Summary

En ny tilnærming til den komparative analysen av Multiprotein Komplekser Basert på<sup> 15</sup> N Metabolsk Merking og kvantitativ massespektrometri

Published: March 13, 2014
doi:

Summary

Den beskrevne sammenlignende, kvantitativ proteomikk metode tar sikte på å skaffe innsikt i sammensetningen av multiprotein komplekser under forskjellige betingelser, og er vist ved å sammenligne genetisk forskjellige stammer. For kvantitativ analyse like volum av forskjellige fraksjoner fra et sukrose-densitets-gradient blir blandet og analysert ved massespektrometri.

Abstract

Den introduserte protokollen gir et verktøy for analyse av multiprotein komplekser i thylakoid membranen, ved å avsløre innsikt i komplekse sammensetningen under forskjellige forhold. I denne protokoll tilnærmingen er demonstrert ved å sammenligne sammensetningen av protein-komplekset er ansvarlig for syklisk elektronstrømmen (CEF) i Chlamydomonas reinhardtii, isolert fra genetisk forskjellige stammer. Fremgangsmåten omfatter isolering av thylakoid membraner, etterfulgt av deres separering i multiprotein komplekser med sukrose-densitets-gradient sentrifugering, SDS-PAGE, og immuno-deteksjonssammen, kvantitativ massespektrometri (MS), basert på differensial metabolsk merking (14 N / 15 N) til analysert stammer. Vaskemiddel oppløseliggjorte thylakoid membraner er lastet på sukrose tetthetsgradienter på lik klorofyll konsentrasjon. Etter ultrasentrifugering, blir gradienter separert i fraksjoner, som ble analysert ved masse-spectrometry basert på tilsvarende volum. Denne tilnærmingen gjør etterforskningen av sammensetningen innenfor gradient fraksjoner og dessuten å analysere migrasjon oppførsel av forskjellige proteiner, spesielt med fokus på ANR1, CAS, og PGRL1. Videre er denne metode demonstrert ved å bekrefte resultatene med immunoblotting, og i tillegg ved å støtte resultatene fra tidligere undersøkelser (identifikasjon og PSI avhengige vandring av proteiner som tidligere er beskrevet til å være en del av CEF-supercomplex eksempel PGRL1, FNR, og cyt f). Spesielt, er denne tilnærmingen gjelder å løse et bredt spekter av spørsmål som denne protokollen kan bli vedtatt og f.eks brukes for komparative analyser av multiprotein kompleks sammensetning isolert fra forskjellige miljøforhold.

Introduction

Fotosyntetiske prosesser i thylakoid membraner av planter og alger kan fungere i en lineær og cyklisk modus. Under lineær elektron flyt (LSF) photo I (PSI), photo II (PSII) og cytokrom b 6 / f til slutt overføre elektroner fra vann til NADP + 1, som fører til generering av NADPH og ATP to. I motsetning til dette sykliske elektronstrømmen (CEF), som er kjent for å bli indusert under forskjellige miljøbetingelser som statlige 2 3 og anaerobe betingelser 4, resulterer i en re-reduksjon av oksydert PSI ved å injisere elektroner tilbake inn i elektrontransportkjeden. Denne prosessen kan skje enten ved stromal side av cytokrom-b 6 / f-komplekset 1 eller ved plastoquinone basseng 5 og genererer ATP, men ingen NADPH 2.

