Summary

En modell av kronisk næringsstoff Infusion i Rat

Published: August 14, 2013
doi:

Summary

En protokoll for kroniske infusjoner av glukose og Intralipid i rotter er beskrevet. Denne modellen kan brukes til å studere virkningen av næringsstoff overskudd på organfunksjon og fysiologiske parametere.

Abstract

Kronisk eksponering for høye nivåer av næringsstoffer er postulert til å påvirke funksjonen av flere organer og vev, og for å bidra til utvikling av de mange komplikasjoner forbundet med fedme og metabolsk syndrom, inkludert type 2-diabetes. For å studere de mekanismer som høye nivåer av glukose og fettsyrer påvirker pankreatisk p-celle-og utskillelsen av insulin, er det etablert en kronisk næringsstoff infusjon modell i rotte. Prosedyren består av kateteriserer den høyre halsvene og venstre karotidarterie under generell anestesi, slik at en 7-dagers rekonvalesens periode; forbinder kateter til pumpene ved hjelp av en svivel og motvekt-system som gjør det mulig for dyret å bevege seg fritt i buret, og infusjonen glukose og / eller Intralipid (en soyaolje-emulsjon som genererer en blanding av ca 80% unsaturated/20% mettede fettsyrer når det infuseres med heparin) i 72 timer. Denne modellen har flere BELIGGEger, inkludert muligheten til fint modulere mål nivåer av sirkulerende glukose og fettsyrer, mens muligheten til å co-sette mot farmakologiske forbindelser, og det forholdsvis korte tidsrom i motsetning til kosten modeller. Den kan brukes for å undersøke mekanismer for næringsstoff-indusert dysfunksjon i et mangfold av organer og for å teste effektiviteten av medikamenter i denne sammenheng.

Introduction

Kronisk forhøyet nivå av glukose og lipider i sirkulasjon har blitt foreslått å bidra til patogenesen av type 2 diabetes ved å endre funksjonen av flere organer implisert i opprettholdelsen av glukosehomeostase inkludert, men ikke begrenset til, pankreatisk p-celle (gjennomgått i 1). De glucotoxicity hypotesen tar for gitt at kronisk hyperglykemi forverrer beta-celle defekt som ga opphav til hyperglykemi i første omgang, og dermed skape en ond sirkel og bidrar til forringelse av glukose kontroll hos type 2 diabetes pasienter. Likeledes foreslår glucolipotoxicity hypotesen om at samtidig økning av glukose og lipid nivåer, som ofte observert i type 2 diabetes, er skadelig for beta celle.

Forklaring på de cellulære og molekylære mekanismer av de skadelige effektene av kronisk forhøyet næringsstoffer på bukspyttkjertelen beta-celle funksjon er nøkkelen til understanding av patogenesen av type 2-diabetes en. For å nå dette målet, har et stort antall studier undersøkte mekanismene for kronisk næringsstoff overflødig ex vivo i isolerte øyer Langerhans eller in vitro i klonal, insulin-sekresjon cellelinjer. Imidlertid er oversettelse av resultatene fra disse modellsystemer til hele organismen komplisert, særlig fordi konsentrasjonen av fettsyrer som brukes i dyrkede celler eller holmer sjelden passe sirkulerende nivåer i nærhet av beta-cellene in vivo 2.. På den annen side, har mekanismene for betacellesvikt i respons til næringsstoff overskytende blitt undersøkt i gnagermodeller av diabetes, som eksemplifisert ved den Diabetic Fatty Zucker rotte 3,4, ørkenrotte Psammomys obesus 5 og den høy-fett diett- matet mus seks. Disse modellene, er imidlertid karakterisert ved iboende metabolismeforstyrrelser og er ikke lett mottagelig for manipulasjoner av blodglukoseog / eller lipidnivåer i en mer kontrollert og mindre kronisk innstilling. For å kunne endre sirkulerende nivåer av næringsstoffer i en tidsramme dager i ellers normale dyr, har vi utviklet en kronisk infusjon modell i normale rotter som gjør oss i stand til å undersøke effekten av lipider og glukose, alene eller i kombinasjon, på fysiologiske parametre og funksjon 7,8.

