Summary

Isolasjon og Funksjonell karakterisering av menneskelig Ventrikulær Cardiomyocytes fra Fresh Kirurgiske Samples

Published: April 21, 2014
doi:

Summary

Nåværende kunnskap om cellulære grunnlag av hjertesykdommer stort sett er avhengig av studier på dyremodeller. Her beskriver vi og validere en ny metode for å oppnå enkle levedyktige cardiomyocytes fra små kirurgiske prøver av menneskelig ventrikkel myokard. Menneskelige ventrikulære myocytter kan benyttes til elektrofysiologiske studier og medikamenttesting.

Abstract

Cardiomyocytes fra syke hjerter er utsatt for komplekse remodeling prosesser med endringer i cellestrukturen, eksitasjon kontraksjon kopling og membran ion strømninger. Disse endringene vil trolig være ansvarlig for den økte arytmogene risiko og kontraktile endringer som fører til systolisk og diastolisk dysfunksjon hos hjertepasienter. Men har mest mulig informasjon om de endringer av myocyte funksjon i hjertesykdommer kommer fra dyremodeller.

Her beskriver vi og validere en protokoll for å isolere levedyktige myocytes fra små kirurgiske prøver av ventrikkel myokard fra pasienter som gjennomgår hjertekirurgi operasjoner. Protokollen er beskrevet i detalj. Elektrofysiologiske og intracellulære kalsium målinger er rapportert å demonstrere gjennomførbarheten av et antall enkeltcellemålinger i humane ventrikulære cardiomyocytes oppnådd med denne metoden.

Protokollen rapporterte hanre kan være nyttig for fremtidige undersøkelser av cellulære og molekylære basis av funksjonelle forandringer av det menneskelige hjerte i nærvær av forskjellige hjertesykdommer. Videre kan denne fremgangsmåte anvendes for å identifisere nye terapeutiske mål på cellenivå, og for å teste effektiviteten av nye forbindelser på human cardiomyocytes, med direkte overføringsverdi.

Introduction

Disseksjon av de elektrofysiologiske egenskapene til hjertemuskelen har utviklet seg betydelig etter utvikling av teknikker for enkelt hjerte myocyte isolasjon. Nye fremskritt i forståelsen av hjerte eksitasjon kontraksjon kopling (EC-Coupling) har også blitt gjort mulig ved evnen til å isolere levedyktige enkelt cardiomyocytes som beholder alle de fysiologiske egenskapene til intakt vev. Patch klemme metoder blir rutinemessig brukt for å studere funksjonen og farmakologisk modulering av hjerte sarcolemmal ion strømninger. Opptak av intracellulære kalsium dynamikk med Ca 2 + sensitive fargestoffer er også jevnlig utført på enkelthjertemuskelceller fra en rekke friske og syke modeller, og gir viktige data om fysiologi av EF-Coupling samt på de patologiske endringer av intracellulær Ca 2 + homeostase fører til mekanisk svikt og økt arytmogene byrde i hjertesykdommer. Informasjon fra disse studiene er avgjørende for å forstå de elektrofysiologiske og mekaniske effekter av legemidler i klinisk setting. Det er imidlertid artsspesifikke forskjeller i transmembrane strømninger og i EF-Coupling proteiner som står for bestemte funksjoner i hjertets aksjonspotensial og hjerte mekanikk. Således, mens studier av myocytes isolert fra ikke-menneskelige pattedyr har belyst de biofysiske egenskaper og fysiologiske roller spesifikke transmembrane ionekanaler og EC-Coupling proteiner, de gir ikke nødvendigvis relevante modeller av menneskelig hjertemuskelceller. Isolering av levedyktige myocytes fra menneskelige myokard er derfor viktig å fullt ut forstå patofysiologien av hjertesykdommer og validere nye terapeutiske tilnærminger.

