Summary

Levedyktighet Analyser for celler i kultur

Published: January 20, 2014
doi:

Summary

Terapeutiske forbindelser blir ofte først undersøkt in vitro med levedyktighet assays. Blindcelletellingene med en menneskelig observatør kan være meget følsom for små endringer i cellenummer, men ikke vurdere funksjon. Datastyrt levedyktighet analyser, slik det er beskrevet her, kan vurdere både struktur og funksjon på en objektiv måte.

Abstract

Manuelle celletall på et mikroskop er en følsom måte å vurdere cellelevedyktigheten, men er tidskrevende og derfor kostbart. Datastyrt levedyktighet analyser er dyrt i form av utstyr, men kan være raskere og mer objektiv enn manuelle celletall. Den foreliggende rapport beskriver bruken av tre slike levedyktighet assays. To av disse analysene er infrarødt og en er selvlysende. Begge infrarøde analyser stole på en 16 bit Odyssey Imager. En infrarød analysen bruker DRAQ5 flekken for kjerner kombinert med Sapphire flekken for cytosol og er visualisert i 700 nm kanal. Den andre infrarøde analysen, en I-Cell Western, bruker antistoffer mot cytoskeletal proteiner (α-tubulin eller mikrotubulus assosiert protein 2) og skiltene dem i 800 nm kanal. Den tredje levedyktighet analysen er en vanlig selvlysende analysen for ATP, men vi bruker en fjerdedel av det anbefalte volumet for å spare på kostnadene. Disse målingene er alle lineære og korrelerer med antallet cells belagt, men varierer i sensitivitet. Alle tre assays omgå tidkrevende mikroskopi og prøve den hele brønnen, og dermed redusere utvalgsfeil. Endelig alle assays kan lett fullføres i løpet av en dag ved slutten av eksperimentet, slik at et større antall forsøk som skal utføres i løpet av korte tidsrammer. Men alle er avhengige av antagelsen om at celletall forbli i forhold til signalstyrken etter behandlinger, en antagelse som noen ganger ikke er oppfylt, spesielt for mobilnettet ATP. Videre, hvis celler øke eller avta i størrelse etter behandling, kan dette påvirker signalstyrken uten å påvirke cellenummer. Vi konkluderer med at alle levedyktighet analyser, inkludert manuelle tellinger, lider av en rekke advarsler, men at datastyrte levedyktighet analysene er vel verdt den opprinnelige investeringen. Bruke alle tre analysene gir sammen et helhetlig syn på cellestruktur og funksjon.

Introduction

Den vanligste levedyktighet analysen i de biologiske vitenskaper innebærer celletall. Dette er dokumentert av en analyse av de beste (de siste) 200 publikasjoner som dukket opp i PubMed med noen av søkeordene "in vitro" eller "kultur" på 4/29/2013 og 4/30/2013. Av disse publikasjonene, 23,5% brukte celle count analyser, inkludert manuelle mobilnummer teller, teller automatiserte celle nummer med bildebehandlingsprogrammer, og Trypanblå eksklusjon. Live / Døde analysen ble brukt i 1% av disse publikasjonene. Den rekke publikasjoner ved hjelp av MTT (3 – (4,5-dimetyl-tiazol-2-yl) -2,5-difenyltetrazoliumbromid) assay for metabolsk levedyktighet var 11%. Denne undersøkelse av litteraturen viser også at antallet publikasjoner bruke assays slik som MTT i forbindelse med celletall assays var bare 3,5%. Til tross for trenden å bruke en levedyktighet analysen av seg selv, vurdere cellular funksjon i kombinasjon med cellenummer synes det beste valget for å vurdere cellular jegntegrity. Celletellinger av seg selv er ikke tilstrekkelig, fordi de gjenværende celler ikke kan være funksjonelle eller friske selv om de er til stede i brønnen 1,2. Motsatt kan funksjonelle tiltak som ATP øke eller redusere i fravær av parallelle endringer i antall celler. Den frakopling av metabolske avlesninger fra celle nummer antyder at ATP og MTT-assay aldri skal brukes som eneste levedyktighet assay. I den foreliggende rapporten, er tre levedyktighet analyser som kartlegger både mobil strukturer og metabolsk funksjon beskrevet, for en mer omfattende oversikt over mobilnettet integritet enn noen én analyse av seg selv kan ha råd til.

