Décrit ici est une méthode pour mesurer directement les étincelles de calcium, les unités élémentaires de Ca 2 + libèrent de réticulum sarcoplasmique dans les fibres musculaires squelettiques intacts. Cette méthode utilise le stress osmotique-médiée déclenchement de la libération de Ca 2 + du récepteur de la ryanodine dans les fibres musculaires isolées. La dynamique et la capacité d'homéostasie intracellulaire de Ca 2 + signalisation peuvent être utilisés pour évaluer la fonction musculaire dans la santé et la maladie.
Le maintien de la signalisation de Ca2 + homéostatique est un processus physiologique fondamental dans les cellules vivantes. Ca 2 + étincelles sont les unités élémentaires de Ca 2 + de signalisation dans les fibres musculaires striées qui apparaissent comme très localisée Ca 2 + événements de relâchement à médiation par récepteur de la ryanodine (RyR) Ca 2 + libérer les canaux sur le réticulum sarcoplasmique (SR) de la membrane. Une évaluation correcte du muscle Ca 2 + étincelles pourraient fournir des informations sur les intracellulaires Ca 2 + propriétés de manipulation des muscles striés sains et malades. Bien que Ca 2 + étincelles événements sont fréquemment observées dans les cardiomyocytes de repos, ils sont rarement observés dans reposant fibres musculaires squelettiques; ainsi il existe un besoin de procédés pour générer et analyser des étincelles dans les fibres musculaires squelettiques.
Détaillé ici est un protocole expérimental pour la mesure de Ca 2 + des étincelles dans fléchisseurs isolé digitorm brevis (FDB) des fibres musculaires en utilisant fluorescent Ca 2 + indicateurs et la microscopie à balayage laser confocal. Dans cette approche, les fibres FDB isolés sont exposés à un stress hypo-osmotique transitoire suivie d'un retour à une solution physiologique isotonique. Dans ces conditions, un solide de Ca 2 + suscite la réponse est détecté à proximité de la membrane du sarcolemme dans les fibres jeunes sains FDB musculaires. Altered Ca 2 + suscite réponse est détectée dans les fibres musculaires squelettiques dystrophiques ou âgés. Cette approche a récemment démontré que la signalisation de membrane délimitée impliquant la diaphonie entre inositol (1,4,5)-triphosphate récepteur (IP 3 R) et RyR contribue à Ca 2 + de l'activation de la bougie dans le muscle squelettique. En résumé, nos études utilisant stress osmotique Ca 2 + induite étincelles ont montré que cette réponse intracellulaire reflète un muscle mécanisme de signalisation dans la physiologie et le vieillissement / états pathologiques, y compris des modèles de souris de la dystrophie musculaire (souris mdx) ou la sclérose latérale amyotrophique (modèle de la SLA).
Libre intracellulaire de Ca 2 + ([Ca 2 +] i) est un messager secondaire polyvalent et important qui réglemente plusieurs fonctions cellulaires dans les cellules excitables comme les neurones, cardiaque, squelettique et les muscles lisses (pour revue, voir Stutzmann et Mattson 1). Réglementé mobilisation de Ca2 + et la diaphonie entre le réticulum sarcoplasmique (SR) et T-tubule (TT) membranes sont des régulateurs fondamentaux de la physiologie musculaire. En outre, ont été représentés les changements dans la signalisation de Ca 2 + à un mécanisme sous-jacent de dysfonctionnement contractile dans diverses maladies musculaires.
Ca 2 + sont localisés étincelles événements de Ca 2 + de libération élémentaires provenant de l'ouverture du récepteur de la ryanodine (RyR) de canal sur le réticulum sarcoplasmique (SR) de la membrane 2. Dans le muscle cardiaque, des étincelles se produisent spontanément par l'ouverture du canal RyR2 par un Ca 2 + induite par le Ca 2 + pertiase (CICR) mécanisme 3-5. Dans le muscle squelettique, RyR1 est strictement contrôlé par le capteur de tension au niveau de la membrane 6,7 TT. Ainsi Ca 2 + étincelles sont supprimées et rarement détectés dans des conditions de repos dans les fibres musculaires squelettiques intacts. Jusqu'à récemment, la membrane du sarcolemme devait être perturbé par divers procédés chimiques ou mécaniques "écorcher" pour désaccoupler la suppression du capteur de tension et sur RyR1 autorisée pour Ca 2 + déclencher des événements qui doivent être détectés dans le muscle squelettique 8,9. Une méthode décrite précédemment requis perméabilisation de la membrane des fibres musculaires par la saponine détergent 10.