Protocol

Oversikt: Prosedyren består av kateteriserer høyre halsvene og venstre karotidarterie under generell anestesi, slik at en 7-dagers rekonvalesens periode; forbinder kateter til pumpene ved hjelp av en svivel og motvekt-system som gjør det mulig for dyret å bevege seg fritt i huset; og infusjon av glukose og / eller Intralipid (en soyaolje-emulsjon som genererer en blanding av ca 80% unsaturated/20% mettede fettsyrer Ved infusjon med heparin 9) i 72 timer. En. Can…

Representative Results

Ut av en serie på 42 rotter som gjennomgikk kirurgi, ble fem rotter tapt under den postoperative perioden og en rotte ble tapt under infusjonen, som representerer en samlet suksessrate på 86%. Den gjennomsnittlige kroppsvekt av 37 rotter som ble tilført til slutt var 608 ± 5 g før kirurgi, og 588 ± 6 g ved start av infusjonen (middelverdi ± SE, n = 37, p <0,0001 av paret t-test). Følgende representative resultater ble oppnådd i to infusjon grupper:. Saltvann (SAL), og glukose + Intralipid (GLU + IL) …

Discussion

Selv om en rekke tidligere studier har ansatt kroniske infusjoner av glukose (f.eks 10-15) eller lipider (f.eks 16,17) hos gnagere, til vår kunnskap kombinert tilførsel av både brensel har bare blitt rapportert hos mus 18 år. Den kroniske infusjon modellen som er presentert her gir flere fordeler for å studere effektene på næringsstoff overflødig på en rekke biologiske funksjoner hos rotter. Først, det innebærer ingen genetisk overvektige gnagere, og siden va…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av National Institutes of Health (R01DK58096 til Vincent Poitout). Vincent Poitout holder Canada Research Chair i Diabetes og bukspyttkjertelen Betacellefunksjon. Bader Zarrouki mottatt postdocs fra Merck og Eli Lilly. Ghislaine Fontes ble støttet av en post-doc fra den kanadiske Diabetes Association.

Materials

Name of Reagent/Material Company Catalog Number Comments
Saline 0.9% BD JB1324
Dextrose 70% McKesson
Intralipid 20% Fresenius Kabi JB6023
Metricide (Glutaraldehyde 2.6%) Metrex 11-1401
Heparin Sodium 10,000 USP u/ml PPC
Carprofen Metacam
Glycopyrrolate Sandoz
Isoflurane Abbott
Chlohexidine 2%
Alcohol 70%
Iodine
PE-50 BD 427411
CO-EX T22 Instech Solomon BCOEX-T22
Connector 22G Instech Solomon SC22/15
Swivel 22G Instech Solomon 375/22PS
Y-Connector 22G Instech Solomon
Counterbalance and arm Instech Solomon CM375BP
23 G blunted needles Instech Solomon LS23
23 G canulation pins Instech Solomon SP23/12
Tethers (12 inch) Lomir RT12D
Infusion jackets Lomir RJ01, RJ02, RJ03, RJ04
(SM-XL)
Tether attachment piece Lomir RS T1
60 ml syringe BD 309653
1 ml syringe BD 309602