Målet med den fremlagte protokoll er å demonstrere en massespektrometri (MS), basert m-metode for den komparative, kvantitativ analyse av multiprotein komplekser i thylakoid membraner av Chlamydomonas reinhardtii å få innsikt i sammensetningen av disse kompleksene under ulike forhold (eksemplifisert ved å sammenligne genetisk ulike stammer). Dette ble gjort i en publikasjon av Terashima et al. I 2012 viser en Ca 2 +-avhengige reguleringen av CEF i C. reinhardtii formidlet av en multiprotein komplekse inkludert proteiner CAS, ANR1, og PGRL1 seks. Fremgangsmåten vil bli forklart med forhold å analysere sammensetningen av CEF-supercomplex i to genetisk forskjellige stammer, for derved å ta fordel av merking av en av de to stammer med tunge nitrogen (15 N). I korthet protokollen innbefatter fremstilling av thylakoid membraner, etterfulgt av vaskemiddel solubilisering og fraksjonering av foto komplekser i en sukrose-densitets-gradient. Etter fraksjonering av graderingen, valgte fracsjoner av to stammer er blandet basert på tilsvarende volum, separert ved SDS-PAGE etterfulgt av in-gel fordøyelse og påfølgende kvantitativ MS analyse.

Som nevnt ovenfor, er CEF indusert under forskjellige miljøbetingelser, og en publikasjon fra 2010 viser isolering av en funksjonell CEF-supercomplex fra tilstand 2 låste celler av C. reinhardtii 7, som ble utført ved separering av solubiliserte membraner thylakoid på en sukrose-densitets-gradient i løpet av ultrasentrifugering. Forskjellig fra Iwai et al. 7, beskriver den presenterte protokollen isolering av CEF-supercomplex fra anaerobisk dyrket C. reinhardtii kulturer ved å følge en alternativ prosedyre. Dette består av endringer i thylakoid isolert protokoll, så vel som forskjeller i forhold til oppløseliggjøring trinn og separasjon av proteinkomplekser ved ultrasentrifugering. I dagens protokoll, thylakoid membranerblir isolert ved anvendelse av fremgangsmåten publisert av Chua og Bennoun 8, mens de buffere som brukes for tilberedning av thylakoid Iwai et al. inneholdt 25 mM Mes, 0,33 M sukrose, 5 mM MgCl2, 1,5 mM NaCl (pH 6,5) som beskrevet 9.. Den oppløseliggjøring ble utført med 0,7 til 0,8% vaskemiddel (n-tridecyl-β-D-maltoside) i 30 min på is i tilfelle av Iwai og medarbeidere, mens oppløseliggjøring metoden som er beskrevet her er avhengig av bruk av 0,9% vaskemiddel (n -Dodecyl-β-D-maltoside (β-DM)) og er utført i bare 20 min på is. Begge gruppene brukt 0,8 mg klorofyll pr ml for oppløseliggjøring av respektive vaskemiddel. For separasjon av foto komplekser fra oppløseliggjorte thylakoid membraner Iwai et al. Søkt sukrose konsentrasjoner mellom 0,1 til 1,3 M, mens forfatterne av denne protokollen som brukes konsentrasjoner spenner 0,4 til 1,3 M. Den siste forskjellen er sentrifugehastigheten, noe som er lavere enn til earlier publikasjonen.

Solubilization av thylakoid membraner med ioniske vaskemidler etterfulgt av sukrose tettshetsgradient fraksjone har allerede blitt brukt i en rekke studier som spenner fra 1980-tallet fram til i dag 7, 9-14 og også anvendelsen av metabolsk merking av proteiner er en utbredt metode i proteomikk-feltet. Den beskrevne metode anvender 15 N metabolsk merking for en av de to mot-stammer ved å dyrke den i nærvær av tung nitrogen som eneste nitrogenkilde i form av 15 N NH4Cl, som er innlemmet i alle aminosyrer som fører til en masse skifte avhengig av aminosyre-sekvensen av peptidet. Ved analyse av en blanding av 14 N og 15 N i en MS løper, kan denne masseforskyvning brukes til å bestemme prøve opprinnelse for hvert peptid og relative peptid Forekomsten kan beregnes som representerer relative Forekomsten for den tilsvaring protein 15.

Tallrike kvantitative proteomikk studier på C. reinhardtii er tilgjengelig, som sammenligner en definert mengde protein for å analysere endringer i proteomet mellom eksperimentelle forhold (for eksempel endringer i proteomet grunn av næringsstoff 16-19 eller lett stresset 20,21). Sammenlignet med disse studiene, i dag presenterte tilnærming like volum av prøver samlet og analysert. Dette oppsettet gjør det mulig å studere vandringsadferd av proteiner innen gradienten og dessuten for å analysere sammensetningen av forskjellige komplekser med hensyn til de undersøkte stammer.

