Summary

Transplantation av inducerad Pluripotent Stamcell-härledd Mesoangioblast-liknande Myogena föregångare i musmodeller av muskelregenerering

Published: January 20, 2014
doi:

Summary

Inducerad pluripotent stamcell (iPSC)-härledda myogena stamceller är lovande kandidater för cellterapi strategier för att behandla muskulösa dystrophies. Detta protokoll beskriver transplantation och funktionella mätningar som krävs för att utvärdera engraftment och differentiering av iPSC-härledda mesoangioblaster (en typ av muskel avkomma) i mus modeller av akut och kronisk muskel regenerering.

Abstract

Patient-härledda iPSCs kan vara en ovärderlig källa till celler för framtida autolog cell terapi protokoll. iPSC-härledda myogena stam/stamceller som liknar pericyte-härledda mesoangioblaster (iPSC-härledda mesoangioblastliknande stam-/stamceller: IDEM) kan fastställas från iPSCs som genereras från patienter som drabbats av olika former av muskeldystrofi. Patientspecifika IDEMs kan korrigeras genetiskt med olika strategier(t.ex. lentivirala vektorer, mänskliga konstgjorda kromosomer) och förbättras i deras myogena differentiering potential vid överuttryck av myogenes regulator MyoD. Denna myogena potential utvärderas sedan in vitro med specifika differentieringsanalyser och analyseras av immunofluorescens. Den regenerativa potentialen hos IDEMs utvärderas ytterligare in vivo, vid intramuskulär och intra-arteriell transplantation i två representativa musmodeller som visar akut och kronisk muskelregenerering. IDEMs bidrag till värd skelettmuskeln bekräftas sedan av olika funktionella tester hos transplanterade möss. I synnerhet studeras förbättringen av djurens motoriska kapacitet med löpbandstester. Cellengraftment och differentiering bedöms sedan av ett antal histologiska och immunofluorescens analyser på transplanterade muskler. Sammantaget beskriver detta dokument de analyser och verktyg som för närvarande används för att utvärdera differentieringskapaciteten hos IDEMs, med fokus på transplantationsmetoder och efterföljande utfallsåtgärder för att analysera effekten av celltransplantation.

Introduction

Mesoangioblaster (MAB) är kärlrelaterade muskelavkompitorer som härrör från en delmängd av pericyter1-3. Den största fördelen med MABs över kanoniska muskel stamceller såsom satellitceller4 ligger i deras förmåga att korsa kärlväggen när de levereras intra-kranskärlen och därmed bidra till skelettmuskulatur regenerering i cellterapi protokoll. Denna funktion har utvärderats och bekräftats i både murin- och hundmodeller av muskeldystrofi1,5,6. Dessa prekliniska studier har byggt grunden för en första-i-man fas I/II klinisk studie baserad på intraartärtransplantation av donator HLA-identiska MABs hos barn med Duchenne muskeldystrofi (EudraCT nr 2011-000176-33; för närvarande pågår på San Raffaele sjukhus i Milano, Italien). Ett av de största hindren för cellterapimetoder, där miljarder celler behövs för att behandla muskeln i en hel kropp, är den begränsade proliferativa potentialen hos “läkemedlet” (cellerna). Dessutom har det nyligen visats att det inte är möjligt att få MAB från patienter som drabbats av vissa former av muskeldystroféer, eftersom det förekommer i muskeldystrofi 2D (LGMD2D; OMIM #608099)7.

För att övervinna dessa begränsningar har ett protokoll för härledande MAB-liknande stam-/stamceller från mänskliga och murin iPSCs nyligen upprättats7. Detta förfarande genererar lätt expanderbara cellpopulationer med en vaskulär gen signatur och immunophenotype mycket liknar vuxna muskel-härledda MABs. Vid uttryck av myogena reglerande faktorn MyoD genomgår både murin och mänskliga IDEMs (respektive MIDEMs och HIDEMs) terminal skelettmuskel differentiering. För att uppnå detta mål kan IDEMs transducera med vektorer som kan driva MyoD-uttryck, antingen konstitutivt eller på ett inducible sätt8-10. En lentiviral vektor som innehåller MyoD cDNA smält med östrogenreceptorn (MyoD-ER) används, vilket möjliggör dess nukleära flyttning vid tamoxifen (en östrogenanalog)administrering 11. Denna strategi resulterar i bildandet av hypertrofisk multinukleära myotuber, med hög effektivitet7. IDEMs är särskilt icke-tumorigena, kan inskriva och differentiera inuti värdmuskler vid transplantation och kan korrigeras genetiskt med olika vektorer(t.ex. lentivirus eller mänskliga konstgjorda kromosomer), vilket banar väg för framtida autologa terapeutiska strategier. Härledning, karakterisering och transplantation av IDEMs har beskrivits i ovanstående publikation7. Detta protokollpapper beskriver de analyser som utförts för att utvärdera in vitro myogen differentiering av IDEMs och efterföljande resultat mätningar för att testa effekten av deras transplantation i mus modeller av muskel regenerering.

