Summary

Konsensus Brain-derived protein, Extraction protokoll för studier av humana och murina Brain Proteome Använda Både 2D-DIGE och Mini 2DE Immunoblotting

Published: April 10, 2014
doi:

Summary

Ett vanligt proteinutvinning protokoll med hjälp av urea / tiourea / SDS-buffert för människa och mus hjärnvävnad möjliggör identifikation av proteiner genom 2D-DIGE och deras efterföljande karakterisering av mini 2DE immunoblotting. Denna metod gör det möjligt att få mer reproducerbara och tillförlitliga resultat från humana biopsier och experimentella modeller.

Abstract

Två-dimensionell gelelektrofores (2DE) är ett kraftfullt verktyg för att avslöja proteome ändringar potentiellt relaterade till olika fysiologiska eller patologiska tillstånd. I grund och botten är denna teknik bygger på separation av proteiner i enlighet med deras isoelektriska punkt i ett första steg och för det andra i enlighet med deras molekylvikter med SDS-polyakrylamidgelelektrofores (SDS-PAGE). I den här rapporten en optimerad provberedningsprotokoll för liten mängd humant efter slakt och mus hjärnvävnad beskrivs. Denna metod gör det möjligt att utföra både tvådimensionella fluorescens skillnad gelelektrofores (2D-DIGE) och mini 2DE immunoblotting. Kombinationen av dessa metoder gör att man kan inte bara hitta nya proteiner och / eller protein ändringar i sina uttryck, tack vare dess förenlighet med massdetektering spektrometri, men också en ny insikt markörer validering. Således, mini-2DE kopplad till västra läsk tillstånd för att identifiera och validera inläggetTranslationella modifieringar, proteiner katabolism och ger en kvalitativ jämförelse mellan olika förhållanden och / eller behandlingar. Häri, tillhandahåller vi en metod för att studera komponenterna i proteinaggregat som finns i AD och Lewy body demens, såsom amyloid-beta-peptiden och den alfa-synuklein. Vår metod kan således anpassas för att analysera proteomet och olösliga proteiner extrakt från human hjärnvävnad och musmodeller också. Samtidigt kan det ge användbar information för studier av molekylära och cellulära involverade i neurodegenerativa sjukdomar samt potentiella nya biomarkörer och terapeutiska mål.

Introduction

Psykiska och neurologiska sjukdomar utgör 13% av den globala sjukdomsbördan, måste nya utmaningar som patofysiologiska mekanismer, riskfaktorer och prodromal biomarkörer utforskas 1. I linje med detta mål, proteomik studier av den mänskliga hjärnan blivit oumbärlig för att avslöja molekylära vägar som är inblandade i processer som minne, beteende, känslor och neuronal plasticitet till exempel, inte bara för fysiologisk utan också för patologiska tillstånd. Därför är användning av djurmodeller och mer specifikt transgena möss, ger en mängd möjligheter att härma etiologin av humana neurodegenerativa störningar 2.

Proteomik metoder är numera tillgängliga för att uppnå dessa nya perspektiv inom neurovetenskap fältet. Tvådimensionell gelelektrofores (2DE) är en potent och sannolikt enkel metod som gör det möjligt att jämföra proteomet av ett brett spektrum av prov. Dessutom är det också enkraftfull metod för att isolera ett protein från en komplex blandning i syfte att identifiera och ytterligare analysera genom masspektrometri. Denna teknik består i huvudsak i två på varandra följande steg: 1) proteinseparation i enlighet med deras isoelektriska punkt (pl) av isoelectrofocusing (lEF). Mer exakt, är en elektrisk potential appliceras över remsor på Immobiline akrylamid bland en pH-gradient och sedan proteiner kommer att migrera och fokusera på en bestämd pl i funktion av deras globala nettoladdning. 2) isoelektriskt fokuserade proteiner denatureras och negativt laddad genom tillsättning av natriumdodecylsulfat (SDS), och därigenom proteiner i deras första strukturen separeras beroende på deras skenbara molekylvikt (MW) genom SDS-PAGE 3. Dessa två distinkta egenskaper tillåter oss att ta itu med ett dubbelt värde att gå vidare i studien av proteomet. Å ena sidan ger denna metod möjlighet att utföra en kvantitativ analys med minimala färgämnen 2D-DIGE metoden, och å andra sidan en qualitative analys av mini-2DE kopplad till western blotting.