To av våre analyser krever en infrarød imager som måler fluorescens i de 700 og 800 nm kanaler. Støy er lav i de infrarøde bølgelengder, noe som fører til høyere signal-til-støy-forhold tre. The Odyssey imager som vi bruker har en 4,5 log dynamisk område og en bit-dybde på 16, translating til to 16 eller 65 536 nyanser av infrarød. Dette kan stå i motsetning til 8-bits fargebilder, noe som bare gir 2 8 eller 256 nyanser av farge for hver bølgelengde. Således har 16-bit bilde finere oppløsning. Det bør bemerkes at de originale infrarøde bilder er ofte pseudocolored grønn (800 nm) og rødt (700 nm) i publiserte rapporter for presentasjon. Odyssey kameraer blir ofte brukt både for Western blotting og I-Cell Westerns 4-7. I-Cell Westerns på formaldehyd faste celler bruker primære antistoffer mot ethvert protein av interesse og merke dem i sving med infrarøde fluorescerende sekundære antistoffer. Denne teknikken er kjent for å være spesielt nyttig for fosforylering endepunkter seks. I vår I-Cell Westerns, beis vi faste celler for cytoskeletal proteiner α-tubulin eller nevronale microtubule assosiert protein 2 (MAP2) i 800 nm kanal. Disse proteinene er rikelig nok til å gi høye signal-til-støy-forhold. Vi har også beis våre plater i 700nm kanal for atomkjerner med DRAQ5 flekken og for cytoplasma med Sapphire flekken. Både cytoskeletal proteiner og DRAQ5 + Sapphire flekker dermed reflektere cellulære strukturer.

Den tredje analysen måler levedyktighet metabolsk funksjon, og kalles "Cell Titer Glo." I denne luciferase-baserte assay, luminescens verdier er i direkte forhold til ATP-nivåer. ATP-analyser blir ofte brukt til å kvantifisere levedyktige celler 8-12. Imidlertid inneholder ordet "titer" i navnet til analysen er misvisende, fordi ATP produksjon per celle kan endres som en funksjon av toksin-behandlinger, og er derfor ikke alltid i forhold til celletallet 8.. ATP-nivåer kan også bli påvirket av døgnrytme 13 og ved celledeling 14 og celledifferensiering 15. Ikke desto mindre ATP-analysen er vist her er enkel å utføre og nyttig fordi ATP er en robust mål for metabolsklevedyktighet 16-21, hvis ikke celle nummer per se. Ved hjelp av denne analysen for å utfylle den infrarøde I-Cell Westerns gir derfor et mer helhetlig bilde av cellulær integritet enn noen én analyse alene.

Protocol

Et skjema av protokollene er illustrert i figur 1.. En. Cell Plating Plate-celler i 96-brønners plater ved forskjellige pletteringstettheter (figur 2). For linearitetskontroll på N2a neuroblastom cellelinje, plate 2.5k, 5k, 10k og 15k celler per brønn i tre eller seks brønner / gruppe. For linearitetskontroll hos rotte primære kortikale nevroner, plate 25k, 50k, 100k og 200k celler per brønn i tre eller seks brønner / gruppe…

Representative Results

Den hastighetsbegrensende faktor i disse eksperimenter er det infrarøde flekker, som ATP-analysen er relativt korte i varighet. For de infrarøde analyser, forventer vi at åtte 96-brønners plater kan være farget og skannet i løpet av én dag etter svimlende to grupper av fire plater hver (se figur 1). Denne beregningen forutsetter 20 min for fiksering, 30 min for vasking, 30 min for å blokkere, 2 timers primært antistoff, etterfulgt av inkubering i 30 min med vaskinger 1 time sekundært antistoff…

Discussion

Vi har funnet at signalstyrken i alle tre levedyktighet assays er lineær og korrelert med pletteringstetthet. Men ikke alle analysene er like følsom for to-ganger eller 1,5 ganger endringer i pletteringstetthet. For N2A-celler, de infrarøde analyser er mindre følsom enn den ATP-analysen, spesielt ved lavere densiteter plating. Selv om de infrarøde analyser er mindre følsom enn ATP, den DRAQ5 + Sapphire assays og α-tubulin assays er i god overensstemmelse ved at de avslører meget beskyttende virkning av N-acetyl-…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi erkjenner Juliann Jaumotte for ideen om å spare på volumene av reagenser i ATP-analysen. Vi er dypt takknemlige for den flotte administrativ støtte av Maria Caruso, Deb Willson, og Jackie Farrer og til Mylan School of Pharmacy for å gi økonomisk støtte til disse studiene. En takk også til de Hunkele fryktede sykdommer Foundation og Parkinsons og bevegelsesforstyrrelser Foundation for sin økonomiske støtte til de primære nevrale studier.