Denne metoden vil bli forklart ved hovedsak konsentrere seg om tre proteiner: Den første kandidaten er kloroplast-lokaliserte kalsium sensor protein CAS, noe som viste seg å være involvert i foto akklimatisering i C. reinhardtii 22. Kalsium er ansett å være et viktig signaling ion for trasé som aktiveres på grunn av ulike biotiske og abiotiske påkjenninger endelig fører til endringer i genuttrykk og cellefysiologi 23, og det ble foreslått at kloroplaster kan bidra til å mobil Ca 2 + signaliserer via CAS protein 22,24,25. Det andre protein er ANR1 (anaerob reaksjon 1 6), et protein som ble vist å bli indusert i henhold anoksiske vekstforhold i C. reinhardtii 26. Spesielt, ble CAS samt ANR1 identifisert som subenheter av CEF-supercomplex og dessuten, ved hjelp av revers genetiske tilnærminger, ble det vist at begge proteiner bidrar funksjonelt til CEF in vivo 6, som støtter rollen som funksjonelle subenheter av dette protein kompleks. Den tredje protein er thylakoid protein PGR5-Like 1 (PGRL1), som ble vist å være involvert i CEF i Chlamydomonas 4,27 samt i Arabidopsis 5,28 og var også identified i arbeidet med Iwai et al. 7

Denne fremgangsmåten vil bli presentert ved å vise resultater fra to forskjellige eksperimenter: villtype (WT) versus (vs) en ΔPSI 29 belastning, som oppviser en delesjon av den psab-genet, som koder for en essensiell photosystem I-underenheten, som også er en del av CEF-supercomplex og WT vs en pgrl1 knock-out belastning fire. For hvert av disse eksperimenter den kvantitative sammensetning av CEF-supercomplex mellom en 15 N-, og en 14 N-merkede stamme er blitt sammenlignet.

Protocol

En. Dyrking av Chlamydomonas Følgende C. reinhardtii stammer ble brukt i denne studien: WT cc124, WT cw15-arg7 (celle-vegg mangelfull og arginin auxotrof), en ΔPSI mutant belastningen 29 og en pgrl1 knock-out belastning fire. Alle stammer ble dyrket i Tris-acetat-fosfat (TAP)-medium 30 ved 25 ° C med en kontinuerlig lysintensitet på 20-50 μE / m 2 sek og rysting ved 120 rpm. Kulturen i ΔPSI bør pakkes med litt pap…

Representative Results

Den introduserte kvantitativ proteomikk tilnærming har som mål å karakterisere sammensetningen av multiprotein komplekser i thylakoid membraner demonstrert av den komparative analysen av CEF-supercomplex komponenter i genetisk forskjellig C. reinhardtii stammer. Den beskrevne metoden har med hell blitt brukt av Terashima et al. 6 og omfatter isolering av thylakoid membraner fra anaerobe vokst kulturer, etterfulgt av vaskemiddel solubilization. Deretter blir prøvene påsatt på en sukrose…

Discussion

Ulike kvantitative proteomikk studier ved hjelp av stabile isotoper merking er publisert i de siste årene. I disse eksperimentene vanligvis to forskjellige prøver sammenlignes, hvorav en prøve merkes med en stabil isotop. Deretter proteiner eller peptider fra de to prøver er kombinert i et likt forhold, og viderebehandles sammen 48. Slike studier ofte har tenkt å sammenligne definerte isolerte cellene (f.eks kloroplaster, mitokondrier, eller thylakoid membraner) eksponert for ulike stressforhold…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

MH erkjenner støtte fra "Deutsche Forschungsgemeinschaft" (DFG). Forfatter bidrag: MH designet forskning; KT, JS og MT utført forskning og analysert dataene, KT og MH skrev avisen.

