हेलसिंकी चूहा microsurgical sidewall धमनीविस्फार मॉडल
Summary
Microsurgical sidewall aneurysms in rats are created by end-to-side anastomosis of an aortic graft to the abdominal aorta. We present step-by-step instructions and discuss anatomical and surgical details for successful experimental saccular aneurysm creation.
Abstract
प्रायोगिक saccular धमनीविस्फार मॉडल वे नैदानिक व्यवहार में पेश कर रहे हैं इससे पहले उपन्यास शल्य चिकित्सा और ENDOVASCULAR उपचार के विकल्प और उपकरणों के परीक्षण के लिए आवश्यक हैं. इसके अलावा, प्रयोगात्मक मॉडल saccular aneurysms का टूटना करने के लिए प्रमुख जटिल धमनीविस्फार जीव विज्ञान को स्पष्ट करने की जरूरत है.
Saccular aneurysms के लिए प्रयोगात्मक मॉडल के कई अलग अलग प्रकार के विभिन्न प्रजातियों में स्थापित किया गया है. उनमें से कई, हालांकि, उनके व्यापक उपयोग को सीमित करता है, जो विशेष कौशल, महंगे उपकरण, या विशेष वातावरण की आवश्यकता होती है. एक सरल, मजबूत, और सस्ती प्रयोगात्मक मॉडल विभिन्न संस्थानों में एक मानकीकृत तरीके से इस्तेमाल किया जा सकता है कि एक मानकीकृत उपकरण के रूप में की जरूरत है.
microsurgical चूहा उदर महाधमनी sidewall धमनीविस्फार मॉडल उपन्यास ENDOVASCULAR उपचार रणनीतियों और एक मानकीकृत और सस्ती में धमनीविस्फार जीव विज्ञान के आणविक आधार दोनों अध्ययन करने की संभावना को जोड़ती हैढंग से. आकार, आकार, और ज्यामिति के माध्यम से मानकीकृत ग्राफ्ट एक दाता चूहे उतरते वक्ष महाधमनी से काटा और फिर एक syngenic प्राप्तकर्ता चूहे में प्रत्यारोपित किया जाता है. aneurysms निरंतर साथ अंत करने के पक्ष sutured या अधोमूत्र पिंडीय उदर महाधमनी को 9-0 नायलॉन टांके बाधित कर रहे हैं.
हम आवश्यक उपकरणों पर कदम दर कदम प्रक्रिया संबंधी निर्देश, जानकारी मौजूद है, और चूहे में एक उदर महाधमनी sidewall धमनीविस्फार के सफल microsurgical निर्माण के लिए महत्वपूर्ण संरचनात्मक और शल्य विवरण पर चर्चा.
Introduction
एक saccular प्रमस्तिष्क धमनी धमनीविस्फार का टूटना स्ट्रोक, स्थायी स्नायविक क्षति, या मौत के लिए अग्रणी जीवन धमकी रक्तस्राव का कारण बनता है. टूटना या तो microsurgical क्लिपिंग या ENDOVASCULAR धमनीविस्फार रोड़ा से रोका जा सकता है. धमनीविस्फार विकास और टूटना को रोकने के लिए एक चिकित्सा उपचार अभी तक स्थापित नहीं किया गया है.