References

  1. Poitout, V., Robertson, R. P. Glucolipotoxicity: fuel excess and beta-cell dysfunction. Endocr. Rev. 29, 351-366 (2008).
  2. Poitout, V., et al. Glucolipotoxicity of the pancreatic beta cell. Biochim. Biophys. Acta. 1801, 289-298 (2010).
  3. Unger, R. H. Minireview: weapons of lean body mass destruction: the role of ectopic lipids in the metabolic syndrome. Endocrinology. 144, 5159-5165 (2003).
  4. Harmon, J. S., Gleason, C. E., Tanaka, Y., Poitout, V., Robertson, R. P. Antecedent hyperglycemia, not hyperlipidemia, is associated with increased islet triacylglycerol content and decreased insulin gene mRNA level in Zucker diabetic fatty rats. Diabetes. 50, 2481-2486 (2001).
  5. Bachar, E., Ariav, Y., Cerasi, E., Kaiser, N., Leibowitz, G. Neuronal nitric oxide synthase protects the pancreatic beta cell from glucolipotoxicity-induced endoplasmic reticulum stress and apoptosis. Diabetologia. 53, 2177-2187 (2010).
  6. Peyot, M. L., et al. Beta-cell failure in diet-induced obese mice stratified according to body weight gain: secretory dysfunction and altered islet lipid metabolism without steatosis or reduced beta-cell mass. Diabetes. 59, 2178-2187 (2010).
  7. Hagman, D. K., et al. Cyclical and alternating infusions of glucose and intralipid in rats inhibit insulin gene expression and Pdx-1 binding in islets. Diabetes. 57, 424-431 (2008).
  8. Fontes, G., et al. Glucolipotoxicity age-dependently impairs beta cell function in rats despite a marked increase in beta cell mass. Diabetologia. 53, 2369-2379 (2010).
  9. Stein, D. T., et al. Essentiality of circulating fatty acids for glucose-stimulated insulin secretion in the fasted rat. J. Clin. Invest. 97, 2728-2735 (1996).
  10. Leahy, J. L., Cooper, H. E., Weir, G. C. Impaired insulin secretion associated with near normoglycemia. Study in normal rats with 96-h in vivo glucose infusions. Diabetes. 36, 459-464 (1987).
  11. Hager, S. R., Jochen, A. L., Kalkhoff, R. K. Insulin resistance in normal rats infused with glucose for 72 h. The American Journal of Physiology. 260, 353-362 (1991).
  12. Laybutt, D. R., Chisholm, D. J., Kraegen, E. W. Specific adaptations in muscle and adipose tissue in response to chronic systemic glucose oversupply in rats. The American Journal of Physiology. 273, E1-E9 (1997).
  13. Jonas, J. C., et al. High glucose stimulates early response gene c-Myc expression in rat pancreatic beta cells. The Journal of Biological Chemistry. 276, 35375-35381 (2001).
  14. Tang, C., et al. Glucose-induced beta cell dysfunction in vivo in rats: link between oxidative stress and endoplasmic reticulum stress. Diabetologia. 55, 1366-1379 (2012).
  15. Alonso, L. C., et al. Glucose infusion in mice: a new model to induce beta-cell replication. Diabetes. 56, 1792-1801 (2007).
  16. Magnan, C., Gilbert, M., Kahn, B. B. Chronic free fatty acid infusion in rats results in insulin resistance but no alteration in insulin-responsive glucose transporter levels in skeletal muscle. Lipids. 31, 1141-1149 (1996).
  17. Goh, T. T., et al. Lipid-induced beta-cell dysfunction in vivo in models of progressive beta-cell failure. Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab. 292, 549-560 (2007).
  18. Pascoe, J., et al. Free fatty acids block glucose-induced beta-cell proliferation in mice by inducing cell cycle inhibitors p16 and p18. Diabetes. 61, 632-641 (2012).
  19. Bell, C. G., Walley, A. J., Froguel, P. The genetics of human obesity. Nature Reviews. Genetics. 6, 221-234 (2005).
  20. Fontes, G., Hagman, D. K., Latour, M. G., Semache, M., Poitout, V. Lack of preservation of insulin gene expression by a glucagon-like peptide 1 agonist or a dipeptidyl peptidase 4 inhibitor in an in vivo model of glucolipotoxicity. Diabetes Res. Clin. Pract. 87, 322-328 (2010).
  21. Crawford, P. A., Schaffer, J. E. Metabolic stress in the myocardium: Adaptations of gene expression. Journal of Molecular and Cellular Cardiology. , (2012).
  22. Kewalramani, G., Bilan, P. J., Klip, A. Muscle insulin resistance: assault by lipids, cytokines and local macrophages. Curr. Opin. Clin. Nutr. Metab Care. 13, 382-390 (2010).
  23. Cusi, K. Role of obesity and lipotoxicity in the development of nonalcoholic steatohepatitis: pathophysiology and clinical implications. Gastroenterology. 142, 711-725 (2012).
check_url/50267?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Fergusson, G., Ethier, M., Zarrouki, B., Fontés, G., Poitout, V. A Model of Chronic Nutrient Infusion in the Rat. J. Vis. Exp. (78), e50267, doi:10.3791/50267 (2013).

View Video