Materials

Chemicals
Acetic acid AppliChem
webiste: http://www.applichem.com/home/
A0662
Acetone AppliChem
webiste: http://www.applichem.com/home/
A2300
Acetonitrile Optigrade für LC-MS Diagonal
website: https://www.diagonal.de/
9340 harmful, work with gloves
see protocol text for further precautions
Ammonium chloride 15N Cambridge Isotope Laboratories
website: http://www.isotope.com/cil/index.cfm
39466-62-1
Ammonium chloride 14N AppliChem
webiste: http://www.applichem.com/home/
A0988
Ammonium hydrogenphosphate  AppliChem
webiste: http://www.applichem.com/home/
A3583
Ammonium sulfate  AppliChem
webiste: http://www.applichem.com/home/
A3598
Coomassie brilliant blue R-250 Fisher Scientific
website: http://www.de.fishersci.com/index.php/deindex
10041653
n-Dodecyl-β-D-maltoside AppliChem
webiste: http://www.applichem.com/home/
A0819
EDTA AppliChem
webiste: http://www.applichem.com/home/
A2937
Formic acid   AppliChem
webiste: http://www.applichem.com/home/
A3858
Hepes AppliChem
webiste: http://www.applichem.com/home/
A3724
Magnesium chloride AppliChem
webiste: http://www.applichem.com/home/
A4425
Methanol AppliChem
webiste: http://www.applichem.com/home/
A2954
Phosphorous acid AppliChem
webiste: http://www.applichem.com/home/
A0989
Di-Potassium hydrogenphosphate  AppliChem
webiste: http://www.applichem.com/home/
A1042
Potassium di-hydrogenphosphate  AppliChem
webiste: http://www.applichem.com/home/
A1043
Sodium hydroxide AppliChem
webiste: http://www.applichem.com/home/
A1551
Sucrose AppliChem
webiste: http://www.applichem.com/home/
A1125
Tricine AppliChem
webiste: http://www.applichem.com/home/
A3954
Tris AppliChem
webiste: http://www.applichem.com/home/
A2264
Trypsin (sequencing grade modified) and Trypsin buffer Promega
website: http://www.promega.de/
V5111
Equipment 
Neboulizer (BioNeb cell disruptor) Glas-Col
website: http://www.glascol.com/product/subproduct/id/75
Centrifuge tubes (14 x 89 mm) 
for preparation of takahashi style gradients
Beckman Coulter
website: http://www.beckmancoulter.de/
331372
Centrifuge tubes 25 x 89 mm
for preparation of thylakoid isolation gradients 
Beckman Coulter
website: http://www.beckmancoulter.de/
344058
Coulter Avanti Centrifuge J-20 XP Beckman Coulter
website: http://www.beckmancoulter.de/
Fuchs-Rosenthal cell couting chamber Diagonal
website: https://www.diagonal.de/
449/72
Homogenizer (Potter) 50 ml  Fisherbrand
website: http://www.de.fishersci.com/index.php/defisherbrand
10618242
Pistil for homogenizer Fisherbrand
website: http://www.de.fishersci.com/index.php/defisherbrand
105252220
Ultracentrifuge (Optima XPN-80 Ultracentrifuge) Beckman Coulter
website: http://www.beckmancoulter.de/
Other
Antibodies  Agrisera
website: http://www.agrisera.com/en/index.html