Materials

Cell Titer Glo Promega G7572 Buy in 100 ml quantities and aliquot, instead of purchasing the more expensive 10 ml quantity. Reconstituted, unused reagents can be refrozen at -20 °C for at least 21 weeks
18% Formalin Thermo-Shandon 9990244 Buying this fixative avoids the weighing out of formaldehyde powders and boiling of the solution; exposure to vapors is thereby minimized
Sucrose Sigma-Aldrich S0389 It is not essential to add this to formaldehyde solutions but it improves the appearance of the fixed cells
Odyssey Block LI-COR 927-40003 This fish serum can be bought in bulk and frozen at -20 °C for long term use
Triton-X 100 Sigma-Aldrich 21568 We store a stock solution of 10% Triton-X 100 in sterile water at 4 °C
Sodium Phosphate Monobasic Fisher S468 One can also buy PBS tablets or 10x PBS solutions, but they are more expensive
Sodium Phosphate Dibasic Fisher S373 See above
Sodium Azide (250x) Ricca Chemical Company 7144.8-16 Do not buy the powder because sodium azide is very toxic. We store all our used antibodies in 1x sodium azide at 4 °C until they become contaminated with debris
Mouse anti-α-tubulin Sigma-Aldrich T5168 This antibody is expensive but can be greatly diluted and is highly specific
Mouse anti-MAP2 Sigma-Aldrich M9942 This antibody is expensive but is highly specific (a prerequisite for In-Cell Westerns)
800 nm Goat anti-mouse IgG LI-COR 926-32210 Other companies also sell infrared secondary antibodies. Be sure to purchase the highly cross-adsorbed antibodies and note that concentrations of IgGs may vary with the source
DRAQ5 Biostatus DR50200 This compound used to be sold by LI-COR at 1 mM
Sapphire LI-COR 928-40022
Luminometer PerkinElmer VICTOR3 1420 multilabel counter
Odyssey Imager LI-COR 9201-01
Shaker/Mixer Research Products International 248555

