. 363, 83-90 (2007).
  16. Nguyen, A. W., Daugherty, P. S. Evolutionary optimization of fluorescent proteins for intracellular FRET. Nature Biotechnology. 23, 355-360 (2005).
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Cite This Article
Liu, Y., Liao, J. Quantitative FRET (Förster Resonance Energy Transfer) Analysis for SENP1 Protease Kinetics Determination. J. Vis. Exp. (72), e4430, doi:10.3791/4430 (2013).

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