References

  1. Joliot, P., Joliot, A. Cyclic electron flow in C3 plants. Biochim. Biophys. Acta. 1757 (5-6), 362-368 (2006).
  2. Shikanai, T. Cyclic electron transport around photosystem I: genetic approaches. Annu. Rev. Plant Biol. 58, 199-217 (2007).
  3. Finazzi, G., Furia, A., Barbagallo, R. P., Forti, G. State transitions, cyclic and linear electron transport and photophosphorylation in Chlamydomonas reinhardtii. Biochim. Biophys. Acta. 1413 (3), 117-129 (1999).
  4. Tolleter, D., et al. Control of hydrogen photoproduction by the proton gradient generated by cyclic electron flow in Chlamydomonas reinhardtii. Plant Cell. 23 (7), 2619-2630 (2011).
  5. Hertle, A. P., et al. PGRL1 Is the Elusive Ferredoxin-Plastoquinone Reductase in Photosynthetic Cyclic Electron Flow. Mol. Cell. 49 (3), 511-523 (2013).
  6. Terashima, M., et al. Calcium-dependent regulation of cyclic photosynthetic electron transfer by a CAS, ANR1, and PGRL1 complex. PNAS. 109 (43), 17717-17722 (2012).
  7. Iwai, M., Takizawa, K., Tokutsu, R., Okamuro, A., Takahashi, Y., Minagawa, J. Isolation of the elusive supercomplex that drives cyclic electron flow in photosynthesis. Nature. 464 (7292), 1210-1213 (2010).
  8. Chua, N. H., Bennoun, P. Thylakoid Membrane Polypeptides of Chlamydomonas reinhardtii: Wild-Type and Mutant Strains Deficient in Photosystem II Reaction Center. PNAS. 72 (6), 2175-2179 (1975).
  9. Takahashi, H., Iwai, M., Takahashi, Y., Minagawa, J. Identification of the mobile light-harvesting complex II polypeptides for state transitions in Chlamydomonas reinhardtii. PNAS. 103 (2), 477-482 (2006).
  10. Ikeuchi, M., Plumley, F. G., Inoue, Y., Schmidt, G. W. Phosphorylation of Photosystem II Components, CP43 Apoprotein, D1, D2, and 10 to 11 Kilodalton Protein in Chloroplast Thylakoids of Higher Plants. Plant Physiol. 85 (3), 638-642 (1987).
  11. Ruban, A. V., Lee, P. J., Wentworth, M., Young, A. J., Horton, P. Determination of the Stoichiometry and Strength of Binding of Xanthophylls to the Photosystem II Light Harvesting Complexes. J. Biol. Chem. 274 (15), 10458-10465 (1999).
  12. Barera, S., Pagliano, C., Pape, T., Saracco, G., Barber, J. Characterization of PSII-LHCII supercomplexes isolated from pea thylakoid membrane by one-step treatment with α- and β-dodecyl-D-maltoside. Phil. Trans. R. Soc. B. 367 (1608), 3389-3399 (2012).
  13. Kantzilakis, K., et al. A comparative approach towards thylakoid membrane proteome analysis of unicellular green alga Scenedesmus obliquus. Biochim. Biophys. Acta. 1768 (9), 2271-2279 (2007).
  14. Takahashi, Y., Yasui, T., Stauber, E. J., Hippler, M. Comparison of the subunit compositions of the PSI-LHCI supercomplex and the LHCI in the green alga Chlamydomonas reinhardtii. Biochemistry. 43 (24), 7816-7823 (2004).
  15. Thelen, J. J., Peck, S. C. Quantitative proteomics in plants: choices in abundance. Plant Cell. 19 (11), 3339-3346 (2007).
  16. Hsieh, S., et al. The Proteome of Copper, Iron, Zinc, and Manganese Micronutrient Deficiency in Chlamydomonas reinhardtii. Mol. Cell. Proteom. 12 (1), 65-86 (2013).
  17. Longworth, J., Noirel, J., Pandhal, J., Wright, P. C., Vaidyanathan, S. HILIC- and SCX-based quantitative proteomics of Chlamydomonas reinhardtii during nitrogen starvation induced lipid and carbohydrate accumulation. J. Proteome Res. 11 (12), 5959-5971 (2012).
  18. Malasarn, D., et al. Zinc deficiency impacts CO2 assimilation and disrupts copper homeostasis in Chlamydomonas reinhardtii. J. Biol. Chem. 288 (15), 10672-10683 (2013).