Humant atrielle vev er lett tilgjengelig som atriale vedheng blir ofte kasseres under kirurgiske prosedyrer. Innledende kvantitative studier av voksne menneskelige hjerteaksjonspotensialer og ionisk currents ansatt enzymatisk isolerte atrial celler 1-4. Opptak av aksjonspotensialer eller strøm fra isolerte voksent menneske ventrikulære celler har blitt videre rapportert 3,5-10. De fleste av disse undersøkelsene har brukt celler oppnådd fra eksplanterte hjerter og utnyttes enten kollagenase perfusjon av koronar segment eller eksponering av relativt store mengder av utskåret vev til kollagenase for å oppnå isolerte celler. Disse studiene tillatt en detaljert karakterisering av et antall transmembrane ion strømmer fra menneskelige ventrikkel kardiomyocytter fra sunt hjerte og fra pasienter med terminal hjertesvikt. Opptak av L-type Ca 2 + strøm (I CA-L) 5-7, forbigående utover kalium strøm (jeg) 8, innover liker kalium strøm (Jeg κ1) 8, de ulike komponentene av forsinket likeretter kalium strøm (Jeg κ ) 9 er rapportert. Fremskritt og raffinering avisoleringsprosedyre 10, tillates en klar karakterisering av ionisk basis av den økte arytmogene potensial i terminal hjertesvikt, som omfatter aksjonspotensial-forlengelse 11, forsinket etter depolariseringer 12 og økt morsom strøm 13 som fører til depolarisering diastolisk og premature slag.

Voksen hjertemuskelceller er normalt isolert fra små dyr ved retrograd perfusjon av hele hjertet med ulike enzymblandinger, en teknikk som gir høy avkastning av Ca 2 +-tolerante celler 14. Isolering av hjertemuskelceller fra fragmenter av vev er iboende mindre vellykket trolig på grunn av den begrensede tilgangen av enzymer til individuelle myocytes sammenlignet med det som oppnås ved perfusjon av koronararteriene. På grunn av den svært begrensede tilgjengeligheten av ubrukte donor hjerter, den eneste praktiske måten å få normale menneskelige ventrikulære celler på en jevnlig basis er ved enzymatisk digestion av de ofte svært små vev fragmenter skåret under elektive kirurgiske prosedyrer. Bare human sykdom modell som har blitt grundig karakterisert på cellenivå er terminal hjertesvikt, på grunn av tilgjengelighet til transplanterte hjerter. Imidlertid oppstår terminal hjertesvikt i et mindretall av pasientene og ofte innebærer en felles vei av alvorlig ombygging av hjerteinfarkt celler, noe som er relativt uavhengig av den underliggende årsaken 15. Evnen til å vurdere funksjonen av enkelt kardiomyocytter fra pasienter på et tidligere ikke-sviktende stadium av sykdommen er viktig for å forstå de spesifikke patofysiologien til forskjellige arvede eller ervervede forhold. Hypertrofisk kardiomyopati (HCM) er et talende eksempel. HCM er en vanlig (1/500 individer) arvelig hjerte tilstand karakterisert ved hjertestans hypertrofi, økt arytmogene risiko og kontraktile forandringer på grunn av utstrømningen tarmkanalen obstruksjon og diastolisk dysfunksjon 16. Cardiomyocytes fra HCM hjerter undergo en kompleks remodeling prosesser med endringer i cellestruktur (hypertrofi, myofibrillære uorden) og EF-Coupling 17. Imidlertid har de fleste av informasjon myocyte dysfunksjon i HCM kommer fra transgene dyremodeller. Siden bare et mindretall av HCM pasienter utvikler seg mot terminal hjertesvikt og krever hjertetransplantert, HCM hjerter er svært sjelden tilgjengelig for celleisolasjon med standard metoder. Men minst 30% av HCM pasienter utvikle obstruktive symptomer på grunn av massive septal hypertrofi endring utstrømningen tarmkanalen blodstrømmen under systole (HCM) 18. Den mest effektive tilgjengelige terapeutisk alternativ for lindring av obstruksjon i HCM er kirurgisk septal myectomy: i løpet av denne kirurgiske prosedyren, er en variabel størrelse del av øvre septum fjernet av trans aortic tilnærming. Denne delen av hypertrophied septum er derfor tilgjengelig for celleisolasjon fra den friske vev.

