Summary

Ongerichte Metabolomics uit biologische grondstoffen gebruiken UltraPerformance Liquid Chromatography-hoge resolutie massaspectrometrie (UPLC-HRMS)

Published: May 20, 2013
doi:

Summary

Ongerichte metabolomics biedt een hypothese genererende momentopname van een metabool profiel. Dit protocol zal de extractie en analyse van metabolieten uit cellen, serum of weefsel tonen. Een reeks van metabolieten worden onderzocht met behulp van vloeistof-vloeistof fase-extractie, microflow UltraPerformance vloeistofchromatografie / hoge-resolutie massaspectrometrie (UPLC-HRMS) gekoppeld aan differentiële analyse software.

Abstract

Hier presenteren we een workflow om de metabolische profielen te analyseren voor biologische monsters van belang, met inbegrip, cellen, serum of weefsel. Het monster wordt eerst gescheiden in polaire en niet-polaire fracties met een vloeistof-vloeistof fase-extractie, en gedeeltelijk gezuiverd downstream analyse te vergemakkelijken. Beide waterige (polaire metabolieten) en organische (niet-polaire metabolieten) fasen van de aanvankelijke extractie worden verwerkt tot een groot aantal metabolieten onderzoeken. Metabolieten worden gescheiden door verschillende vloeistofchromatografie methoden gebaseerd op hun partitie eigenschappen. In deze methode presenteren we microflow hoogperformante (UP) LC methoden, maar het protocol is schaalbaar tot hogere stromen en lagere drukken. Inleiding in de massaspectrometer kan via algemene of samengestelde geoptimaliseerde bron voorwaarden. Detectie van een breed scala van ionen wordt in volledige scan mode uitgevoerd in zowel positieve als negatieve wijze over een breed m / z assortiment met een hoge resolutie op een recent calibrated instrument. Label-free differentiële analyse wordt uitgevoerd op bioinformatica platforms. Toepassingen van deze aanpak zijn metabole route screening, de ontdekking van biomarkers en de ontwikkeling van geneesmiddelen.

Introduction

Als gevolg van recente technologische ontwikkelingen op het gebied van HRMS, hebben ongerichte, hypothese-genererende metabolomics aanpak een haalbare aanpak worden voor de analyse van complexe monsters. 1 massaspectrometers staat 100000 resolutie vergemakkelijken routine lage deel per miljoen (ppm) nauwkeurigheid van massa's zijn op grote schaal te worden beschikbaar zijn van meerdere leveranciers. 2,3 Dit nauwkeurigheid van massa mogelijk maakt grotere specificiteit en het vertrouwen in een voorlopige toewijzing van de identiteit analyt, isotopische patroonherkenning, en adduct identificatie. 4 In combinatie met een geschikte extractiemethode en high-performance LC of UPLC, complexe mengsels kunnen worden geanalyseerd met extra specificiteit afgeleid van retentietijdgegevens. 5 UPLC bezit chromatografische grotere efficiëntie en maakt een grotere gevoeligheid, resolutie en analysetijd die een grotere dekking van de mogelijke metabolome. 6 De resulterende grote datasets kan worden geïntegreerd in elkevan meerdere differentiële analyse software en ontgonnen bruikbare patronen of individueel te bepalen analyten. 7,8,9,10,11 Vermeende treffers kan in eerste instantie worden geïdentificeerd met behulp van een combinatie van piek-detectie-algoritmen, accurate massa gebaseerde chemische formule voorspelling, fragmentatie voorspelling, en chemische zoeken in databanken. Deze aanpak maakt prioritering van doelstellingen voor tijdrovende volledige structurele identificatie of voor de ontwikkeling van gevoeliger en specifieker stabiele isotoop verdunning UPLC / geselecteerde of meerdere reactie bewaking / MS studies dat de huidige gouden standaard methoden voor het kwantificeren zijn. 12

De wisselende aard van de biologische monsters heeft geleid tot optimalisatie van extractie protocollen voor urine 13 cellen 14, 15 serum of weefsel 16. Dit protocoleigenschappen extracties voor cellen, serum en weefsel. In voorkomend geval, zijn commentaar en extra verwijzingen opgenomen voor aanpasgen van de procedure opname van stabiele isotopen pakken, of voor opname van bijzonder onstabiel metabolieten.

