Summary

Levedygtighed Analyser for celler i kultur

Published: January 20, 2014
doi:

Summary

Terapeutiske forbindelser ofte først undersøgt in vitro med rentabilitet analyser. Blind celletal ved en menneskelig observatør kan være meget følsomme over for små ændringer i celle nummer, men ikke vurdere funktion. Edb levedygtighed assays, som beskrevet her, kan vurdere både struktur og funktion på en objektiv måde.

Abstract

Manuelle celletal på et mikroskop er en følsom middel til at vurdere cellulær levedygtighed, men er tidskrævende og derfor dyrt. Edb levedygtighed assays er dyre i form af udstyr, men kan være hurtigere og mere objektiv end manuelle celletallet. Nærværende rapport beskriver brugen af ​​tre sådanne levedygtighed assays. To af disse assays er infrarød og en er selvlysende. Begge infrarøde analyser stole på en 16 bit Odyssey Imager. En infrarød analyse bruger DRAQ5 pletten for kerner kombineret med Sapphire pletten for cytosol og visualiseres i 700 nm-kanal. Den anden infrarød analyse, en In-Cell Western anvender antistoffer mod cytoskeletale proteiner (α-tubulin eller mikrotubulus-associeret protein 2) og etiketter dem i 800 nm kanal. Den tredje levedygtighedsassay er et almindeligt anvendt selvlysende assay for ATP, men vi bruger en fjerdedel af den anbefalede mængde for at spare på omkostningerne. Disse målinger er alle lineære og korrelerer med antallet af ceLLS forgyldt, men varierer i følsomhed. Alle tre analyser omgå tidskrævende mikroskopi og prøve hele godt, og derved reducere fejlprocenten. Endelig alle analyserne kan nemt være afsluttet inden for en dag i slutningen af ​​forsøget, så et større antal forsøg, der skal udføres inden for korte tidsrammer. Men de alle afhængige af den antagelse, at celleantal forbliver i forhold til signalstyrken efter behandlinger, en antagelse, der undertiden ikke er opfyldt, især for cellulær ATP. Desuden, hvis celler forøge eller formindske i størrelse efter behandling, dette kan påvirke signalstyrken uden at påvirke celle nummer. Vi konkluderer, at alle levedygtighed assays, herunder manuelle optællinger, lider af en række forbehold, men at edb levedygtighed assays er værd den oprindelige investering. Med alle tre analyser sammen giver et samlet overblik over cellulær struktur og funktion.

Introduction

Den mest almindelige levedygtighedsassay i de biologiske videnskaber indebærer celletallet. Dette fremgår af en analyse af de øverste (nyeste) 200 publikationer, der dukkede op i PubMed med enten af nøgleordene "in vitro" eller "kultur" på 2013/04/29 og 2013/04/30. Af disse publikationer, 23,5% anvendes celletalsdata assays, herunder manuelle celle nummer tæller, automatiseret celle nummer tæller med imaging software, og trypanblåteksklusion. Live / Dead assay blev brugt i 1% af disse publikationer. Antallet af publikationer ved hjælp af MTT (3 – (4,5-dimethylthiazol-2-yl) -2,5-diphenyltetrazoliumbromid)-assay for metabolisk levedygtighed var 11%. Denne undersøgelse af litteraturen viser også, at antallet af publikationer ved hjælp af assays, såsom MTT, sammenholdt med celletal assays var kun 3,5%. På trods af tendensen til at bruge en levedygtighedsassay af sig selv, vurdere cellulære funktion i kombination med celletal synes det bedste valg til at vurdere cellulær jegntegrity. Celletællinger i sig selv ikke er tilstrækkelig, da de resterende celler ikke kan være funktionel eller raske, selvom de er til stede i brønden 1,2. Omvendt kan funktionelle foranstaltninger såsom ATP forøge eller formindske i mangel af parallelle ændringer i antallet af celler. Den afkobling af metaboliske udlæsninger fra celle nummer tyder på, at ATP og MTT-assays aldrig bør anvendes som den eneste levedygtighedsassay. I nærværende rapport er der tre levedygtighed assays denne undersøgelse både cellulære strukturer og stofskiftet beskrevet, for en mere omfattende billede af cellulær integritet end nogen analyse af sig selv har råd til.