Protocol

1. Bedömning av myogen och engraftmentpotential In vitro:MyoD-inducerad differentiering Generera en stabil cellinje av IDEMs transduced med tamoxifen-inducerbara MyoD-ER lentiviral vektor, titrerar multiplicity av infektion (MOI; t.ex. 1, 5 och 50) med hjälp av den färgning som beskrivs i 1.1.9 (MyHC) som ett resultat av förfarandets effektivitet. Täck en 3,5 cm skål med 1 ml 1% Matrigel och inkubera i 30 min vid 37 °C. Tvätta plattan två gånger med med…

Representative Results

De rapporterade representativa resultaten följer de viktigaste in vitro/in vivo-analyserna som beskrivs i arbetsflödet i figur 1. 48 timmar efter administrering av myoD-positiva kärnor efter administrering av 4OH-tamoxifen är identifierbara inom MyoD-ER-transduced IDEMs in culture(figur 2A). Cellerna smälter sedan samman och differentierar sig till flerkärniga myotuber (Figur 2B). När IDEMs transplanteras intramuskulärt till en murinmodell av akut muskel…

Discussion

iPSCs kan utökas på obestämd tid samtidigt som deras självförnyelsepotential bevaras och därmed hänvisas till att differentiera till ett brett spektrum av cellinje12. Av denna och andra skäl anses iPSC-härledda stam/stamceller vara en lovande källa för autolog gen- och cellterapimetoder13. Ett tidigare publicerat verk från författarna rapporterade genereringen av mus och mänskliga myogena stamceller från iPSCs med en fenotyp som liknar pericyte-härledda MABs (IDEMs) och deras effekti…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Författarna tackar Giulio Cossu, Martina Ragazzi och hela laboratoriet för hjälpsam diskussion och stöd, och Jeff Chamberlain för vänligt tillhandahållaNde MyoD-ER vektor. Alla försök med levande djur slutfördes i enlighet med och i enlighet med alla relevanta reglerings- och institutionella organ, förordningar och riktlinjer. Arbetet i författarnas laboratorium stöds av UK Medical Research Council, Europeiska gemenskapens sjunde ramprojekt Optistem and Biodesign och det italienska duchenne parent project.

Materials

REAGENTS
MegaCell DMEM Sigma M3942
DMEM Sigma D5671
IMDM Sigma I3390
Horse serum Euroclone ECS0090L
Foetal Bovine Serum Lonza DE14801F
PBS Calcium/Magnesium free Lonza BE17-516F
L-Glutammine Sigma G7513
Penicilline/Streptomicin Sigma P0781
2-Mercaptoethanol Gibco 31350-010
ITS (Insulin-Transferrin-Selenium) Gibco 51500-056
Non-essential amino acid solution Sigma M7145
Fer-In-Sol Mead Johnson
Ferlixit Aventis
Oleic Acid Sigma 01257-10 mg
Linoleic Acid Sigma L5900-10 mg
Human bFGF Gibco AA 10-155
Grow factors-reduced Matrigel Becton Dickinson 356230
Trypsin Sigma T3924
Sodium heparin Mayne Pharma
Trypan blue solution Sigma T8154 HARMFUL
Patent blue dye Sigma 19, 821-8
EDTA Sigma E-4884
Paraformaldehyde TAAB P001 HARMFUL
Tamoxifen Sigma T5648
4-OH Tamoxifen Sigma H7904
pLv-CMV-MyoD-ER(T) Addgene 26809
Cardiotoxin Sigma C9759 HARMFUL
Povidone iodine
Tragachant gum MP biomedicals 104792
Isopenthane VWR 24,872,323
Tissue-tek OCT Sakura 4583
Sucrose VWR 27,480,294
Polarized glass slides Thermo J1800AMNZ
Eosin Y Sigma E4382
Hematoxylin Sigma HHS32
Masson's trichrome Bio-Optica 04-010802
Mouse anti Myosin Heavy Chain antibody DSHB MF20
Mouse anti Lamin A/C antibody Novocastra NLC-LAM-A/C
4/11/13 Cappel 559762
Hoechst 33342 Sigma fluka B2261
Rabbit anti Laminin antibody Sigma L9393
MATERIALS AND EQUIPMENT
Adsorbable antibacteric suture 4-0 Ethicon vcp310h
30G needle syringe BD 324826
Treadmill Columbus instrument
Steromicroscope Nikon SMZ800
Inverted microscope Leica DMIL LED
Isoflurane unit Harvad Apparatus
Fiber optics Euromecs (Holland) EK1
Heating pad Vet Tech C17A1
Scalpels Swann-Morton 11REF050
Surgical forceps Fine Scientific Tools 5/45
High temperature cauteriser Bovie Medical AA01
MEDIA COMPOSITION
Media composition is detailed below.
HIDEMs growth medium:
  • MegaCell Dulbecco's Modified Eagle Medium (MegaCell DMEM)
  • 5% fetal bovine serum (FBS)
  • 2 mM glutamine
  • 0.1 mM β-mercaptoethanol
  • 1% non essential amino acids
  • 5 ng / ml human basic fibroblast growth factor (bFGF)
  • 100 IU ml penicillin
  • 100 mg / ml streptomycin
Alternatively, if some of the above reagents are not available, HIDEMs can be grown in:
  • Iscove's Modified Dulbecco's Medium (IMDM)
  • 10 % FBS
  • 2 mM glutamine
  • 0.1 mM β-mercaptoethanol
  • 1% Non essential amino acids (NEAA)
  • 1% ITS (insulin / transferrin / selenium)
  • 5 ng / ml human bFGF
  • 100 IU ml penicillin
  • 100 mg / ml streptomycin
  • 0.5 μM oleic and linoleic acids
  • 1.5 μM Fe2+ (Fer-In-Sol)
  • 0.12 μM Fe3+ (Ferlixit)
MIDEMs growth medium:
  • DMEM
  • 20 % FBS
  • 2 mM glutamine
  • 5 ng / ml human bFGF
  • 100 IU ml penicillin
  • 100 mg / ml streptomycin
Differentiation medium:
  • DMEM
  • 2 % Horse Serum (HS)
  • 100 IU ml penicillin
  • 100 mg / ml streptomycin
  • 2 mM glutamine


