Nåværende kunnskap om cellulære grunnlag av hjertesykdommer stort sett er avhengig av studier på dyremodeller. Her beskriver vi og validere en ny metode for å oppnå enkle levedyktige cardiomyocytes fra små kirurgiske prøver av menneskelig ventrikkel myokard. Menneskelige ventrikulære myocytter kan benyttes til elektrofysiologiske studier og medikamenttesting.
Cardiomyocytes fra syke hjerter er utsatt for komplekse remodeling prosesser med endringer i cellestrukturen, eksitasjon kontraksjon kopling og membran ion strømninger. Disse endringene vil trolig være ansvarlig for den økte arytmogene risiko og kontraktile endringer som fører til systolisk og diastolisk dysfunksjon hos hjertepasienter. Men har mest mulig informasjon om de endringer av myocyte funksjon i hjertesykdommer kommer fra dyremodeller.
Her beskriver vi og validere en protokoll for å isolere levedyktige myocytes fra små kirurgiske prøver av ventrikkel myokard fra pasienter som gjennomgår hjertekirurgi operasjoner. Protokollen er beskrevet i detalj. Elektrofysiologiske og intracellulære kalsium målinger er rapportert å demonstrere gjennomførbarheten av et antall enkeltcellemålinger i humane ventrikulære cardiomyocytes oppnådd med denne metoden.
Protokollen rapporterte hanre kan være nyttig for fremtidige undersøkelser av cellulære og molekylære basis av funksjonelle forandringer av det menneskelige hjerte i nærvær av forskjellige hjertesykdommer. Videre kan denne fremgangsmåte anvendes for å identifisere nye terapeutiske mål på cellenivå, og for å teste effektiviteten av nye forbindelser på human cardiomyocytes, med direkte overføringsverdi.
Disseksjon av de elektrofysiologiske egenskapene til hjertemuskelen har utviklet seg betydelig etter utvikling av teknikker for enkelt hjerte myocyte isolasjon. Nye fremskritt i forståelsen av hjerte eksitasjon kontraksjon kopling (EC-Coupling) har også blitt gjort mulig ved evnen til å isolere levedyktige enkelt cardiomyocytes som beholder alle de fysiologiske egenskapene til intakt vev. Patch klemme metoder blir rutinemessig brukt for å studere funksjonen og farmakologisk modulering av hjerte sarcolemmal ion strømninger. Opptak av intracellulære kalsium dynamikk med Ca 2 + sensitive fargestoffer er også jevnlig utført på enkelthjertemuskelceller fra en rekke friske og syke modeller, og gir viktige data om fysiologi av EF-Coupling samt på de patologiske endringer av intracellulær Ca 2 + homeostase fører til mekanisk svikt og økt arytmogene byrde i hjertesykdommer. Informasjon fra disse studiene er avgjørende for å forstå de elektrofysiologiske og mekaniske effekter av legemidler i klinisk setting. Det er imidlertid artsspesifikke forskjeller i transmembrane strømninger og i EF-Coupling proteiner som står for bestemte funksjoner i hjertets aksjonspotensial og hjerte mekanikk. Således, mens studier av myocytes isolert fra ikke-menneskelige pattedyr har belyst de biofysiske egenskaper og fysiologiske roller spesifikke transmembrane ionekanaler og EC-Coupling proteiner, de gir ikke nødvendigvis relevante modeller av menneskelig hjertemuskelceller. Isolering av levedyktige myocytes fra menneskelige myokard er derfor viktig å fullt ut forstå patofysiologien av hjertesykdommer og validere nye terapeutiske tilnærminger.
Humant atrielle vev er lett tilgjengelig som atriale vedheng blir ofte kasseres under kirurgiske prosedyrer. Innledende kvantitative studier av voksne menneskelige hjerteaksjonspotensialer og ionisk currents ansatt enzymatisk isolerte atrial celler 1-4. Opptak av aksjonspotensialer eller strøm fra isolerte voksent menneske ventrikulære celler har blitt videre rapportert 3,5-10. De fleste av disse undersøkelsene har brukt celler oppnådd fra eksplanterte hjerter og utnyttes enten kollagenase perfusjon av koronar segment eller eksponering av relativt store mengder av utskåret vev til kollagenase for å oppnå isolerte celler. Disse studiene tillatt en detaljert karakterisering av et antall transmembrane ion strømmer fra menneskelige ventrikkel kardiomyocytter fra sunt hjerte og fra pasienter med terminal hjertesvikt. Opptak av L-type Ca 2 + strøm (I CA-L) 5-7, forbigående utover kalium strøm (jeg) 8, innover liker kalium strøm (Jeg κ1) 8, de ulike komponentene av forsinket likeretter kalium strøm (Jeg κ ) 9 er rapportert. Fremskritt og raffinering avisoleringsprosedyre 10, tillates en klar karakterisering av ionisk basis av den økte arytmogene potensial i terminal hjertesvikt, som omfatter aksjonspotensial-forlengelse 11, forsinket etter depolariseringer 12 og økt morsom strøm 13 som fører til depolarisering diastolisk og premature slag.