To af vores analyser kræver en infrarød kamera, der måler fluorescens i de 700 og 800 nm kanaler. Støj er lav i de infrarøde bølgelængder, hvilket fører til højere signal-til-støj-forhold 3. Odyssey imager, som vi bruger, har en 4,5 log dynamikområde og en bit-dybde på 16, translating til 2 16 eller 65.536 nuancer af infrarød. Dette kan sammenholdes med 8-bit farve billedbehandling, som kun giver 2 8 eller 256 nuancer af farve for hver bølgelængde. Således, 16-bit billedbehandling har finere opløsning. Det skal bemærkes, at de oprindelige infrarøde billeder ofte pseudocolored grøn (800 nm) og rød (700 nm) i offentliggjorte rapporter for præsentation. Odyssey kameraer er almindeligt anvendt til både Western blotting og In-Cell Westerns 4-7. In-Cell Westerns på formaldehydfikserede celler bruger primære antistoffer mod ethvert protein af interesse og mærke dem til gengæld med infrarøde fluorescerende sekundære antistoffer. Denne teknik er kendt for at være særligt anvendelige til fosforylering endepunkter 6. I vores In-Cell Westerns, vi pletten faste celler til cytoskeletproteiner α-tubulin eller neuronal mikrotubuli associeret protein 2 (MAP2) i 800 nm-kanal. Disse proteiner er rigelige nok til at give høje signal-til-støj forhold. Vi plette også vores plader i 700nm kanal for kerner med DRAQ5 pletten og for cytoplasma med Sapphire pletten. Både cytoskeletproteiner og DRAQ5 + Sapphire pletter afspejler således cellulære strukturer.

Den tredje levedygtighedsassay måler metaboliske funktion og kaldes "Cell Titer Glo." I denne luciferase assay, luminescens værdier er i direkte forhold til ATP-niveauer. ATP assays er almindeligt anvendt til at kvantificere levedygtige celler 8-12. Imidlertid indeholder ordet "titer" i navnet af assayet er noget af en misvisende, fordi ATP produktion pr celle kan ændre sig som en funktion af toksin behandlinger, og er derfor ikke altid i forhold til celleantal 8. ATP niveauer kan også blive påvirket af døgnrytmen 13 og ved celledeling 14 og celledifferentiering 15. Alligevel ATP assay vist her, er enkel at udføre og nyttig, fordi ATP er en robust mål for metabolisklevedygtighed 16-21, hvis ikke celletal per se. Ved hjælp af denne analyse til at supplere den infrarøde In-Cell Westerns giver derfor et mere omfattende billede af cellulær integritet end nogen assay alene.

Protocol

En skematisk af de protokoller, der er illustreret i figur 1.. 1.. Celleudpladning Plate celler i 96-brønds plader ved forskellige plating tætheder (figur 2). For linearitetschecks på n2a neuroblastomcellelinie, plade 2.5k, 5k, 10k, og 15k brønd i 3 eller 6 brønde / gruppe. For linearitetschecks i rotte primære kortikale neuroner, plade 25k, 50k, 100k og 200k brønd i 3 eller 6 brønde / gruppe. Hvis cellelinjer eller primær…

Representative Results

Den hastighedsbegrænsende faktor i disse eksperimenter er den infrarøde farvning, som ATP-assayet er forholdsvis kort varighed. For de infrarøde assays forventer vi, at otte plader med 96 brønde kan farves og scannes inden for én dag ved en gradvis to partier af fire plader hver (se figur 1). Dette skøn forudsætter 20 min af fiksering, 30 min vask, 30 min af blokering, 2 hr primære antistof inkubation efterfulgt af 30 min vask, 1 time sekundært antistof inkubation efterfulgt af 30 min vask, 30 …

Discussion

Vi har fundet, at signalstyrken i alle tre levedygtighed assays er lineær og korreleret med udpladningsdensitet. Men ikke alle assays er lige følsomme over for 2-fold eller 1,5-fold ændring i udpladningsdensitet. For N2A celler, infrarøde assays er mindre følsomme end ATP-assay, især ved lavere plating tætheder. Selvom de infrarøde assays er mindre følsomme end ATP, de DRAQ5 + Sapphire assays og de α-tubulin assays er i god overensstemmelse med, at de afslører meget beskyttende virkning af N-acetylcystein. De…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi anerkender Juliann Jaumotte for tanken om at spare på mængden af ​​reagenser i ATP-analysen. Vi er dybt taknemmelige for den fantastiske administrativ støtte til Mary Caruso, Deb Willson, og Jackie Farrer samt til Mylan School of Pharmacy for at yde økonomisk støtte til disse undersøgelser. Også tak til de Hunkele frygtede sygdomme Foundation og Parkinsons og bevægelsesforstyrrelser fundament for deres økonomiske støtte af de primære neuronale studier.