Kvantitativ analys av 2D-DIGE skänker proteinuttryck förändras hela prov proteome. I korthet är prover märkta med tre cyaniner (CY2, Cy3 och Cy5) avger vid tre olika våglängder (blått, grönt och rött). Dessa fluor minimala färgämnen, som innehåller N-hydroxi succinimidylester grupp reagerar med ε-aminogruppen i lysin-rester i proteiner som resulterar i kovalenta amidbindningar 4. Lysinresterna märks endast mellan 1-3% och därmed förhindra flera etiketter tillägg per protein och stora nettoladdnings ändringar 5, 6. Cy3 och Cy5 används ofta för att märka två oberoende urval medan Cy2 taggar en blandning av lika delar av proverna att jämföra. De två främsta fördelarna är att alla märkta proverna blandas och IEF och SDS-PAGE utförs i en gel på en gång för varje steg, undvika bland variationsrikedomen bland experiment på grund av geler jämförelse. Dessutom har den en hög tröskel på cirka 1 femtomol protein 7 upptäckt. Gel skannas och 2D-programvara jämför 2D gel fluorescens bilder, där Cy2 fungerar som en inre standard möjliggör identifiering av statistiska skillnader mellan platserna för deras bakre identifiering av masspektrometri. 2D-analys programvara med hjälp av intern standard uppnår en snabb upptäckt av mindre än 10% av skillnaderna mellan prover med mer än 95% av statistisk konfidens 8.

Kvalitativ analys av mini-2DE är ett avgörande steg för proteinkarakterisering. Principen är densamma som tidigare beskrivits för pl och MW-separation, men i detta fall proteiner överförs från ett litet polyakrylamidgel till ett membran och immunoblotting utföres efteråt. Medan en dimension gelelektrofores ger förändringar i proteinuttryck för ett eller flera protein epitoper i funktion av den antikroppen, INFORMATIOn mini-2DE förser med ytterligare två parametrar. För det första de protein isovariants förändras som funktion av pl, vilket anger att posttranslationella modifieringar kan äga rum. För det andra kan samlas identifiering spektrometri tyda på rimliga zymogener och katabola produkter av proteiner. , Modifieringar observeras av 2D-DIGE är därför sannolikt ett tecken på de mekanismer som ligger bakom förändringarna i den globala proteome profilen. Anpassningar av immunoblots bland flera prover för samma protein epitop / s genom mini-2DE kan återspegla surhetsgraden förändringar sprider ljus i post-translationella variationer lätt observeras eller ens genom monodimensional immunoblottning 9, 10. Dessutom informerar denna analys om de potentiella klyvningsställen på grund av kunskapen om pl och MW de metaboliska rester 11,12.

Kombinationen av dessa två tekniker ger en komplementär proteomik analys. Å ena sidan 2D-DIGE ger en type av skillnader som möjliggör en exakt isolering av polypeptider vars uttryck är olika. Dessa skillnader består i huvudsak i utseende eller försvinnandet av en plats eller ökning / minskning av intensiteten i en viss en och programvara analys av fluorescerande geler. Emellertid är dessa observationer i sig är osannolikt att förklara vilket slag av modifiering observerades. Av dessa skäl, när polypeptiden isoleras och identifieras med masspektrometri, användning av mini-2DE gör det möjligt att exakt bekräfta 1) identiteten av proteinet isoleras och 2) vilken typ av skillnad: förändring av isovariant / isoform nivå uttryck, post-translationella modifieringar och klyvningsprocesser till exempel. Det är dock nödvändigt att utveckla en startlyseringsbuffert både kompatibel med 2D-DIGE och med mini-2DE för att begränsa de potentiella dispersioner följd av användningen av utvinningsprotokoll som är mycket olika.

I denna artikel har vi debeskrivs ett anpassat protokoll för beredning, utvinning och prestanda för 2D-DIGE och mini-2DE tekniker för hjärnproteiner som kommer från människa och mus vävnad.

Protocol

1. Homogenisering och Total Protein Extraction från Human och mus hjärnvävnad Hjärnvävnad homogenisering. Homogenihjärnvävnaden 10% (vikt / volym) i 8 M urea, 2 M tiokarbamid och 1% vikt / volym SDS-buffert (UTS) med användning av en Potter-glas (för prover från människa) eller Teflon-homogenisator (till möss proven). Sonikera vid 60 Hz 30 pulser med en ultraljudsgenerator ansöker 0,5 sek för total vävnad sönderfall 13, 14. Bestäm proteinkoncentrationen med Bradford-analys…