En fremgangsmåte for isolering av humant ventricular myocytes fra enkle, små transvenøse endomyokardbiopsi eksemplarer er tidligere utviklet og utgitt 19. Vi gjennomførte en metode for å isolere enkelt septal myocytes fra ventrikulære myokard prøver fra pasienter som gjennomgår hjertekirurgi, inkludert pasienter med HCM gjennomgår septal myectomy og pasienter som gjennomgår ventil erstatning prosedyrer. I tillegg til en detaljert beskrivelse av isolasjonsprotokoll, representativ elektrofysiologisk og Ca 2 + fluorescens målingene er presentert, som viser levedyktigheten til de isolerte humane ventrikulære myocytter, og gjennomførbarheten av patch clamp-og intracellulære Ca 2 +-studier.

Protocol

De eksperimentelle protokoller på menneskelig vev ble godkjent av etisk komité av Careggi Universitet-Hospital (2006/0024713, fornyet mai 2009). Hver pasient ga skriftlig informert samtykke. En. Solutions og utstyr Forberedelse Løsninger er beskrevet i tabell 1.. Et forenklet flytskjema for cellen isolasjonsprosedyren er funnet i figur 1. Oppløsni…

Representative Results

Metoden beskrevet ovenfor ble anvendt for å karakterisere de funksjonelle forandringer av kardiomyocytter isolert fra septum av pasienter med hypertrofisk kardiomyopati (HCM) som gjennomgikk myectomy drift, sammenlignet med ikke-sviktende uten hypertrofiske kirurgiske pasienter 21. Resultatene i dette avsnitt er utledet fra det arbeidet 21, og er her vist som et eksempel på hvordan denne teknikken kan brukes til å karakterisere endringer av myokardial cellefunksjon hos hjertesykdomstilstander. <…

Discussion

Vi har beskrevet og validert en metode for å isolere levedyktige myocytes fra kirurgiske prøver av menneskelig ventrikkel myokard. Starter fra tidligere beskrevet protokoller som hadde blitt brukt til isolerte celler fra atrial kirurgiske prøver, teknikken for å tillate utskilling av enkeltlevedyktige myocytes fra sykelig ventrikkel myokard ble utviklet og finjustert. Tidlige rapporter viste at isolering av enkelt cardiomyocytes fra biter av atrial og ventrikulær vev selektivt svekket repolarizing kaliumstrøm, noe…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av EU (STREP Prosjekt 241577 "stort hjerte," 7th European Framework Program, CP), Menarini International Operations Luxembourg (AM), TV-aksjonen GGP07133 (CP) og Gilead Sciences (AM).