Materials

Cell Titer Glo Promega G7572 Buy in 100 ml quantities and aliquot, instead of purchasing the more expensive 10 ml quantity. Reconstituted, unused reagents can be refrozen at -20 °C for at least 21 weeks
18% Formalin Thermo-Shandon 9990244 Buying this fixative avoids the weighing out of formaldehyde powders and boiling of the solution; exposure to vapors is thereby minimized
Sucrose Sigma-Aldrich S0389 It is not essential to add this to formaldehyde solutions but it improves the appearance of the fixed cells
Odyssey Block LI-COR 927-40003 This fish serum can be bought in bulk and frozen at -20 °C for long term use
Triton-X 100 Sigma-Aldrich 21568 We store a stock solution of 10% Triton-X 100 in sterile water at 4 °C
Sodium Phosphate Monobasic Fisher S468 One can also buy PBS tablets or 10x PBS solutions, but they are more expensive
Sodium Phosphate Dibasic Fisher S373 See above
Sodium Azide (250x) Ricca Chemical Company 7144.8-16 Do not buy the powder because sodium azide is very toxic. We store all our used antibodies in 1x sodium azide at 4 °C until they become contaminated with debris
Mouse anti-α-tubulin Sigma-Aldrich T5168 This antibody is expensive but can be greatly diluted and is highly specific
Mouse anti-MAP2 Sigma-Aldrich M9942 This antibody is expensive but is highly specific (a prerequisite for In-Cell Westerns)
800 nm Goat anti-mouse IgG LI-COR 926-32210 Other companies also sell infrared secondary antibodies. Be sure to purchase the highly cross-adsorbed antibodies and note that concentrations of IgGs may vary with the source
DRAQ5 Biostatus DR50200 This compound used to be sold by LI-COR at 1 mM
Sapphire LI-COR 928-40022
Luminometer PerkinElmer VICTOR3 1420 multilabel counter
Odyssey Imager LI-COR 9201-01
Shaker/Mixer Research Products International 248555