  19. Höhner, R., et al. The metabolic status drives acclimation of iron deficieny responses in Chlamydomonas reinhardtii as revealed by proteomics based hierarchical clustering and reverse genetics. Mol. Cell. , (2013).
  20. Mahong, B., Roytrakul, S., Phaonaklop, N., Wongratana, J., Yokthongwattana, K. Proteomic analysis of a model unicellular green alga, Chlamydomonas reinhardtii, during short-term exposure to irradiance stress reveals significant down regulation of several heat-shock proteins. Planta. 235 (3), 499-511 (2012).
  21. Förster, B., Mathesius, U., Pogson, B. J. Comparative proteomics of high light stress in the model alga Chlamydomonas reinhardtii. Proteomics. 6 (15), 4309-4320 (2006).
  22. Petroutsos, D., et al. The chloroplast calcium sensor CAS is required for photoacclimation in Chlamydomonas reinhardtii. Plant Cell. 23 (8), 2950-2963 (2011).
  23. Dodd, A. N., Kudla, J., Sanders, D. The language of calcium signaling. Annu. Rev. Plant Biol. 61, 593-620 (2010).
  24. Nomura, H., Komori, T., Kobori, M., Nakahira, Y., Shiina, T. Evidence for chloroplast control of external Ca2+-induced cytosolic Ca2+ transients and stomatal closure. Plant J. 53 (6), 988-998 (2008).
  25. Weinl, S., et al. A plastid protein crucial for Ca2+-regulated stomatal responses. New Phytol. 179 (3), 675-686 (2008).
  26. Terashima, M., Specht, M., Naumann, B., Hippler, M. Characterizing the anaerobic response of Chlamydomonas reinhardtii by quantitative proteomics. Mol. Cell. Proteomics. 9 (7), 1514-1532 (2010).
  27. Petroutsos, D., et al. PGRL1 participates in iron-induced remodeling of the photosynthetic apparatus and in energy metabolism in Chlamydomonas reinhardtii. J. Biol. Chem. 284 (47), 32770-32781 (2009).
  28. DalCorso, G., et al. A complex containing PGRL1 and PGR5 is involved in the switch between linear and cyclic electron flow in Arabidopsis. Cell. 132 (2), 273-285 (2008).
  29. Redding, K., et al. A systematic survey of conserved histidines in the core subunits of Photosystem I by site-directed mutagenesis reveals the likely axial ligands of P700. EMBO J. 17 (1), 50-60 (1998).
  30. Harris, E. H. . The Chlamydomonas Sourcebook. Introduction to Chlamydomonas and its laboratory use. , (2008).
  31. Porra, R. J., Thompson, W. A., Kriedemann, P. E. Determination of accurate extinction coefficients and simultaneous equations for assaying chlorophylls a and b extracted with four different solvents: verification of the concentration of chlorophyll standards by atomic absorption spectroscopy. Biochim. Biophys. Acta. 975 (3), 384-394 (1989).
  32. Naumann, B., Stauber, E. J., Busch, A., Sommer, F., Hippler, M. N-terminal processing of Lhca3 Is a key step in remodeling of the photosystem I-light-harvesting complex under iron deficiency in Chlamydomonas reinhardtii. J. Biol. Chem. 280 (21), 20431-20441 (2005).
  33. Hippler, M., Klein, J., Fink, a., Allinger, T., Hoerth, P. Towards functional proteomics of membrane protein complexes: analysis of thylakoid membranes from Chlamydomonas reinhardtii. Plant J. 28 (5), 595-606 (2001).
  34. Naumann, B., et al. Comparative quantitative proteomics to investigate the remodeling of bioenergetic pathways under iron deficiency in Chlamydomonas reinhardtii. Proteomics. 7 (21), 3964-3979 (2007).
  35. Shevchenko, A., Tomas, H., Havlis, J., Olsen, J. V., Mann, M. In-gel digestion for mass spectrometric characterization of proteins and proteomes. Nat. Prot. 1 (6), 2856-2860 (2006).