Materials

Potassium phosphate monobasic (KH2PO4) Sigma-Aldrich P9791 
Magnesium sulfate heptahydrate(MgSO4 * 7H2O) Sigma-Aldrich M1880 
HEPES Sigma-Aldrich H3375 
Adenosine Sigma-Aldrich A9251 
D-(+)-Glucose Sigma-Aldrich G8270 
Mannitol Sigma-Aldrich M4125 
Taurine Sigma-Aldrich T0625
Potassium hydroxide (KOH) Sigma-Aldrich P5958
Sodium chloride (NaCl) Sigma-Aldrich S7653
Potassium chloride (KCl) Sigma-Aldrich P9333 
Sodium phosphate dibasic (Na2HPO4) Sigma-Aldrich S7907 
Sodium bicarbonate (NaHCO3) Sigma-Aldrich S6297 
Potassium bicarbonate (KHCO3) Sigma-Aldrich 237205
Sodium pyruvate Sigma-Aldrich P2256 
2,3-Butanedione monoxime Sigma-Aldrich B0753 
Sodium hydroxide(NaOH) Sigma-Aldrich S8045 
L-Glutamic acid monopotassium salt monohydrate Sigma-Aldrich 49601
Pyruvic acid Sigma-Aldrich 107360
3-Hydroxybutyric acid Sigma-Aldrich 166898
Adenosine 5′-triphosphate dipotassium salt dihydrate (K2-ATP) Sigma-Aldrich A8937
Creatine Sigma-Aldrich C0780 
Succinic Acid Sigma-Aldrich S3674 
Ethylene glycol-bis(2-aminoethylether)-N,N,N′,N′-tetraacetic acid (EGTA) Sigma-Aldrich E0396 
Albumin from bovine serum Sigma-Aldrich A0281
Magnesium chloride (MgCl2) Sigma-Aldrich M8266 
Collagenase from Clostridium histolyticum, Type V Sigma-Aldrich C9263 
Proteinase, Bacterial, Type XXIV Sigma-Aldrich P8038
Calcium chloride solution, ~1 M in H2O Sigma-Aldrich 21115
Calcium chloride 0.1 M solution Sigma-Aldrich 53704
Potassium methanesulfonate Sigma-Aldrich 83000
FluoForte Reagent Enzo Life Sciences ENZ-52015
Powerload concentrate, 100X Life Technologies P10020
Perfusion Fast-Step System Warner Instruments VC-77SP
Amphotericin B solubilized Sigma-Aldrich A9528 
Multiclamp 700B patch-clamp amplifier Molecular Devices
Digidata 1440A Molecular Devices
pClamp10.0  Molecular Devices
Digestion Device CUSTOM CUSTOM The device is custome made in our laboratory using plastic tubes, cast Sylgard and a motor; it is described in detail in Fig 1 C-D and in Fig.7. We can provide further details if requested
Silicone elastomer for the digestion device's brushes Dow Corning SYLGARD® 184
Variable speed rotating motor for the digestion device Crouzet Crouzet 178-4765 
Mold for brushes casting N.A. N.A. The mold is custom made from standard PTFE 2.5 cm diameter rods