Protocol

1. Staalextractie uit cellen Voor een 10 cm plaat van cellen: verzamel 1,5 ml celsuspensie opgeheven in media in een pre-gelabelde 10 ml glazen centrifugebuis. Voor aanhangend lijnen, moeten cellen worden opgeheven met zachte schrapen in 1,5 ml van media op ijs bewaard Optioneel:. Als interne standaarden worden gebruikt, voeg een passende hoeveelheid bij deze stap. Commentaar: Het doven van de cellulaire stofwisseling is cruciaal voor bepaalde metabolieten. Voor de analyse van tijdgev…

Representative Results

De gepresenteerde resultaten tonen geselecteerde gegevens uit een 6-uur behandeling van SH-SY5Y glioblastoma cellen met het bestrijdingsmiddel en mitochondriaal complex I remmer rotenone. Kortheidshalve wordt alleen de organische fase positieve modus gepresenteerde gegevens. De monsters werden verwerkt en geanalyseerd zoals hierboven beschreven (Figuur 1, Tabel 1, Tabel 2) en aangebracht op twee differentiële analyseplatforms voor label-free kwantificering ZEEF en XCMS online. Hoewel een groot aantal h…

Discussion

Ongerichte metabolomics biedt een krachtig hulpmiddel voor het onderzoeken van endogene of lichaamsvreemde biotransformaties, of het vastleggen van een metabool profiel van een steekproef van belang. De uitgang van de techniek schalen met de resolutie en de gevoeligheid van de gebruikte te scheiden en analyseren van het monster, het vermogen om te gaan met de grote datasets gegenereerd technologie, en de mogelijkheid om de dataset voor nuttige informatie (bv. accurate massa zoeken in databanken) delven. Onlangs…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Wij erkennen de steun van NIH beurzen P30ES013508 en 5T32GM008076. We danken ook Thermo Scientific voor de toegang tot ZEEF 2.0 en Drs. Eugene Ciccimaro en Mark Sanders van Thermo Scientific voor nuttige discussies.

Materials

      Reagent
Phosphate Buffered Saline Mediatech 21-031-CM  
Water (H2O) Fisher Scientific W7-4 (optima)
Acetonitrile (CH3CN) Fisher Scientific A996-4 (optima)
Methanol (CH3OH) Fisher Scientific A454-4 (optima)
Isopropanol Fisher Scientific A464-4 (optima)
Chloroform (CH3Cl) Sigma-Aldrich 366927 Hazard
Dichloromethane (CH2Cl2) Acros Organics 61030-1000 To replace chloroform
Diethyl Ether Sigma-Aldrich 346136 To replace chloroform
Formic Acid (FA) Fisher Scientific   (optima)
NH4OH Fisher Scientific A470-250 (optima)
Ammonium formate (HCOONH4) Sigma-Aldrich 78314  
MicroSpin C18 Columns Nest Group Inc SS18V  
Pasteur Pipettes Fisher Scientific 13-678-200  
10 ml Glass Centrifuge Tubes Kimble Chase 73785-10  
10 ml Plastic Centrifuge Tubes CellTreat CLS-4301-015  
LC Vials (glass) Waters 60000751CV  
LC Inserts (glass) Waters WAT094171  
LC Vials (plastic) Waters 186002640  
0.22 μm Filters Corning 8169 nylon
2 ml Eppendorf Tubes BioExpress C-3229-1 Low Retention
      Equipment
High Resolution Mass Spectrometer Thermo Scientific LTQ XL-Orbitrap  
HPLC/UPLC Waters nanoACQUITY UPLC  
Source Michrom Thermo Advance Source  
Differential Analysis Software Thermo Scientific SIEVE 2.0  
nanoACQUITY C18 BEH130 Waters 186003546 1.7 μm particle size, 150 mm x 100 μm
Acentis Express C8 Sigma-Aldrich 54262 2.7 μm particle size, 15 cm x 200 μm