Representative Results

Proteomics på hjärnvävnad fortfarande utmanande eftersom ingen idealisk buffert finns för att återvinna 100% av proteiner, speciellt membran-associerade eller cytoskeleton proteiner. Den första uppsättningen av experiment fokuserade på sökandet efter en lämplig lyseringsbuffert kompatibel med de två metoderna och som gör det möjligt att återvinna en stor panel av protein. Således var tre lys buffertar analyseras för att bestämma den mest lämpliga. För det första var det används den vanliga biokemisk…

Discussion

Upptäcka patologiska uttrycket ändras av proteiner, söka efter biomarkörer och modulering av potentiella vägar för farmakologiska mål är bland målen för de neuroproteomics närmar sig 30. Mitt i de framväxande verktyg, det 2DE fältet lägger en lovande expectative. Icke desto mindre bör ett samförstånd nås för att minimera variabilitet och öka reproducerbarheten i experimenten. I linje med denna idé ett standardiserat protokoll för att utföra 2D-DIGE (figur 2) och den eft…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete stöddes av Inserm, universitetet i Lille 2, MEDIALZ, Labex (excellens laboratorium, program investera för framtiden) och DISTALZ (Utveckling av innovativa strategier för en tvärvetenskaplig syn på Alzheimers sjukdom). FJ.FG är idag en mottagare gemenskap ANR (franska nationella forskningsinstitut / NeuroSplice de Tau Projet ANR-2010-BLAN-1114 01), men detta arbete var också under stöd av ett bidrag från JCCM (Spanien).

Materials

CyDye DIGE FLUOR MIN KIT 5nmol 1 * 5 Nmo GE Healtcare 25-8010-65
Immobiline DryStrip GE Healtcare Reference in function of the pH interval/size
IPG Buffer, pH X-X GE Healtcare Reference in function of the pH interval desired
AMBERLITE IRN-150L MIXED BED RESIN 1  GE Healtcare 551797N
DRYSTRIP COVER FLUID IMMOBILINE 1 * 1 l GE Healtcare 17-1335-01
KIT BOX IPG 1 * 1 KIT GE Healtcare 28-9334-92 Plastic box to make the passive rehydration 
MILLEX GS Filter Millipore SLGS033SB
Criterion XT Precast Gels 13.3 x 8.7 cm (W x L) Bio-Rad Reference in function of the MW to separate
IPGphor III Isoelectric Focusing Unit GE Healtcare 11-0033-64
Ettan DALTsix Large Electrophoresis System GE Healtcare 80-6485-08 
OneTouch 2D Gel SpotPicker 1.5 mm  Gel Company P2D1.5

