Summary

En<em> Caenorhabditis elegans</em> Modell System for Amylopathy Study

Published: May 17, 2013
doi:

Summary

Vi beskriver metoder for å studere aspekter av amylopathies i ormen<em> C. elegans</em>. Vi viser hvordan du kan lage ormer uttrykker menneskelig Aβ<sub> 42</sub> I nevroner og hvordan du kan teste deres funksjon i atferdsmessige analyser. Vi viser videre hvordan man skal oppnå primære nevronale kulturer som kan brukes for farmakologisk testing.

Abstract

Amylopathy er et begrep som beskriver unormal syntese og akkumulering av amyloid beta (Aβ) i vev med tiden. Aβ er et kjennetegn på Alzheimers sykdom (AD) og finnes i Lewy legeme demens, inkludering kropp myositt og cerebral amyloid angiopathy 1-4. Amylopathies gradvis utvikle seg med tiden. Av denne grunn enkle organismer med korte livsløp kan bidra til å belyse molekylære aspekter av disse forholdene. Her beskriver vi eksperimentelle protokoller for å studere Aβ-mediert neurodegeneration hjelp ormen Caenorhabditis elegans. Dermed konstruerer vi transgene ormer ved å injisere DNA koder for human Aβ 42 inn i syncytial gonader av voksne hermafroditter. Transformant linjer er stabilisert av en mutagenese-indusert integrering. Nematoder er alder synkronisert ved å samle og såing sine egg. Funksjonen av nevroner uttrykker Aβ 42 er testet i beleilige atferds-analyser (kjemotaksis analysene). Primære nevrale kulturer hentet fra embryoer blir brukt til å utfylle atferdsmessige data og for å teste de nervecellene effekter av anti-apoptotiske forbindelser.

Introduction

Amyloid beta (Aβ) er et peptid med 36-43 aminosyrer som er dannet etter sekvensiell spalting av amyloid forløper protein (APP) med β og γ secretases en. Den γ sekretaselignende behandler den C-terminale ende av peptidet Aβ og er ansvarlig for dets variable lengder 5. De vanligste formene for Aβ er Aβ 40 og Aβ 42, sistnevnte blir oftere assosiert til patologiske tilstander som AD fem. Ved høye konsentrasjoner Aβ danner β-ark som samlet for å danne amyloid fibriller seks. Fibriller innskudd er den viktigste komponenten i senile plakk rundt nerveceller. Begge plaketter og diffusible, ikke-plakk Aβ oligomers, antas å utgjøre de underliggende sykdomsfremkallende former for Aβ.

Laboratory studie av neuronal amylopathies er komplisert ved det faktum at disse forholdene fremgang med tiden. Derfor er det important å utvikle genetisk medgjørlig dyremodeller-komplementær til mus-med kort levetid. Disse modellene kan brukes til å belyse spesifikke aspekter ved amylopathies-typisk cellulært og molekylært-og i kraft av sin enkelhet, bidra til å fange essensen av problemet. Ormen Caenorhabditis elegans fall er denne kategorien. Den har en kort levetid, ~ 20 dager og i tillegg grunnleggende cellulære prosesser, inkludert regulering av genekspresjon, protein trafficking, neuronal tilkobling, synaptogenesis, celle signalisering og død er lik pattedyr 7. Unike trekk ved orm omfatter kraftige genetikk og mangel på et fartøy system, som gjør det mulig å studere neuronal skade uavhengig av vaskulær skade. På den annen side begrenser mangelen på et hjerne bruk av C. elegans til å studere mange sider av neurodegeneration. I tillegg kan den reproduksjon og identifisering av anatomiske fordelinger av lesjonene ikke utføres i denne organisme. Andre rettningslinjersjoner inkluderer problemer med å vurdere både forskjeller i genekspresjonsprofiler og nedskrivning av kompleks atferd og minnefunksjon. Her beskriver vi metoder for å generere C. elegans modeller av amylopathies.

Protocol

En. Bygging av transgene Worms Transformasjon. Forbered injeksjon pads. Plasser en dråpe varm, 2% agarose oppløst i vann, på en glass dekkglass. Raskt plassere en andre dekkglass på slipp og lett trykk på det. Etter at agarosen er størknet, slide dekkglass fra hverandre, og bake dekkglass-matte i en vakuumovn ved 80 ° CO / N. Trekk pipetter. Vi bruker en Sutter P-97 avtrekker for å trekke 1/0.5 mm OD / ID borosilikat kapillærer med glødetråd. Pipetter er smidd med lukket tips som…

Representative Results

Med våre protokoller studerer vi effekter av menneskelig Aβ 42 oligomeren på nervecellefunksjon åtte. Et fragment koding menneskelig Aβ 42 og den kunstige signal peptid kodende sekvens av Brann vektor pPD50.52 ble forsterket fra konstruksjon PCL12 ni bruke primere som introduserte en Sma en restriksjonsendonuklease nettsted på endene. Fragmentet ble deretter satt inn i en konstruksjon som inneholder et 2481-bp FLP-6 promotersekvens i pPD95.75 Brann vektoren mell…

Discussion

Her beskriver vi en kombinert tilnærming, for å studere cellulære og molekylære aspekter av amylopathies hjelp C. elegans. Fordelene ved denne metode er: 1). Lav kostnad C.elegans opprettholdes i normal petriskål podet med bakterier, ved romtemperatur. 2) Kraftige genetikk. Transgene dyr kan bli oppnådd i få måneder, og et bredt utvalg av promotor-sekvenser er tilgjengelig for å drive ekspresjon av det ønskede gen i bestemte nerveceller. 3) Enkle, godt karakterisert, nervesystemet. C. ele…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

