Summary

Folding og karakterisering av en Bio-responsive Robot fra DNA Origami

Published: December 03, 2015
doi:

Summary

DNA origami is a powerful method for fabricating precise nanoscale objects by programming the self-assembly of DNA molecules. Here we describe a protocol for the folding of a bio-responsive robot from DNA origami, its purification and negative staining for transmission electron microscopic imaging (TEM).

Abstract

DNA nanorobot er en hul sekskantet nanometric enhet, designet for å åpne i respons til bestemte stimuli og nåtid last sekvestrert inne. Både stimuli og last kan skreddersys etter behov. Her beskriver vi DNA nanorobot fabrikasjonsprotokoll, med bruk av DNA origami teknikk. Fremgangsmåten starter ved å blande kort enkeltkjedet DNA stifter inn i et lager blanding som deretter tilsettes til en lang, rund, enkeltkjedet DNA stillaset i nærvær av en foldebuffer. En standard termosykler er programmert til å gradvis senke blandingsreaksjonstemperaturen for å lette stifter til stillaset gløding, som er den styrende kraft bak folding av nanorobot. Når 60 timer folding reaksjonen er fullstendig, blir overskudd av stifter kastes ved hjelp av en sentrifuge-filter, etterfulgt av visualisering via agarose-gel-elektroforese (AGE). Til slutt blir vellykket fremstilling av nanorobot verifisert ved transmisjonselektronmikroskopi (TEM),med bruk av uranyl-formiat som negative flekken.

Introduction

De bruker for nukleinsyrer nanoteknologi er forbløffende. Den tractability av Watson-Crick baseparing samt den enkle og relativt lave kostnader i stor skala syntese av skreddersydde oligos 2 har generert en eksplosjon av søknader 3 og forskning innen DNA nanoteknologi. Strukturelle DNA nanoteknologi, basert på det immobile Seeman krysset 4,5 som en grunnleggende byggeblokk gjør bruk av DNA som en selvsammen elementær enhet for bygging av vilkårlige former 6-8.

Den siste utviklingen av stillaset DNA origami 9 teknikken gjør det mulig for bygging av komplekse 2D / 3D nano arkitekturer 10-12 med sub-nanometer presisjon og er en effektiv rute for å bygge nye funksjonelle objekter med økende kompleksitet og forbløffende mangfold. Byggeprosessen er basert på en lang stillas enkelttrådet DNA, vanligvis avledet fra et viralt genome, som kan brettes inn i hybridiseringen av hundrevis av korte enkeltkjedet DNA oligonukleotider betegnet stifter. Den høye strukturelle oppløsning oppnådd ved denne teknikk er et direkte resultat av den naturlige dimensjonene av DNA-dobbeltspiralen, mens reproduserbarheten av fabrikasjonen er et resultat av å skreddersy de korte enkelttråds stift sekvenser for å lette maksimal hydrogenbinding komplementaritet oppnåelig. Med bruk av en langsom temperatur annealing rampe utformet lavest energi, termodynamisk foretrekkes nanostrukturen oppnås i høye utbytter og gjengivelse. Den enkel implementering av koblingsdesignregler i en datakode aktivert utvikling av DAK-verktøy, for eksempel caDNAno 13, som ekstremt forenkle oppgaven med å designe store, komplekse strukturer som inneholder hundrevis av tilkoblede veikryss.

Tidligere har vi beskrevet konstruksjonen av en DNA-nanorobot ved hjelp av den caDNAno verktøyet 14,15. Her viser vi fabrikasjon ogvisualisering, via transmisjonselektronmikroskopi (TEM), av nanorobot, en 3D hul sekskantet nanodevice, med dimensjoner på 35 x 35 x 50 nm 3, utformet for å gjennomgå en stor konformasjonsendring i respons til et forhåndsbestemt stimuli og liggende spesifikk last, f.eks som proteiner eller nukleinsyre oligos, sekvestrert inne. Mens 12 lastestasjoner er tilgjengelig inne i hule chassis, skiller det faktiske antall av bundet last med last størrelse. Cargo molekyler spenner fra små DNA-molekyler til enzymer, antistoffer og 5-10 nm gull nanopartikler. Cargocan enten være ensartet eller uensartet, slik at hver nanorobot inneholder en blanding av forskjellige molekyler. Sensing oppnås via to doble spiralformede låse porter design til fornuft proteiner, nukleinsyrer eller andre kjemikalier, basert enten på aptasensor 16,17 eller DNA-tråden forskyvning 18 teknologier. Den siste utviklingen i aptamer valgprotokollene 19-21 aktiver design av nanoroboter å svaretil en stadig økende utvalg av molekyler og celletyper.