Table 1. List of Reagents, Materials, Equipment, and Media.

References

  1. Dellavalle, A., et al. Pericytes of human skeletal muscle are myogenic precursors distinct from satellite cells. Nat. Cell Biol. 9, 255-267 (2007).
  2. Minasi, M. G., et al. The meso-angioblast: a multipotent, self-renewing cell that originates from the dorsal aorta and differentiates into most mesodermal tissues. Development. 129, 2773-2783 (2002).
  3. Dellavalle, A., et al. Pericytes resident in postnatal skeletal muscle differentiate into muscle fibres and generate satellite cells. Nat. Commun. 2, 499 (2011).
  4. Tedesco, F. S., Dellavalle, A., Diaz-Manera, J., Messina, G., Cossu, G. Repairing skeletal muscle: regenerative potential of skeletal muscle stem cells. J. Clin. Invest. 120, 11-19 (2010).
  5. Sampaolesi, M., et al. Cell therapy of alpha-sarcoglycan null dystrophic mice through intra-arterial delivery of mesoangioblasts. Science. 301, 487-492 (2003).
  6. Sampaolesi, M., et al. Mesoangioblast stem cells ameliorate muscle function in dystrophic dogs. Nature. 444, 574-579 (2006).
  7. Tedesco, F. S., et al. Transplantation of Genetically Corrected Human iPSC-Derived Progenitors in Mice with Limb-Girdle Muscular Dystrophy. Sci. Transl. Med. 4, (2012).
  8. Tedesco, F. S., et al. Stem cell-mediated transfer of a human artificial chromosome ameliorates muscular dystrophy. Sci. Transl. Med. 3, (2011).
  9. Lattanzi, L., et al. High efficiency myogenic conversion of human fibroblasts by adenoviral vector-mediated MyoD gene transfer. An alternative strategy for ex vivo gene therapy of primary myopathies. J. Clin. Invest. 101, 2119-2128 (1998).
  10. Chaouch, S., et al. Immortalized skin fibroblasts expressing conditional MyoD as a renewable and reliable source of converted human muscle cells to assess therapeutic strategies for muscular dystrophies: validation of an exon-skipping approach to restore dystrophin in Duchenne muscular dystrophy cells. Hum. Gene Ther. 20, 784-790 (2009).
  11. Kimura, E., et al. Cell-lineage regulated myogenesis for dystrophin replacement: a novel therapeutic approach for treatment of muscular dystrophy. Hum. Mol. Genet. 17, 2507-2517 (2008).
  12. Yamanaka, S. Induced pluripotent stem cells: past, present, and future. Cell Stem Cell. 10, 678-684 (2012).
  13. Wu, S. M., Hochedlinger, K. Harnessing the potential of induced pluripotent stem cells for regenerative medicine. Nat. Cell Biol. 13, 497-505 (2011).
check_url/50532?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Gerli, M. F. M., Maffioletti, S. M., Millet, Q., Tedesco, F. S. Transplantation of Induced Pluripotent Stem Cell-derived Mesoangioblast-like Myogenic Progenitors in Mouse Models of Muscle Regeneration. J. Vis. Exp. (83), e50532, doi:10.3791/50532 (2014).

View Video