En 2003, nous avons découvert que le stress soit hypoosmotique transitoire ou de stress hyperosmotique pourraient induire Ca 2 + périphérique étincelles à proximité de la membrane du sarcolemme dans les fibres musculaires intactes 11. Cette méthode a depuis été modifié pour étudier le mécanisme moléculaire et de modulation du Ca 2 + </sup> libération et dynamique 12-16. Nous exposons ici les détails de notre approche expérimentale pour l'induction, la détection et l'analyse de Ca 2 + des étincelles dans le muscle squelettique intact. Nous vous présentons également notre programme d'analyse étincelle sur mesure qui peut être utilisée pour quantifier les propriétés élémentaires des différents Ca 2 + des étincelles dans le muscle squelettique, par exemple la fréquence d'allumage et d'amplitude (Δ f/f0, qui reflète la probabilité d'ouverture des canaux RyR et la charge + Ca 2 à l'intérieur du SR); temps au pic (temps de montée) et la durée (FDHM, durée totale au amplitude demi-maximale) d'étincelles, ainsi que la distribution spatiale de Ca 2 + étincelles. En outre, nous présentons des preuves que modifiée Liens Ca 2 + étincelles aux différents états physiopathologiques dans le muscle squelettique, comme la dystrophie musculaire et la sclérose latérale amyotrophique.
L'avantage de cette technique consiste à mesurer la capacité de Ca 2 + dans relativement undamcellules âgées, au lieu de dépouiller les fibres musculaires, permettant l'enregistrement de Ca 2 + des étincelles dans des conditions plus proches de physiologique. En outre, notre programme conçu sur mesure fournit des calculs plus précis des propriétés de l'étincelle par rapport aux fibres musculaires.
Cette méthode d'évaluation de Ca 2 + des étincelles dans le muscle squelettique intact est un outil utile pour la physiologie du muscle et de la recherche de la maladie. Nous avons montré que la réaction de Ca 2 + de la bougie a été modifiée dans des conditions différentes, y compris la dystrophie musculaire de 11, le vieillissement de 18, 19, ainsi que dans la sclérose latérale amyotrophique 20. Notre étude récente a également révélé…
The authors have nothing to disclose.
Ce travail a été soutenu par RO1-AG028614 à JM, RO1-AR063084to ANL, et RO1-AR057404 à JZ.
Dissecting microscope | Dissect out fibers and check muscle integrity | ||
Dissection tools -scissors, and fine tip forceps | Fine Science Tools | ||
Sylgard 184 Silicone Elastomer Kit | DOW CORNING | 184 SIL ELAST KIT | Make ahead of time for fiber dissection. Mix 5 ml liquid Sylgard components and pour into a 60-mm glass Petri dish and waiting 48 hr to let the Sylgard compound become clear, colorless solid substrate. |
60-mm glass petri dish | Pyrex | 3160 | Fiber dissection |
Isotonic Tyrode Solution | Sigma-Aldrich | ||
Minimal Ca2+ Tyrode Solution | Sigma-Aldrich | ||
Hypotonic Tyrode Solution | Sigma-Aldrich | ||
collagenase type I | Sigma-Aldrich | C-5138 | Fiber digestion |
Fluo-4 AM | Invitrogen | F14201 | Fluorescent Ca2+ imaging dyes |
TMRE | Invitrogen | T669 | mitochondrial membrane potential fluorescent dyes |
Delta TPG dishes | Bioptechs | 0420041500C | 35 mm glass bottom dish for imaging |
Spark Fit software | data analysis software | ||
Radiance 2100 laser scanning confocal microscope or equivalent microscope | Bio-Rad | ||
3 axis micromanipulator | Narishige International | MHW-3 | |
temperature controllable orbital shaker | New Brunswick scientific | Fiber dissociation |