Tidligere arbeid viste en nanorobot bærer et spesifikt antistoff, som ved binding til antigenet kan relé enten inhiberende eller en produktiv signal til innsiden av spesifikke celletyper i en blandet cellepopulasjon 15. En spennende funksjon av disse nanodevices er deres evne til å utføre enda mer komplekse oppgaver og logisk kontroll med innføring av forskjellige nanorobot undertyper i en enkelt populasjon. Nylig demonstrerte vi bestemte undergrupper av nanoroboter som utfører som enten positive eller negative regulatorer, som styrer en effektor befolkningen som inneholder en aktiv last molekyl 22.

Protokollen presenteres her beskriver fremstillingen, rensingen og avbildning av et nanorobot gated med aptamer sensor sekvenser som bindes selektivt til PDGF for å lette åpningen av nanorobot 15,22. Fremstillingsprosessen som er beskrevet er lik nanorobot fabrikasjon prosessen opprinnelig avbildet av Douglas et al. 15 med endringer for å redusere totale prosessen varighet, mens øke utbyttet og rense priser.

Protocol

1. Utarbeidelse av Staples Pool Blanding Bestill frysetørret DNA nanorobot stifter på 96-brønners plater som er oppført i tabell 1 (se Materials) og normal til 10 nmol. For en detaljert beskrivelse av design og arkitektur av DNA nanorobot se Ben-Ishay et al. 14 og Douglas et al. 15). Rekonstituer hver stift godt med DNase / RNase-fri ultrarent til en konsentrasjon på 100 uM. For stifter normalisert til 10 nmol rekonstitue…

Representative Results

Representative resultater er vist i figur 2A. Alle baner inneholder 1 ug av total-DNA, målt via spektrofotometer (OD 260). Sammenlignet med den sirkulære enkeltkjedet DNA stillas (felt 2), nanoroboter er hindret i gelen på grunn av deres høyere molekylvekt, et resultat av stifter hybridisering til stillaset DNA (Lane 3. rød pil). Den lavmolekylære bånd i Lane 3 representerer overskytende stifter som ikke binder seg til stillaset DNA (grønn pil). Etter rensing ved hjelp av sentrifugal-…

Discussion

Vi beskrev fremstilling, rensing, og visualisering av DNA nanorobot. Etter fremstillingen av den heksagonale chassis av anordningen, er funksjonen av nanorobot programmert med enkel innføring av spesifikk last og føler tråder til roboten som lett finne sin egen stilling på grunn av hydrogenbinding komplementaritet med tilgjengelige enkelttrådstilkoblingssteder 14 , 15,22.

Fabrikasjon protokollen beskrevet bruker en langsom gløding rampe, som vanligvis brukes i vår lab å ka…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne ønsker å takke S. Douglas for ekstremt verdifulle diskusjoner og råd, og alle medlemmene av Bachelet lab for nyttige diskusjoner og arbeid. Dette arbeidet er støttet med tilskudd fra Fakultet for biovitenskap og Institute of Nanoteknologi og avanserte materialer ved Bar-Ilan-universitetet.

Materials

DNase/RNase free distilled water Gibco 10977
M13mp18 ssDNA scaffold NEB N4040S
10x TAE Gibco 15558-042
1 M MgCl2 Ambion AM9530G
Amicon Ultra 0.5 mL centrifugal filter 100K MWCO Amicon UFC510024
Agarose Promega V3125
TBE buffer Promega V4251
Ethidium bromide 10mg/ml solution  Sigma Aldrich E1510
1 kb DNA marker NEB N3232S
Loading Dye NEB B7021S
uranyl formate polysciences 24762
carbon-coated TEM grids  Science services EFCF400-Cu-50
Thermal Cycler c1000 Touch Bio-Rad
Glow Discharge K100X Emitech
UV table Gel Doc EZ Imager Bio-Rad
NanoDrop 2000c Thermo Scientific
TEM FEI-G12 Tecnai