Voksen hjertemuskelceller er normalt isolert fra små dyr ved retrograd perfusjon av hele hjertet med ulike enzymblandinger, en teknikk som gir høy avkastning av Ca 2 +-tolerante celler 14. Isolering av hjertemuskelceller fra fragmenter av vev er iboende mindre vellykket trolig på grunn av den begrensede tilgangen av enzymer til individuelle myocytes sammenlignet med det som oppnås ved perfusjon av koronararteriene. På grunn av den svært begrensede tilgjengeligheten av ubrukte donor hjerter, den eneste praktiske måten å få normale menneskelige ventrikulære celler på en jevnlig basis er ved enzymatisk digestion av de ofte svært små vev fragmenter skåret under elektive kirurgiske prosedyrer. Bare human sykdom modell som har blitt grundig karakterisert på cellenivå er terminal hjertesvikt, på grunn av tilgjengelighet til transplanterte hjerter. Imidlertid oppstår terminal hjertesvikt i et mindretall av pasientene og ofte innebærer en felles vei av alvorlig ombygging av hjerteinfarkt celler, noe som er relativt uavhengig av den underliggende årsaken 15. Evnen til å vurdere funksjonen av enkelt kardiomyocytter fra pasienter på et tidligere ikke-sviktende stadium av sykdommen er viktig for å forstå de spesifikke patofysiologien til forskjellige arvede eller ervervede forhold. Hypertrofisk kardiomyopati (HCM) er et talende eksempel. HCM er en vanlig (1/500 individer) arvelig hjerte tilstand karakterisert ved hjertestans hypertrofi, økt arytmogene risiko og kontraktile forandringer på grunn av utstrømningen tarmkanalen obstruksjon og diastolisk dysfunksjon 16. Cardiomyocytes fra HCM hjerter undergo en kompleks remodeling prosesser med endringer i cellestruktur (hypertrofi, myofibrillære uorden) og EF-Coupling 17. Imidlertid har de fleste av informasjon myocyte dysfunksjon i HCM kommer fra transgene dyremodeller. Siden bare et mindretall av HCM pasienter utvikler seg mot terminal hjertesvikt og krever hjertetransplantert, HCM hjerter er svært sjelden tilgjengelig for celleisolasjon med standard metoder. Men minst 30% av HCM pasienter utvikle obstruktive symptomer på grunn av massive septal hypertrofi endring utstrømningen tarmkanalen blodstrømmen under systole (HCM) 18. Den mest effektive tilgjengelige terapeutisk alternativ for lindring av obstruksjon i HCM er kirurgisk septal myectomy: i løpet av denne kirurgiske prosedyren, er en variabel størrelse del av øvre septum fjernet av trans aortic tilnærming. Denne delen av hypertrophied septum er derfor tilgjengelig for celleisolasjon fra den friske vev.
En fremgangsmåte for isolering av humant ventricular myocytes fra enkle, små transvenøse endomyokardbiopsi eksemplarer er tidligere utviklet og utgitt 19. Vi gjennomførte en metode for å isolere enkelt septal myocytes fra ventrikulære myokard prøver fra pasienter som gjennomgår hjertekirurgi, inkludert pasienter med HCM gjennomgår septal myectomy og pasienter som gjennomgår ventil erstatning prosedyrer. I tillegg til en detaljert beskrivelse av isolasjonsprotokoll, representativ elektrofysiologisk og Ca 2 + fluorescens målingene er presentert, som viser levedyktigheten til de isolerte humane ventrikulære myocytter, og gjennomførbarheten av patch clamp-og intracellulære Ca 2 +-studier.