References

  1. Leak, R. K., Liou, A. K., Zigmond, M. J. Effect of sublethal 6-hydroxydopamine on the response to subsequent oxidative stress in dopaminergic cells: evidence for preconditioning. J Neurochem. 99, 1151-1163 (2006).
  2. Ugarte, S. D., Lin, E., Klann, E., Zigmond, M. J., Perez, R. G. Effects of GDNF on 6-OHDA-induced death in a dopaminergic cell line: modulation by inhibitors of PI3 kinase. J. Neurosci. 73, 105-112 (2003).
  3. Patonay, G., Antoine, M. Near-infrared fluorogenic labels: new approach to an old problem. Anal. Chem. 63, (1991).
  4. Mullett, S. J., Hinkle, D. A. DJ-1 deficiency in astrocytes selectively enhances mitochondrial Complex I inhibitor-induced neurotoxicity. J. Neurochem. 117, 375-387 (2011).
  5. Egorina, E. M., Sovershaev, M. A., Osterud, B. In-cell Western assay: a new approach to visualize tissue factor in human monocytes. J. Thromb. Haemost. 4, 614-620 (2006).
  6. Aguilar, H. N., Zielnik, B., Tracey, C. N., Mitchell, B. F. Quantification of rapid Myosin regulatory light chain phosphorylation using high-throughput in-cell Western assays: comparison to Western immunoblots. PLoS One. 5, (2010).
  7. Jinwal, U. K., Dickey, C. A. Cell-based assays for regulators of tau biology. Methods Mol. Biol. 670, 93-108 (2011).
  8. Unnithan, A. S., Choi, H. J., Titler, A. M., Posimo, J. M., Leak, R. K. Rescue from a two hit, high-throughput model of neurodegeneration with N-acetyl cysteine. Neurochem. Int. 61, 356-368 (2012).
  9. Hoskins, C., Wang, L., Cheng, W. P., Cuschieri, A. Dilemmas in the reliable estimation of the in-vitro cell viability in magnetic nanoparticle engineering: which tests and what protocols? . Nanoscale Res. Lett.. 7, 10-1186 (2012).
  10. Essner, M. D., Javed, A., Eleazer, P. D. Effect of sodium hypochlorite on human pulp cells: an in vitro study. Oral Surg. Oral Med. Oral Pathol. Oral Radiol. Endod. 112, 662-666 (2011).
  11. Sims, J. T., Plattner, R. MTT assays cannot be utilized to study the effects of STI571/Gleevec on the viability of solid tumor cell lines. Cancer Chemother. Pharmacol. 64, 629-633 (2009).
  12. Petty, R. D., Sutherland, L. A., Hunter, E. M., Cree, I. A. Comparison of MTT and ATP-based assays for the measurement of viable cell. J. Biolumin. Chemilumin. 10, 29-34 (1995).
  13. Womac, A. D., Burkeen, J. F., Neuendorff, N., Earnest, D. J., Zoran, M. J. Circadian rhythms of extracellular ATP accumulation in suprachiasmatic nucleus cells and cultured astrocytes. Eur. J. Neurosci. 30, 869-876 (2009).
  14. Ataullakhanov, F. I., Vitvitsky, V. M. What determines the intracellular ATP concentration. Biosci. Rep. 22, 501-511 (2002).
  15. Iglehart, J. D., Silver, D. P. Synthetic lethality–a new direction in cancer-drug development. New Engl. J. Med. 361, 189-191 (2009).
  16. Crouch, S. P., Kozlowski, R., Slater, K. J., Fletcher, J. The use of ATP bioluminescence as a measure of cell proliferation and cytotoxicity. J. Immunol. Methods. 160, 81-88 (1993).
  17. Kangas, L., Gronroos, M., Nieminen, A. L. Bioluminescence of cellular ATP: a new method for evaluating cytotoxic agents in vitro. Med. Biol. 62, 338-343 (1984).
  18. Lundin, A., Hasenson, M., Persson, J., Pousette, A. Estimation of biomass in growing cell lines by adenosine triphosphate assay. Methods Enzymol. 133, 27-42 (1986).
  19. Sevin, B. U., et al. Application of an ATP-bioluminescence assay in human tumor chemosensitivity testing. Gynecol. Oncol. 31, 191-204 (1988).
  20. Maehara, Y., Anai, H., Tamada, R., Sugimachi, K. The ATP assay is more sensitive than the succinate dehydrogenase inhibition test for predicting cell viability. Eur. J. Cancer Clin. Oncol. 23, 273-276 (1987).
  21. Andreotti, P. E., et al. Chemosensitivity testing of human tumors using a microplate adenosine triphosphate luminescence assay: clinical correlation for cisplatin resistance of ovarian carcinoma. Cancer Res. 55, 5276-5282 (1995).
  22. Posimo, J. M., Titler, A. M., Choi, H. J., Unnithan, A. S., Leak, R. K. Neocortex and allocortex respond differentially to cellular stress in vitro and aging in vivo. PLoS One. 8, (2013).
  23. Carralot, J. P., et al. A novel specific edge effect correction method for RNA interference screenings. Bioinformatics. 28, 261-268 (2012).
  24. Lundholt, B. K., Scudder, K. M., Pagliaro, L. A simple technique for reducing edge effect in cell-based assays. J. Biomol. Screen. 8, 566-570 (2003).