References

  1. Watson, J. D., Crick, F. H. Genetical implications of the structure of deoxyribonucleic acid. Nature. 171, 964-967 (1953).
  2. Kosuri, S., Church, G. M. Large-Scale de novo. DNA synthesis: technologies and applications. Nature Meth. 11 (5), 499-507 (2014).
  3. Pinheiro, A. V., Han, D., Shih, W. M., Yan, H. Challenges and opportunities for structural DNA nanotechnology. Nature Nanotech. 6 (12), 763-772 (2011).
  4. Seeman, N. C. Nucleic acid junctions and lattices. J Theor Biol. 99 (2), 237-247 (1982).
  5. Chen, J. H., Seeman, N. C. Synthesis from DNA of a molecule with the connectivity of a cube. Nature. 350 (6319), 631-633 (1991).
  6. Wei, B., Dai, M., Yin, P. Complex shapes self-assembled from single-stranded DNA tiles. Nature. 485 (7400), 623-626 (2012).
  7. He, Y., et al. Hierarchical self-assembly of DNA into symmetric supramolecular polyhedra. Nature. 452 (7184), 198-201 (2008).
  8. Yin, P., Hariadi, R. F., Sahu, S., Choi, H. M. T., Park, S. H., Labean, T. H., Reif, J. H. Programming DNA tube circumferences. Science. 321 (5890), 824-826 (2008).
  9. Rothemund, P. W. Folding DNA to create nanoscale shapes and patterns. Nature. 440 (7082), 297-302 (2006).
  10. Dietz, H., Douglas, S. M., Shih, W. M. Folding DNA into twisted and curved nanoscale shapes. Science. 325 (5941), 725-730 (2009).
  11. Douglas, S. M., et al. Self-assembly of DNA into nanoscale three-dimensional shapes. Nature. 459 (7245), 414-418 (2009).
  12. Zhang, F., Nangreave, J., Liu, Y., Yan, H. Structural DNA nanotechnology: state of the art and future perspective. J Am Chem Soc. 136 (32), 11198-11211 (2014).
  13. Douglas, S. M., et al. Prototyping of 3D DNA-origami shapes with caDNAno. Nucleic Acids Res. 37 (15), 5001-5006 (2009).
  14. Ben-Ishay, E., Abu-Horowitz, A., Bachelet, I. Designing a bio-responsive robot from DNA origami. J Vis Exp. (77), e50268 (2013).
  15. Douglas, S. M., Bachelet, I., Church, G. M. A logic-gated nanorobot for targeted transport of molecular payloads. Science. 335 (6070), 831-834 (2012).
  16. Tan, W., Donovan, M. J., Jiang, J. Aptamers from cell-based selection for bioanalytical applications. Chem Rev. 113 (4), 2842-2862 (2013).
  17. Xiang, D., et al. Nucleic Acid Aptamer-Guided Cancer Therapeutics and Diagnostics: The Next Generation of Cancer Medicine. Theranostics. 5 (1), 23-42 (2015).
  18. Zhang, D. Y., Seelig, G. Dynamic DNA nanotechnology using strand-displacement reactions. Nat Chem. 3 (2), 103-113 (2011).
  19. Tang, Z., Parekh, P., Turner, P., Moyer, R. W., Tan, W. Generating aptamers for recognition of virus-infected cells. Clin Chem. 55 (4), 813-822 (2009).
  20. Sefah, K., Shangguan, D., Xiong, X., O’Donoghue, M. B., Tan, W. Development of DNA aptamers using Cell-SELEX. Nature Prot. 5 (6), 1169-1185 (2010).
  21. McKeague, M., DeRosa, M. C. Challenges and Opportunities for Small Molecule Aptamer Development. J Nucleic Acids. 2012, (2012).
  22. Amir, Y., et al. Universal computing by DNA origami robots in a living animal. Nature Nanotech. 9 (5), 353-357 (2014).
  23. Castro, C. E., et al. A primer to scaffolded DNA origami. Nature Meth. 8 (3), 221-229 (2011).
  24. Sobczak, J. P., Martin, T. G., Gerling, T., Dietz, H. Rapid folding of DNA into nanoscale shapes at constant temperature. Science. 338 (6113), 1458-1461 (2012).
  25. Stahl, E., Martin, T. G., Praetorius, F., Dietz, H. Facile and scalable preparation of pure and dense DNA origami solutions. Angew Chem Int Ed Engl. 53 (47), 12735-12740 (2014).
  26. Lin, C., Perrault, S. D., Kwak, M., Graf, F., Shih, W. M. Purification of DNA-origami nanostructures by rate-zonal centrifugation. Nucleic Acids Res. 41 (2), (2012).
  27. Bai, X. C., Martin, T. G., Scheres, S. H., Dietz, H. Cryo-EM structure of a 3D DNA-origami object. Proc Natl Acad Sci U S A. 109 (49), 20012-20017 (2012).
check_url/51272?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Amir, Y., Abu-Horowitz, A., Bachelet, I. Folding and Characterization of a Bio-responsive Robot from DNA Origami. J. Vis. Exp. (106), e51272, doi:10.3791/51272 (2015).

View Video