References

  1. Leak, R. K., Liou, A. K., Zigmond, M. J. Effect of sublethal 6-hydroxydopamine on the response to subsequent oxidative stress in dopaminergic cells: evidence for preconditioning. J Neurochem. 99, 1151-1163 (2006).
  2. Ugarte, S. D., Lin, E., Klann, E., Zigmond, M. J., Perez, R. G. Effects of GDNF on 6-OHDA-induced death in a dopaminergic cell line: modulation by inhibitors of PI3 kinase. J. Neurosci. 73, 105-112 (2003).
  3. Patonay, G., Antoine, M. Near-infrared fluorogenic labels: new approach to an old problem. Anal. Chem. 63, (1991).
  4. Mullett, S. J., Hinkle, D. A. DJ-1 deficiency in astrocytes selectively enhances mitochondrial Complex I inhibitor-induced neurotoxicity. J. Neurochem. 117, 375-387 (2011).
  5. Egorina, E. M., Sovershaev, M. A., Osterud, B. In-cell Western assay: a new approach to visualize tissue factor in human monocytes. J. Thromb. Haemost. 4, 614-620 (2006).
  6. Aguilar, H. N., Zielnik, B., Tracey, C. N., Mitchell, B. F. Quantification of rapid Myosin regulatory light chain phosphorylation using high-throughput in-cell Western assays: comparison to Western immunoblots. PLoS One. 5, (2010).
  7. Jinwal, U. K., Dickey, C. A. Cell-based assays for regulators of tau biology. Methods Mol. Biol. 670, 93-108 (2011).
  8. Unnithan, A. S., Choi, H. J., Titler, A. M., Posimo, J. M., Leak, R. K. Rescue from a two hit, high-throughput model of neurodegeneration with N-acetyl cysteine. Neurochem. Int. 61, 356-368 (2012).
  9. Hoskins, C., Wang, L., Cheng, W. P., Cuschieri, A. Dilemmas in the reliable estimation of the in-vitro cell viability in magnetic nanoparticle engineering: which tests and what protocols? . Nanoscale Res. Lett.. 7, 10-1186 (2012).
  10. Essner, M. D., Javed, A., Eleazer, P. D. Effect of sodium hypochlorite on human pulp cells: an in vitro study. Oral Surg. Oral Med. Oral Pathol. Oral Radiol. Endod. 112, 662-666 (2011).
  11. Sims, J. T., Plattner, R. MTT assays cannot be utilized to study the effects of STI571/Gleevec on the viability of solid tumor cell lines. Cancer Chemother. Pharmacol. 64, 629-633 (2009).
  12. Petty, R. D., Sutherland, L. A., Hunter, E. M., Cree, I. A. Comparison of MTT and ATP-based assays for the measurement of viable cell. J. Biolumin. Chemilumin. 10, 29-34 (1995).
  13. Womac, A. D., Burkeen, J. F., Neuendorff, N., Earnest, D. J., Zoran, M. J. Circadian rhythms of extracellular ATP accumulation in suprachiasmatic nucleus cells and cultured astrocytes. Eur. J. Neurosci. 30, 869-876 (2009).
  14. Ataullakhanov, F. I., Vitvitsky, V. M. What determines the intracellular ATP concentration. Biosci. Rep. 22, 501-511 (2002).
  15. Iglehart, J. D., Silver, D. P. Synthetic lethality–a new direction in cancer-drug development. New Engl. J. Med. 361, 189-191 (2009).
  16. Crouch, S. P., Kozlowski, R., Slater, K. J., Fletcher, J. The use of ATP bioluminescence as a measure of cell proliferation and cytotoxicity. J. Immunol. Methods. 160, 81-88 (1993).
  17. Kangas, L., Gronroos, M., Nieminen, A. L. Bioluminescence of cellular ATP: a new method for evaluating cytotoxic agents in vitro. Med. Biol. 62, 338-343 (1984).
  18. Lundin, A., Hasenson, M., Persson, J., Pousette, A. Estimation of biomass in growing cell lines by adenosine triphosphate assay. Methods Enzymol. 133, 27-42 (1986).
  19. Sevin, B. U., et al. Application of an ATP-bioluminescence assay in human tumor chemosensitivity testing. Gynecol. Oncol. 31, 191-204 (1988).
  20. Maehara, Y., Anai, H., Tamada, R., Sugimachi, K. The ATP assay is more sensitive than the succinate dehydrogenase inhibition test for predicting cell viability. Eur. J. Cancer Clin. Oncol. 23, 273-276 (1987).
  21. Andreotti, P. E., et al. Chemosensitivity testing of human tumors using a microplate adenosine triphosphate luminescence assay: clinical correlation for cisplatin resistance of ovarian carcinoma. Cancer Res. 55, 5276-5282 (1995).
  22. Posimo, J. M., Titler, A. M., Choi, H. J., Unnithan, A. S., Leak, R. K. Neocortex and allocortex respond differentially to cellular stress in vitro and aging in vivo. PLoS One. 8, (2013).
  23. Carralot, J. P., et al. A novel specific edge effect correction method for RNA interference screenings. Bioinformatics. 28, 261-268 (2012).
  24. Lundholt, B. K., Scudder, K. M., Pagliaro, L. A simple technique for reducing edge effect in cell-based assays. J. Biomol. Screen. 8, 566-570 (2003).