  25. Oliver, D. G., Sanders, A. H., Hogg, R. D., Hellman, J. W. Thermal gradients in microtitration plates. Effects on enzyme-linked immunoassay. J. Immunol. Methods. 42, 195-201 (1981).
  26. Gilbert, D. F., et al. A novel multiplex cell viability assay for high-throughput RNAi screening.. PLoS One. 6, (2011).
  27. Bayer, S. A., Altman, J. . Neocortical Development. , (1991).
  28. Miller, F. D., Gauthier, A. S. Timing is everything: making neurons versus glia in the developing cortex. Neuron. 54, 357-369 (2007).
  29. Mullett, S. J., Hinkle, D. A. DJ-1 knock-down in astrocytes impairs astrocyte-mediated neuroprotection against rotenone. Neurobiol. Dis. 33, 28-36 (2009).
  30. Jiang, Y., et al. N-Acetyl cysteine blunts proteotoxicity in a heat shock protein-dependent manner. Neuroscience. 255, 19-32 (1016).
  31. Madeira, A., et al. Caveolin-1 interacts with alpha-synuclein and mediates toxic actions of cellular alpha-synuclein overexpression. Neurochem. Int. 59, 280-289 (2011).
  32. Fioriti, L., et al. Cytosolic prion protein (PrP) is not toxic in N2a cells and primary neurons expressing pathogenic PrP mutations. J. Biol. Chem. 280, 11320-11328 (2005).
  33. Zhang, L., et al. Proteasome inhibition modulates kinase activation in neural cells: relevance to ubiquitination, ribosomes, and survival. J. Neurosci. Res. 87, 3231-3238 (2009).
  34. Braak, H., et al. Staging of brain pathology related to sporadic Parkinson’s disease. Neurobiol. Aging. 24, 197-211 (2003).
  35. Stranahan, A. M., Mattson, M. P. Selective Vulnerability of Neurons in Layer II of the Entorhinal Cortex during Aging and Alzheimer’s Disease.. Neural Plast. 2010, (2010).
  36. Duyckaerts, C., Delatour, B., Potier, M. C. Classification and basic pathology of Alzheimer disease. Acta Neuropathol. 118, 5-36 (2009).
  37. Chu, C. C., Tranel, D., Damasio, A. R., Van Hoesen, G. W. The autonomic-related cortex: pathology in Alzheimer’s disease. Cereb. Cortex. 7, 86-95 (1997).
  38. Braak, H., Del Tredici, K., Bohl, J., Bratzke, H., Braak, E. Pathological changes in the parahippocampal region in select non-Alzheimer’s dementias. Ann. N.Y. Acad. Sci. 911, 221-239 (2000).
  39. Braak, H., Rub, U., Schultz, C., Del Tredici, K. Vulnerability of cortical neurons to Alzheimer’s and Parkinson’s diseases. J. Alzheimers Dis. 9, 35-44 (2006).
  40. Calabrese, E. J. Hormesis is central to toxicology, pharmacology and risk assessment. Hum. Exp. Toxicol. 29, 249-261 (2010).
  41. Giordano, J., Ives, J. A., Jonas, W. B. Hormetic responses in neural systems: consideration, contexts, and caveats. Crit. Rev. Toxicol. 38, 623-627 (2008).
  42. Mattson, M. P. Hormesis defined. . Ageing Res. Rev.. 7, 1-7 (2008).
  43. Wang, P., Henning, S. M., Heber, D. Limitations of MTT and MTS-based assays for measurement of antiproliferative activity of green tea polyphenols. PLoS One. 5, (2010).
  44. Riss, T. L., Moravec, R. A. Use of multiple assay endpoints to investigate the effects of incubation time, dose of toxin, and plating density in cell-based cytotoxicity assays. . Assay Drug Dev. Technol. 2, 51-62 (2004).
  45. Titler, A. M., Posimo, J. M., Leak, R. K. Astrocyte plasticity revealed by adaptations to severe proteotoxic stress. Cell Tissue Res. , (2013).
  46. McLaughlin, B., et al. Caspase 3 activation is essential for neuroprotection in preconditioning. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 100, 715-720 (2003).
  47. Mathews, S. T., Plaisance, E. P., Kim, T. Imaging systems for westerns: chemiluminescence vs. infrared detection. Methods Mol. Biol. 536, 499-513 (2009).
  48. Picariello, L., et al. A comparison of methods for the analysis of low abundance proteins in desmoid tumor cells. Anal. Biochem. 354, 205-212 (2006).
  49. Tapias, V., Cannon, J. R., Greenamyre, J. T. Melatonin treatment potentiates neurodegeneration in a rat rotenone Parkinson’s disease model. J. Neurosci. Res. 88, 420-427 (2010).
  50. Fenteany, G., Schreiber, S. L. Specific inhibition of the chymotrypsin-like activity of the proteasome induces a bipolar morphology in neuroblastoma cells. Chem. Biol. 3, 905-912 (1996).
  51. Omura, S., et al. Lactacystin, a novel microbial metabolite, induces neuritogenesis of neuroblastoma cells. J. Antibiot. 44, 113-116 (1991).
check_url/50645?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Posimo, J. M., Unnithan, A. S., Gleixner, A. M., Choi, H. J., Jiang, Y., Pulugulla, S. H., Leak, R. K. Viability Assays for Cells in Culture. J. Vis. Exp. (83), e50645, doi:10.3791/50645 (2014).

View Video