  36. Specht, M., Kuhlgert, S., Fufezan, C., Hippler, M. Proteomics to go: Proteomatic enables the user-friendly creation of versatile MS/MS data evaluation workflows. Bioinformatics. 27 (8), 1183-1184 (2011).
  37. Geer, L. Y., et al. Open mass spectrometry search algorithm. J. Proteome Res. 3 (5), 958-964 (2004).
  38. Craig, R., Beavis, R. C. TANDEM: matching proteins with tandem mass spectra. Bioinformatics. 20 (9), 1466-1467 (2004).
  39. Elias, J. E., Gygi, S. P. Target-decoy search strategy for increased confidence in large-scale protein identifications by mass spectrometry. Nat. Methods. 4 (3), 207-214 (2007).
  40. Käll, L., Storey, J. D., Noble, W. S. QVALITY: non-parametric estimation of q-values and posterior error probabilities. Bioinformatics. 25 (7), 964-966 (2009).
  41. Wollman, F. A., Bennoun, P. A new chlorophyll-protein complex related to photosystem I in Chlamydomonas reinhardtii. Biochim. Biophys. Acta. 680, 352-360 (1982).
  42. Bailey, S., et al. A critical role for the Var2 FtsH homologue of Arabidopsis thaliana in the photosystem II repair cycle in vivo. J. Biol. Chem. 277 (3), 2006-2011 (2002).
  43. Kato, Y., Sakamoto, W. Protein quality control in chloroplasts: a current model of D1 protein degradation in the photosystem II repair cycle. J. Biochem. 146 (4), 463-469 (2009).
  44. Meurer, J., Plücken, H., Kowallik, K. V., Westhoff, P. A nuclear-encoded protein of prokaryotic origin is essential for the stability of photosystem II in Arabidopsis thaliana. EMBO J. 17 (18), 5286-5297 (1998).
  45. Kuras, R., Wollman, F. A. The assembly of cytochrome b6/f complexes: an approach using genetic transformation of the green alga Chlamydomonas reinhardtii. EMBO J. 13 (5), 1019-1027 (1994).
  46. de Vitry, C., Finazzi, G., Baymann, F., Kallas, T. Analysis of the nucleus-encoded and chloroplast-targeted rieske protein by classic and site-directed mutagenesis of Chlamydomonas. Plant Cell. 11 (10), 2031-2044 (1999).
  47. Hamel, P., Olive, J., Pierre, Y., Wollman, F. A., de Vitry, C. A new subunit of cytochrome b6f complex undergoes reversible phosphorylation upon state transition. J. Biol. Chem. 275 (22), 17072-17079 (2000).
  48. Stanislas, T., et al. Quantitative proteomics reveals a dynamic association of proteins to detergent-resistant membranes upon elicitor signaling in tobacco. Mol. Cell. Proteomics. 8 (9), 2186-2198 (2009).
  49. Atteia, A., et al. A proteomic survey of Chlamydomonas reinhardtii mitochondria sheds new light on the metabolic plasticity of the organelle and on the nature of the alpha-proteobacterial mitochondrial ancestor. Mol. Biol. Evol. 26 (7), 1533-1548 (2009).
  50. Pagliano, C., Barera, S., Chimirri, F., Saracco, G., Barber, J. Comparison of the α and β isomeric forms of the detergent n-dodecyl-D-maltoside for solubilizing photosynthetic complexes from pea thylakoid membranes. Biochim. Biophys. Acta. 1817 (8), 1506-1515 (2012).
  51. Wisniewski, J. R., Zougman, A., Nagaraj, N., Mann, M. Universal sample preparation method for proteome analysis. Nat. Methods. 6 (5), 3-7 (2009).
check_url/51103?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Trompelt, K., Steinbeck, J., Terashima, M., Hippler, M. A New Approach for the Comparative Analysis of Multiprotein Complexes Based on 15N Metabolic Labeling and Quantitative Mass Spectrometry. J. Vis. Exp. (85), e51103, doi:10.3791/51103 (2014).

View Video