Vi har beskrevet og validert en metode for å isolere levedyktige myocytes fra kirurgiske prøver av menneskelig ventrikkel myokard. Starter fra tidligere beskrevet protokoller som hadde blitt brukt til isolerte celler fra atrial kirurgiske prøver, teknikken for å tillate utskilling av enkeltlevedyktige myocytes fra sykelig ventrikkel myokard ble utviklet og finjustert. Tidlige rapporter viste at isolering av enkelt cardiomyocytes fra biter av atrial og ventrikulær vev selektivt svekket repolarizing kaliumstrøm, noe…
The authors have nothing to disclose.
Dette arbeidet ble støttet av EU (STREP Prosjekt 241577 "stort hjerte," 7th European Framework Program, CP), Menarini International Operations Luxembourg (AM), TV-aksjonen GGP07133 (CP) og Gilead Sciences (AM).
Potassium phosphate monobasic (KH2PO4) | Sigma-Aldrich | P9791 | |
Magnesium sulfate heptahydrate(MgSO4 * 7H2O) | Sigma-Aldrich | M1880 | |
HEPES | Sigma-Aldrich | H3375 | |
Adenosine | Sigma-Aldrich | A9251 | |
D-(+)-Glucose | Sigma-Aldrich | G8270 | |
Mannitol | Sigma-Aldrich | M4125 | |
Taurine | Sigma-Aldrich | T0625 | |
Potassium hydroxide (KOH) | Sigma-Aldrich | P5958 | |
Sodium chloride (NaCl) | Sigma-Aldrich | S7653 | |
Potassium chloride (KCl) | Sigma-Aldrich | P9333 | |
Sodium phosphate dibasic (Na2HPO4) | Sigma-Aldrich | S7907 | |
Sodium bicarbonate (NaHCO3) | Sigma-Aldrich | S6297 | |
Potassium bicarbonate (KHCO3) | Sigma-Aldrich | 237205 | |
Sodium pyruvate | Sigma-Aldrich | P2256 | |
2,3-Butanedione monoxime | Sigma-Aldrich | B0753 | |
Sodium hydroxide(NaOH) | Sigma-Aldrich | S8045 | |
L-Glutamic acid monopotassium salt monohydrate | Sigma-Aldrich | 49601 | |
Pyruvic acid | Sigma-Aldrich | 107360 | |
3-Hydroxybutyric acid | Sigma-Aldrich | 166898 | |
Adenosine 5′-triphosphate dipotassium salt dihydrate (K2-ATP) | Sigma-Aldrich | A8937 | |
Creatine | Sigma-Aldrich | C0780 | |
Succinic Acid | Sigma-Aldrich | S3674 | |
Ethylene glycol-bis(2-aminoethylether)-N,N,N′,N′-tetraacetic acid (EGTA) | Sigma-Aldrich | E0396 | |
Albumin from bovine serum | Sigma-Aldrich | A0281 | |
Magnesium chloride (MgCl2) | Sigma-Aldrich | M8266 | |
Collagenase from Clostridium histolyticum, Type V | Sigma-Aldrich | C9263 | |
Proteinase, Bacterial, Type XXIV | Sigma-Aldrich | P8038 | |
Calcium chloride solution, ~1 M in H2O | Sigma-Aldrich | 21115 | |
Calcium chloride 0.1 M solution | Sigma-Aldrich | 53704 | |
Potassium methanesulfonate | Sigma-Aldrich | 83000 | |
FluoForte Reagent | Enzo Life Sciences | ENZ-52015 | |
Powerload concentrate, 100X | Life Technologies | P10020 | |
Perfusion Fast-Step System | Warner Instruments | VC-77SP | |
Amphotericin B solubilized | Sigma-Aldrich | A9528 | |
Multiclamp 700B patch-clamp amplifier | Molecular Devices | ||
Digidata 1440A | Molecular Devices | ||
pClamp10.0 | Molecular Devices | ||
Digestion Device | CUSTOM | CUSTOM | The device is custome made in our laboratory using plastic tubes, cast Sylgard and a motor; it is described in detail in Fig 1 C-D and in Fig.7. We can provide further details if requested |
Silicone elastomer for the digestion device's brushes | Dow Corning | SYLGARD® 184 | |
Variable speed rotating motor for the digestion device | Crouzet | Crouzet 178-4765 | |
Mold for brushes casting | N.A. | N.A. | The mold is custom made from standard PTFE 2.5 cm diameter rods |