References

  1. Pluskal, T., Nakamura, T., Villar-Briones, A., Yanagida, M. Metabolic profiling of the fission yeast S. pombe: quantification of compounds under different temperatures and genetic perturbation. Mol. Biosyst. 6 (1), 182-198 (2010).
  2. Makarov, A., Denisov, E., et al. Performance Evaluation of a Hybrid Linear Ion Trap/Orbitrap Mass Spectrometer. Analytical Chemistry. 78 (7), 2113-2120 (2006).
  3. Timischl, B., Dettmer, K., Kaspar, H., Thieme, M., Oefner, P. J. Development of a quantitative, validated capillary electrophoresis-time of flight-mass spectrometry method with integrated high-confidence analyte identification for metabolomics. Electrophoresis. 29 (10), 2203-2214 (2008).
  4. Katajamaa, M., Oresic, M. Data processing for mass spectrometry-based metabolomics. J. Chromatogr. A. 1158 (1-2), 318-328 (2007).
  5. Katajamaa, M., Oresic, M. Processing methods for differential analysis of LC/MS profile data. BMC Bioinformatics. 6, 179 (2005).
  6. Wilson, I. D., Nicholson, J. K., et al. High resolution ultra performance liquid chromatography coupled to q-TOF mass spectrometry as a tool for differential metabolic pathway profiling in functional genomic studies. Journal of Proteome Research. 4 (2), 591-598 (2005).
  7. Benton, H. P., Wong, D. M., Trauger, S. A., Siuzdak, G. XCMS2: processing tandem mass spectrometry data for metabolite identification and structural characterization. Anal. Chem. 80 (16), 6382-6389 (2008).
  8. Katajamaa, M., Miettinen, J., Oresic, M. MZmine: toolbox for processing and visualization of mass spectrometry based molecular profile data. Bioinformatics. 22 (5), 634-636 (2006).
  9. Pluskal, T., Castillo, S., Villar-Briones, A., Oresic, M. MZmine 2: Modular framework for processing, visualizing, and analyzing mass spectrometry-based molecular profile data. BMC Bioinformatics. 11 (1), 395 (2010).
  10. Smith, C. A., Want, E. J., O’Maille, G., Abagyan, R., Siuzdak, G. XCMS: Processing Mass Spectrometry Data for Metabolite Profiling Using Nonlinear Peak Alignment, Matching, and Identification. Analytical Chemistry. 78 (3), 779-787 (2006).
  11. Tautenhahn, R., Patti, G. J., Rinehart, D., Siuzdak, G. XCMS Online: A Web-Based Platform to Process Untargeted Metabolomic Data. Analytical Chemistry. 84 (11), 5035-5039 (2012).
  12. Gelhaus, S. L., Mesaros, A. C., Blair, I. A. Cellular Lipid Extraction for Targeted Stable Isotope Dilution Liquid Chromatography-Mass Spectrometry Analysis. J. Vis. Exp. (57), e3399 (2011).
  13. Want, E. J., Wilson, I. D., et al. Global metabolic profiling procedures for urine using UPLCGÇôMS. Nature Protocols. 5 (6), 1005-1018 (2010).
  14. Sellick, C. A., Hansen, R., Stephens, G. M., Goodacre, R., Dickson, A. J. Metabolite extraction from suspension-cultured mammalian cells for global metabolite profiling. Nature Protocols. 6 (8), 1241-1249 (2011).
  15. Dunn, W. B., Broadhurst, D., et al. Procedures for large-scale metabolic profiling of serum and plasma using gas chromatography and liquid chromatography coupled to mass spectrometry. Nature protocols. 6 (7), 1060-1083 (2011).