References

  1. Dow, J. W., Harding, N. G., Powell, T. Isolated cardiac myocytes. I. Preparation of adult myocytes and their homology with the intact tissue. Cardiovascular Research. 15, 483-514 (1981).
  2. Dow, J. W., Harding, N. G., Powell, T. Isolated cardiac myocytes. II. Functional aspects of mature cells. Cardiovascular Research. 15, 549-579 (1981).
  3. Harding, S. E., et al. Species dependence of contraction velocity in single isolated cardiac myocytes. Cardioscience. 1, 49-53 (1990).
  4. Bustamante, J. O., Watanabe, T., Murphy, D. A., McDonald, T. F. Isolation of single atrial and ventricular cells from the human heart. Canadian Medical Association Journal. 126, 791-793 (1982).
  5. Beuckelmann, D. J., Nabauer, M., Erdmann, E. Characteristics of calcium-current in isolated human ventricular myocytes from patients with terminal heart failure. Journal of Molecular and Cellular Cardiology. 23, 929-937 (1991).
  6. Beuckelmann, D. J., Nabauer, M., Erdmann, E. Intracellular calcium handling in isolated ventricular myocytes from patients with terminal heart failure. Circulation. 85, 1046-1055 (1992).
  7. Cohen, N. M., Lederer, W. J. Calcium current in single human cardiac myocytes. Journal of Cardiovascular Electrophysiology. 4, 422-437 (1993).
  8. Beuckelmann, D. J., Nabauer, M., Erdmann, E. Alterations of K+ currents in isolated human ventricular myocytes from patients with terminal heart failure. Circulation Research. 73, 379-385 (1993).
  9. Virag, L., et al. The slow component of the delayed rectifier potassium current in undiseased human ventricular myocytes. Cardiovascular Research. 49, 790-797 (2001).
  10. Nanasi, P. P., Varro, A., Lathrop, D. A. Isolation of human ventricular and atrial cardiomyocytes: technical note. Cardioscience. 4, 111-116 (1993).
  11. Benitah, J. P., et al. Slow inward current in single cells isolated from adult human ventricles. Pflugers Archiv. European Journal of Physiology. 421, 176-187 (1992).
  12. Verkerk, A. O., et al. Ionic mechanism of delayed afterdepolarizations in ventricular cells isolated from human end-stage failing hearts. Circulation. 104, 2728-2733 (2001).
  13. Cerbai, E., et al. Characterization of the hyperpolarization-activated current, I(f), in ventricular myocytes from human failing heart. Circulation. 95, 568-571 (1997).
  14. Kohncke, C., et al. Isolation and kv channel recordings in murine atrial and ventricular cardiomyocytes. Journal of Visualized Experiments: JoVE. , (2013).
  15. Tomaselli, G. F., Marban, E. Electrophysiological remodeling in hypertrophy and heart failure. Cardiovascular Research. 42, 270-283 (1999).
  16. Maron, B. J. Hypertrophic cardiomyopathy: a systematic review. JAMA: The Journal of the American Medical Association. 287, 1308-1320 (2002).
  17. Olivotto, I., et al. The many faces of hypertrophic cardiomyopathy: from developmental biology to clinical practice. Journal of Cardiovascular Translational Research. 2, 349-367 (2009).
  18. Maron, M. S., et al. Hypertrophic cardiomyopathy is predominantly a disease of left ventricular outflow tract obstruction. Circulation. 114, 2232-2239 (2006).
  19. Peeters, G. A., et al. Method for isolation of human ventricular myocytes from single endocardial and epicardial biopsies. The American Journal of Physiology. 268, 1757-1764 (1995).
  20. Lippiat, J. D. Whole-cell recording using the perforated patch clamp technique. Methods Mol Biol. 491, 141-149 (2008).
  21. Coppini, R., et al. Late sodium current inhibition reverses electromechanical dysfunction in human hypertrophic cardiomyopathy. Circulation. 127, 575-584 (2013).
  22. Kuusisto, J., et al. Low-grade inflammation and the phenotypic expression of myocardial fibrosis in hypertrophic cardiomyopathy. Heart. 98, 1007-1013 (2012).
  23. Yan, G. X., et al. Phase 2 early afterdepolarization as a trigger of polymorphic ventricular tachycardia in acquired long-QT syndrome : direct evidence from intracellular recordings in the intact left ventricular wall. Circulation. 103, 2851-2856 (2001).
  24. Yue, L., Feng, J., Li, G. R., Nattel, S. Transient outward and delayed rectifier currents in canine atrium: properties and role of isolation methods. The American Journal of Physiology. 270, 2157-2168 (1996).
  25. Li, G. R., Feng, J., Yue, L., Carrier, M., Nattel, S. Evidence for two components of delayed rectifier K+ current in human ventricular myocytes. Circulation research. 78, 689-696 (1996).
  26. Viswanathan, P. C., Shaw, R. M., Rudy, Y. Effects of IKr and IKs heterogeneity on action potential duration and its rate dependence: a simulation study. Circulation. 99, 2466-2474 (1999).
  27. Volders, P. G., et al. Probing the contribution of IKs to canine ventricular repolarization: key role for beta-adrenergic receptor stimulation. Circulation. 107, 2753-2760 (2003).
  28. Sanguinetti, M. C., Jurkiewicz, N. K., Scott, A., Siegl, P. K. Isoproterenol antagonizes prolongation of refractory period by the class III antiarrhythmic agent E-4031 in guinea pig myocytes. Mechanism of action. Circulation Research. 68, 77-84 (1991).
  29. Coppini, R., et al. A translational approach to treatment of hypertrophic cardiomyopathy: pre-clinical rationale and design of a prospective randomized pilot trial with ranolazine. Circulation. 125, 1 (2012).

Play Video

Cite This Article
Coppini, R., Ferrantini, C., Aiazzi, A., Mazzoni, L., Sartiani, L., Mugelli, A., Poggesi, C., Cerbai, E. Isolation and Functional Characterization of Human Ventricular Cardiomyocytes from Fresh Surgical Samples. J. Vis. Exp. (86), e51116, doi:10.3791/51116 (2014).

View Video