<p class="jove_content"> Vi takker Dr. Shuang Liu for kritisk lesing av manuskriptet. Den PCL12 konstruksjonen var en gave skjema Dr. Christopher D. Link. Dette arbeidet ble støttet av to National Science Foundation tilskudd (0842708 og 1026958) og en AHA stipend (09GRNT2250529) til FS.</p

Materials

Name of Reagent Company Catalog Number Comments
      1. NGM
Sodium Chloride Sigma-Aldrich S5886 3 g
Bacteriological agar AMRESCO J637 17 g
Bacto-peptone AMRESCO J636 2.5 g
Distilled Water     Bring to 975 ml
      Sterilized by autoclaving, then add the following items and mix well
Magnesium sulfate Sigma-Aldrich M2643 1 ml of 1 M stock
Calcium Chloride Sigma-Aldrich C5670 1 ml of 1 M stock
Cholesterol Sigma-Aldrich C3045 1 ml of 5 mg/ml stock( in ethanol)
Potassium phosphate buffer     25 ml of 1M stock
      2. Potassium phosphate buffer
Potassium phosphate monobasic Sigma-Aldrich P5655 108.3 g
Potassium phosphate dibasic Sigma-Aldrich P3786 35.6 g
Distilled Water     Bring to 1 L
      Sterilized by autoclaving
      3. M9 buffer
Potassium phosphate monobasic Sigma-Aldrich P5655 3 g
Sodium phosphate dibasic Sigma-Aldrich S5136 6 g
Sodium Chloride Sigma-Aldrich S5886 5 g
Magnesium sulfate Sigma-Aldrich M2643 1 ml of 1 M stock
Distilled Water     Bring to 1 L
      Sterilized by autoclaving
      4. Egg buffer (pH 7.3, 340 mOsm)
Sodium Chloride Sigma-Aldrich S5886 118 mM
Potassium Chloride Sigma-Aldrich P5405 48 mM
Calcium Chloride Sigma-Aldrich C5670 2 mM
Magnesium Chloride Sigma-Aldrich M4880 2 mM
HEPES Fisher Scientific BP310 25 mM
Distilled Water     Bring to 1 L
      Sterilized by autoclaving
      5. CM-15
L-15 culture medium Gibco 11415 450 ml
Fetal Bovine Serum Gibco 10437-028 50 ml
Penicillin Gibco 15140 50 units/ml
Streptomycin Gibco 15140 50 g/ml
      Adjust to 340 mOsm with sucrose then sterile filter into autoclaved bottles and store at 4 °C
      6. Other Reagents
Halocarbon 700 oil Halocarbon Products 9002-83-9  
5 μm Acrodisc Syringe Filter PALL Co. 4199  
Chitinase Sigma-Aldrich C6137-5UN  
Lectin (peanut) Sigma-Aldrich L0881-10MG  
Sodium hydroxide Fisher Scientific S320  
Lysine Sigma-Aldrich L5501  
Biotin Sigma-Aldrich B4639  
Sodium hypochlorite solution Sigma-Aldrich 425044  
Sodium azide Sigma-Aldrich 71289  
Sucrose Sigma-Aldrich S0389  

References

  1. Hardy, J., Allsop, D. Amyloid deposition as the central event in the aetiology of Alzheimer’s disease. Trends in Pharmacological Sciences. 12 (10), 383-388 (1991).
  2. Kotzbauer, P. T., Trojanowsk, J. Q., Lee, V. M. Lewy body pathology in Alzheimer’s disease. Journal of Molecular Neuroscience. 17 (2), 225-232 (2001).
  3. Greenberg, S. A. Inclusion body myositis: review of recent literature. Current Neurology and Neuroscience Reports. 9 (1), 83-89 (2009).
  4. Revesz, T., et al. Sporadic and familial cerebral amyloid angiopathies. Brain Pathology. 12 (3), 343-357 (2002).
  5. Hartmann, T., et al. Distinct sites of intracellular production for Alzheimer’s disease A beta40/42 amyloid peptides. Nature Medicine. 3 (9), 1016-1020 (1997).
  6. Ohnishi, S., Takano, K. Amyloid fibrils from the viewpoint of protein folding. Cellular and Molecular Life sciences: CMLS. 61 (5), 511-524 (2004).
  7. DL, R. i. d. d. l. e., et al. C. elegans II. Cold Spring Harbor Monograph. 1, 1222 (1997).
  8. Cotella, D., et al. Toxic role of k+ channel oxidation in Mammalian brain. The Journal of Neuroscience: the official journal of the Society for Neuroscience. 32 (12), 4133-4144 (2012).
  9. Link, C. D. Expression of human beta-amyloid peptide in transgenic Caenorhabditis elegans. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 92 (20), 9368-9372 (1995).
  10. Cai, S. Q., Sesti, F. Oxidation of a potassium channel causes progressive sensory function loss during aging. Nature Neuroscience. 12 (5), 611-617 (2009).
  11. Yu, S., et al. Guanylyl cyclase expression in specific sensory neurons: a new family of chemosensory receptors. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 94, 3384-3387 (1997).
  12. Bargmann, C. I., Horvitz, H. R. Chemosensory neurons with overlapping functions direct chemotaxis to multiple chemicals in C. elegans. Neuron. 7 (5), 729-742 (1991).
  13. Caserta, T. M., et al. Q-VD-OPh, a broad spectrum caspase inhibitor with potent antiapoptotic properties. Apoptosis : an international journal on programmed cell death. 8 (4), 345-352 (2003).
  14. Christensen, M., et al. A primary culture system for functional analysis of C. elegans neurons and muscle cells. Neuron. 33 (4), 503-514 (2002).
check_url/50435?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Duan, Z., Sesti, F. A Caenorhabditis elegans Model System for Amylopathy Study. J. Vis. Exp. (75), e50435, doi:10.3791/50435 (2013).

View Video