Saccular aneurysms के लिए प्रयोगात्मक मॉडल धमनी aneurysms के और उपन्यास चिकित्सीय उपकरणों और रणनीतियों के परीक्षण के लिए जीव विज्ञान का अध्ययन करने की जरूरत है. इन प्रयोजनों के लिए, विभिन्न प्रजातियों में कई अलग अलग मॉडल विकसित किया है और 1 प्रकाशित किया गया है. सूअर, कुत्ते, और खरगोश में बड़ा धमनीविस्फार मॉडल अधिमानतः जटिल धमनीविस्फार वास्तुकला 1,2 में ENDOVASCULAR नवाचारों का परीक्षण करने के लिए उपयोग किया जाता है. Murine धमनीविस्फार मॉडल, दूसरी ओर, आनुवंशिक रूप से संशोधित प्रजातियों 3,4 में अनुसंधान सवालों के परीक्षण की अनुमति और सेलुलर और आणविक में धमनीविस्फार जीव विज्ञान के स्पष्टीकरण की सुविधाबड़ी प्रजाति 1 की तुलना में कहीं बेहतर स्तर. ENDOVASCULAR पार मन्या और पार श्रोणिफलक डिवाइस तैनाती बड़ा चूहों तक ही सीमित (> 400-500 ग्राम) और छोटे से 2.0 मिमी और व्यास 5,6 में 1.5 मिमी स्टंट्स जाता है, स्टंट्स भी उदर महाधमनी में प्रत्यक्ष प्रविष्टि के माध्यम से रखा जा सकता है प्रयोगात्मक aneurysms शरण खंड. चूहे microsurgical उदर महाधमनी sidewall धमनीविस्फार मॉडल का उपयोग कर पिछले काम के परीक्षण के उपन्यास embolic उपकरणों में इसकी व्यवहार्यता और धमनीविस्फार जीव विज्ञान 3,7 के आणविक आधार अध्ययन में इसके उपयोग का प्रदर्शन किया.
वर्तमान में प्रकाशित प्रयोगात्मक saccular धमनीविस्फार मॉडल से कई महंगे उपकरण, विशेष वातावरण (प्रतिदीप्तिदर्शन क्षमताओं के साथ जैसे बाँझ आपरेशन रूम), interventional रेडियोलोजी क्षमता, या महंगा प्रजातियों के उपयोग की आवश्यकता है. इन जरूरतों को इन मॉडलों के व्यापक उपयोग को सीमित, और एम जो विभिन्न प्रयोगशालाओं में विभिन्न मॉडलों का उपयोग करने के लिए नेतृत्वakes डेटा तुलना और मेटा विश्लेषण असंभव नहीं तो मुश्किल. एक सरल, मजबूत, और सस्ती प्रयोगात्मक मॉडल विभिन्न संस्थानों से तुलनीय परिणाम प्राप्त करने के क्रम में विभिन्न प्रयोगशालाओं में एक मानकीकृत तरीके से इस्तेमाल किया जा सकता है कि एक मानकीकृत उपकरण के रूप में की जरूरत है. इस प्रयोजन के लिए, हम चूहे महाधमनी sidewall saccular धमनी धमनीविस्फार मॉडल बनाया.
इस रिपोर्ट का उद्देश्य आवश्यक उपकरणों पर कदम दर कदम प्रक्रिया संबंधी निर्देश, जानकारी पेश करने के लिए, और चूहे में उदर महाधमनी sidewall aneurysms के सफल microsurgical निर्माण के लिए महत्वपूर्ण संरचनात्मक और शल्य विशेषताओं पर चर्चा करने के लिए है.
Protocol
Representative Results
Discussion
Saccular प्रमस्तिष्क धमनी धमनीविस्फार की जटिल जीव विज्ञान के बारे में हमारी समझ में प्रगति पशु मॉडल 3,12,13 में रोगी के नमूने और प्रयोगात्मक कार्य पर प्रयोगशाला अध्ययन से पूरित महामारी विज्ञान और नैदानिक …
Disclosures
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
The authors are solely responsible for the design and conduct of the presented study. Dr. Marbacher was supported by a grant from the Swiss National Science Foundation (PBSKP3-123454). The authors declare no conflict of interests.
Author contributions to the study and manuscript preparation include the following. Conception and design: SM, JM, JF. Acquisition of data: SM, EA, JF. Analysis and interpretation of data: SM, JF, JM. Drafting the article: SM, JF, JM. Critically revising the article: JH, MN. Statistical analysis: SM, JF. Study supervision: JF, JH, MN.