  25. Oliver, D. G., Sanders, A. H., Hogg, R. D., Hellman, J. W. Thermal gradients in microtitration plates. Effects on enzyme-linked immunoassay. J. Immunol. Methods. 42, 195-201 (1981).
  26. Gilbert, D. F., et al. A novel multiplex cell viability assay for high-throughput RNAi screening.. PLoS One. 6, (2011).
  27. Bayer, S. A., Altman, J. . Neocortical Development. , (1991).
  28. Miller, F. D., Gauthier, A. S. Timing is everything: making neurons versus glia in the developing cortex. Neuron. 54, 357-369 (2007).
  29. Mullett, S. J., Hinkle, D. A. DJ-1 knock-down in astrocytes impairs astrocyte-mediated neuroprotection against rotenone. Neurobiol. Dis. 33, 28-36 (2009).
  30. Jiang, Y., et al. N-Acetyl cysteine blunts proteotoxicity in a heat shock protein-dependent manner. Neuroscience. 255, 19-32 (1016).
  31. Madeira, A., et al. Caveolin-1 interacts with alpha-synuclein and mediates toxic actions of cellular alpha-synuclein overexpression. Neurochem. Int. 59, 280-289 (2011).
  32. Fioriti, L., et al. Cytosolic prion protein (PrP) is not toxic in N2a cells and primary neurons expressing pathogenic PrP mutations. J. Biol. Chem. 280, 11320-11328 (2005).
  33. Zhang, L., et al. Proteasome inhibition modulates kinase activation in neural cells: relevance to ubiquitination, ribosomes, and survival. J. Neurosci. Res. 87, 3231-3238 (2009).
  34. Braak, H., et al. Staging of brain pathology related to sporadic Parkinson’s disease. Neurobiol. Aging. 24, 197-211 (2003).
  35. Stranahan, A. M., Mattson, M. P. Selective Vulnerability of Neurons in Layer II of the Entorhinal Cortex during Aging and Alzheimer’s Disease.. Neural Plast. 2010, (2010).
  36. Duyckaerts, C., Delatour, B., Potier, M. C. Classification and basic pathology of Alzheimer disease. Acta Neuropathol. 118, 5-36 (2009).
  37. Chu, C. C., Tranel, D., Damasio, A. R., Van Hoesen, G. W. The autonomic-related cortex: pathology in Alzheimer’s disease. Cereb. Cortex. 7, 86-95 (1997).
  38. Braak, H., Del Tredici, K., Bohl, J., Bratzke, H., Braak, E. Pathological changes in the parahippocampal region in select non-Alzheimer’s dementias. Ann. N.Y. Acad. Sci. 911, 221-239 (2000).
  39. Braak, H., Rub, U., Schultz, C., Del Tredici, K. Vulnerability of cortical neurons to Alzheimer’s and Parkinson’s diseases. J. Alzheimers Dis. 9, 35-44 (2006).
  40. Calabrese, E. J. Hormesis is central to toxicology, pharmacology and risk assessment. Hum. Exp. Toxicol. 29, 249-261 (2010).
  41. Giordano, J., Ives, J. A., Jonas, W. B. Hormetic responses in neural systems: consideration, contexts, and caveats. Crit. Rev. Toxicol. 38, 623-627 (2008).
  42. Mattson, M. P. Hormesis defined. . Ageing Res. Rev.. 7, 1-7 (2008).
  43. Wang, P., Henning, S. M., Heber, D. Limitations of MTT and MTS-based assays for measurement of antiproliferative activity of green tea polyphenols. PLoS One. 5, (2010).
  44. Riss, T. L., Moravec, R. A. Use of multiple assay endpoints to investigate the effects of incubation time, dose of toxin, and plating density in cell-based cytotoxicity assays. . Assay Drug Dev. Technol. 2, 51-62 (2004).
  45. Titler, A. M., Posimo, J. M., Leak, R. K. Astrocyte plasticity revealed by adaptations to severe proteotoxic stress. Cell Tissue Res. , (2013).
  46. McLaughlin, B., et al. Caspase 3 activation is essential for neuroprotection in preconditioning. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 100, 715-720 (2003).
  47. Mathews, S. T., Plaisance, E. P., Kim, T. Imaging systems for westerns: chemiluminescence vs. infrared detection. Methods Mol. Biol. 536, 499-513 (2009).
  48. Picariello, L., et al. A comparison of methods for the analysis of low abundance proteins in desmoid tumor cells. Anal. Biochem. 354, 205-212 (2006).
  49. Tapias, V., Cannon, J. R., Greenamyre, J. T. Melatonin treatment potentiates neurodegeneration in a rat rotenone Parkinson’s disease model. J. Neurosci. Res. 88, 420-427 (2010).
  50. Fenteany, G., Schreiber, S. L. Specific inhibition of the chymotrypsin-like activity of the proteasome induces a bipolar morphology in neuroblastoma cells. Chem. Biol. 3, 905-912 (1996).
  51. Omura, S., et al. Lactacystin, a novel microbial metabolite, induces neuritogenesis of neuroblastoma cells. J. Antibiot. 44, 113-116 (1991).
check_url/50645?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Posimo, J. M., Unnithan, A. S., Gleixner, A. M., Choi, H. J., Jiang, Y., Pulugulla, S. H., Leak, R. K. Viability Assays for Cells in Culture. J. Vis. Exp. (83), e50645, doi:10.3791/50645 (2014).

View Video