  16. Masson, P., Alves, A. C., Ebbels, T. M. D., Nicholson, J. K., Want, E. J. Optimization and evaluation of metabolite extraction protocols for untargeted metabolic profiling of liver samples by UPLC-MS. Analytical Chemistry. 82 (18), 7779-7786 (2010).
  17. Shaham, O., Slate, N. G., et al. A plasma signature of human mitochondrial disease revealed through metabolic profiling of spent media from cultured muscle cells. Proceedings of the National Academy of Sciences. 107 (4), 1571-1575 (2010).
  18. Cequier-Saünchez, E., Rodriüguez, C., Ravelo, A. G., Zaürate, R. Dichloromethane as a Solvent for Lipid Extraction and Assessment of Lipid Classes and Fatty Acids from Samples of Different Natures. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 56 (12), 4297-4303 (2008).
  19. Keller, A., Eng, J., Zhang, N., Li, X. J., Aebersold, R. A uniform proteomics MS/MS analysis platform utilizing open XML file formats. Mol. Syst. Biol. 1, (2005).
  20. Cleveland, W. S., Devlin, S. J. Locally weighted regression – an approach to regression-analysis by local fitting. J. Am. Stat. Assoc. 83 (403), 596-610 (1988).
  21. Lange, E., Tautenhahn, R., Neumann, S., Gropl, C. Critical assessment of alignment procedures for LC-MS proteomics and metabolomics measurements. BMC Bioinformatics. 9 (1), 375 (2008).
  22. Tautenhahn, R., Bottcher, C., Neumann, S. Highly sensitive feature detection for high resolution LC/MS. BMC Bioinformatics. 9 (1), 504 (2008).
  23. Kuhl, C., Tautenhahn, R., Bottcher, C., Larson, T. R., Neumann, S. CAMERA: An Integrated Strategy for Compound Spectra Extraction and Annotation of Liquid Chromatography/Mass Spectrometry Data Sets. Analytical Chemistry. 84 (1), 283-289 (2012).
  24. Kanehisa, M., Goto, S. KEGG: kyoto encyclopedia of genes and genomes. Nucleic Acids Res. 28 (1), 27-30 (2000).
  25. Smith, C. A., O’Maille, G., et al. METLIN: a metabolite mass spectral database. Ther. Drug Monit. 27 (6), 747-751 (2005).
  26. Wang, Y., Xiao, J., Suzek, T. O., Zhang, J., Wang, J., Bryant, S. H. PubChem: a public information system for analyzing bioactivities of small molecules. Nucleic Acids Res. 37 Web Server, W623-W633 (2009).
  27. Wishart, D. S., Knox, C., et al. HMDB: a knowledgebase for the human metabolome. Nucleic Acids Res. 37 Database, D603-D610 (2009).
  28. Bligh, E. G., Dyer, W. J. A rapid method of total lipid extraction and purification. Canadian Journal of Biochemistry and Physiology. 37 (8), 911-917 (1959).
  29. Folch, J. A simple method for the isolation and purification of total lipids from animal tissues. J. Biol. Chem. 226, 497-509 (1957).
  30. Avery, M. J. Quantitative characterization of differential ion suppression on liquid chromatography/atmospheric pressure ionization mass spectrometric bioanalytical methods. Rapid Communications in Mass Spectrometry. 17 (3), 197-201 (2003).
check_url/50433?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Snyder, N. W., Khezam, M., Mesaros, C. A., Worth, A., Blair, I. A. Untargeted Metabolomics from Biological Sources Using Ultraperformance Liquid Chromatography-High Resolution Mass Spectrometry (UPLC-HRMS). J. Vis. Exp. (75), e50433, doi:10.3791/50433 (2013).

View Video