Materials
| Name of Material/ Equipment | Company | Catalog Number | Comments/Description |
| Medetomidine | Any genericon | ||
| Ketamin | Any genericon | ||
| Buprenorphine | Any genericon | ||
| Phosphate buffered saline | |||
| Sodium dodecyl sulfate (0.1%) | |||
| 3-0 resorbable suture | Ethicon Inc., USA | VCP824G | |
| 5-0 non absorbable suture | Ethicon Inc., USA | 8618G | |
| 6-0 non absorbable silk suture | B. Braun, Germany | C0761060 | |
| 9-0 nylon micro suture | B. Braun, Germany | G1118471 | |
| Spongostan | Ethicon Inc., USA | MS0002 | |
| Operation microscope | Leica , Germany | M651 | |
| Digital microscope camera | Sony, Japan | SSC-DC58AP | |
| Standard surgical instruments | B. Braun, Germany | Multiple | See protocol 1.4 |
| Microsurgical instruments | B. Braun, Germany | Multiple | See protocol 1.5 |
| Vascular clip applicator | B. Braun, Germany | FT495T | |
| Temporary vascular clamps | B. Braun, Germany | FT250T | |
| Graph Pad Prism statistical software | GraphPad Software, San Diego, California, USA | V 6.02 for Windows |
References
- Bouzeghrane, F., et al. In vivo experimental intracranial aneurysm models: a systematic review. AJNR Am J Neuroradiol. 31, 418-423 (2010).
- Marbacher, S., et al. Complex bilobular, bisaccular, and broad-neck microsurgical aneurysm formation in the rabbit bifurcation model for the study of upcoming endovascular techniques. AJNR. American journal of neuroradiology. 32, 772-777 (2011).
- Frosen, J., et al. Contribution of mural and bone marrow-derived neointimal cells to thrombus organization and wall remodeling in a microsurgical murine saccular aneurysm model. Neurosurgery. 58, 936-944 (2006).
- Marjamaa, J., et al. Mice with a deletion in the first intron of the Col1a1 gene develop dissection and rupture of aorta in the absence of aneurysms: high-resolution magnetic resonance imaging. at 4.7 T, of the aorta and cerebral arteries. Magn Reson Med. 55, 592-597 (2006).
- Oyamada, S., et al. Trans-iliac rat aorta stenting: a novel high throughput preclinical stent model for restenosis and thrombosis. The Journal of surgical research. , 166-191 (2011).
- Lowe, H. C., James, B., Khachigian, L. M. A novel model of in-stent restenosis: rat aortic stenting. Heart. 91, 393-395 (2005).
- Marjamaa, J., et al. Occlusion of neck remnant in experimental rat aneurysms after treatment with platinum- or polyglycolic-polylactic acid-coated coils. Surg Neurol. 71, 458-465 (2009).
- . with the support of the NC3Rs. Aseptic Technique in Rodent Surgery. , (2014).
- Bernal, J., et al. Guidelines for rodent survival surgery. Journal of investigative surgery : the official journal of the Academy of Surgical Research. 22, 445-451 (2009).
- Pritchett-Corning, K. R., Luo, Y., Mulder, G. B., White, W. J. Principles of rodent surgery for the new. , (2011).
- Marbacher, S., et al. Loss of mural cells leads to wall degeneration, aneurysm growth, and eventual rupture in a rat aneurysm model. Stroke. 45, 248-254 (2014).
- Frosen, J., et al. Remodeling of saccular cerebral artery aneurysm wall is associated with rupture: histological analysis of 24 unruptured and 42 ruptured cases. Stroke. 35, 2287-2293 (2004).
- Frosen, J., et al. Saccular intracranial aneurysm: pathology and mechanisms. Acta neuropathologica. , 123-773 (2012).
- Ysuda, R., Strother, C. M., Aagaard-Kienitz, B., Pulfer, K., Consigny, D. A large and giant bifurcation aneurysm model in canines: proof of feasibility. AJNR Am J Neuroradiol. 33, 507-512 (2012).
- Sherif, C., et al. Microsurgical venous pouch arterial-bifurcation aneurysms in the rabbit model: technical aspects. Journal of visualized experiments : JoVE. , (2011).
- Marjamaa, J., et al. High-resolution TOF MR angiography at 4.7 Tesla for volumetric and morphologic evaluation of coiled aneurysm neck remnants in a rat model. Acta Radiol. 52, 340-348 (2011).