References

  1. Collins, P. Y., et al. Grand challenges in global mental health. Nature. 475, 27-30 (2011).
  2. De Deyn, P. P., Van Dam, D., Sergeant, N., Buée, L. . Animal Models of Dementia Vol. 48 Neuromethods 449-468. , 449-468 (2011).
  3. O’Farrell, P. H. High resolution two-dimensional electrophoresis of proteins. J Biol Chem. 250, 4007-4021 (1975).
  4. Riederer, B. M. Non-covalent and covalent protein labeling in two-dimensional gel electrophoresis. J Proteomics. 71, 231-244 (2008).
  5. Marouga, R., David, S., Hawkins, E. The development of the DIGE system: 2D fluorescence difference gel analysis technology. Anal Bioanal Chem. 382, 669-678 (2005).
  6. Westermeier, R., Scheibe, B. Difference gel electrophoresis based on lys/cys tagging. Methods Mol Biol. 424, 73-85 (2008).
  7. Gong, L., et al. Drosophila ventral furrow morphogenesis: a proteomic analysis. Development. 131, 643-656 (2004).
  8. Gharbi, S., et al. Evaluation of two-dimensional differential gel electrophoresis for proteomic expression analysis of a model breast cancer cell system. Mol Cell Proteomics. 1, 91-98 (2002).
  9. Ando, K., et al. Tau pathology modulates Pin1 post-translational modifications and may be relevant as biomarker. Neurobiol Aging. 34, 757-769 (2013).
  10. Bretteville, A., et al. Two-dimensional electrophoresis of tau mutants reveals specific phosphorylation pattern likely linked to early tau conformational changes. PLoS One. 4, 4843 (2009).
  11. Sergeant, N., et al. Two-dimensional characterization of paired helical filament-tau from Alzheimer’s disease: demonstration of an additional 74-kDa component and age-related biochemical modifications. J Neurochem. 69, 834-844 (1997).
  12. Sergeant, N., et al. Different distribution of phosphorylated tau protein isoforms in Alzheimer’s and Pick’s diseases. FEBS Lett. 412, 578-582 (1997).
  13. Rabilloud, T., Luche, S., Santoni, V., Chevallet, M. Detergents and chaotropes for protein solubilization before two-dimensional electrophoresis. Methods Mol Biol. 355, 111-119 (2007).
  14. Wrobel, K., Caruso, J. A. Pretreatment procedures for characterization of arsenic and selenium species in complex samples utilizing coupled techniques with mass spectrometric detection. Anal Bioanal Chem. 381, 317-331 (2005).
  15. McCarthy, J., et al. Carbamylation of proteins in 2-D electrophoresis–myth or reality. J Proteome Res. 2, 239-242 (2003).
  16. Chafey, P., et al. Proteomic analysis of beta-catenin activation in mouse liver by DIGE analysis identifies glucose metabolism as a new target of the Wnt pathway. Proteomics. 9, 3889-3900 (2009).
  17. Kahn, J. E., et al. Comparative proteomic analysis of blood eosinophils reveals redox signaling modifications in patients with FIP1L1-PDGFRA-associated chronic eosinophilic leukemia. J Proteome Res. 10, 1468-1480 (2011).
  18. Pottiez, G., et al. A large-scale electrophoresis- and chromatography-based determination of gene expression profiles in bovine brain capillary endothelial cells after the re-induction of blood-brain barrier properties. Proteome Sci. 8, 57 (2010).
  19. Stochaj, W. R., Berkelman, T., Laird, N. Preparative 2D Gel Electrophoresis with Immobilized pH Gradients: IPG Strip Equilibration. CSH Protoc. , (2006).
  20. Azimzadeh, O., et al. Formalin-fixed paraffin-embedded (FFPE) proteome analysis using gel-free and gel-based proteomics. J Proteome Res. 9, 4710-4720 (2010).
  21. Singh, S., et al. Identification of the p16-Arc subunit of the Arp 2/3 complex as a substrate of MAPK-activated protein kinase 2 by proteomic analysis. J Biol Chem. 278, 36410-36417 (2003).
  22. Rabilloud, T. Use of thiourea to increase the solubility of membrane proteins in two-dimensional electrophoresis. Electrophoresis. 19, 758-760 (1998).
  23. Molloy, M. P., et al. Extraction of membrane proteins by differential solubilization for separation using two-dimensional gel electrophoresis. Electrophoresis. 19, 837-844 (1998).
  24. Ericsson, C., Peredo, I., Nister, M. Optimized protein extraction from cryopreserved brain tissue samples. Acta Oncol. 46, 10-20 (2007).
  25. Shaw, M. M., Riederer, B. M. Sample preparation for two-dimensional gel electrophoresis. Proteomics. 3, 1408-1417 (2003).
  26. Ye, X., et al. Optimization of protein solubilization for the analysis of the CD14 human monocyte membrane proteome using LC-MS/MS. J Proteomics. 73, 112-122 (2009).
  27. Centlow, M., Hansson, S. R., Welinder, C. Differential proteome analysis of the preeclamptic placenta using optimized protein extraction. J Biomed Biotechnol. 2010, 458-748 (2010).
  28. Perdew, G. H., Schaup, H. W., Selivonchick, D. P. The use of a zwitterionic detergent in two-dimensional gel electrophoresis of trout liver microsomes. Anal Biochem. 135, 453-455 (1983).
  29. Schindowski, K., et al. Alzheimer’s disease-like tau neuropathology leads to memory deficits and loss of functional synapses in a novel mutated tau transgenic mouse without any motor deficits. Am J Pathol. 169, 599-616 (2006).
  30. Veenstra, T. D., Marcus, K. Multidimensional advancement of neuroproteomics. Expert Rev Proteomics. 5, 149-151 (2008).
  31. Hernandez-Hernandez, O., et al. Myotonic dystrophy CTG expansion affects synaptic vesicle proteins, neurotransmission and mouse. 136, 957-970 (2013).
  32. Deramecourt, V., et al. Biochemical staging of synucleinopathy and amyloid deposition in dementia with Lewy bodies. J Neuropathol Exp Neurol. 65, 278-288 (2006).
  33. Tofaris, G. K., Razzaq, A., Ghetti, B., Lilley, K. S., Spillantini, M. G. Ubiquitination of alpha-synuclein in Lewy bodies is a pathological event not associated with impairment of proteasome function. J Biol Chem. 278, 44405-44411 (2003).
  34. Sergeant, N., et al. Truncated beta-amyloid peptide species in pre-clinical Alzheimer’s disease as new targets for the vaccination approach. J Neurochem. 85, 1581-1591 (2003).
  35. Le Freche, H., et al. Tau phosphorylation and sevoflurane anesthesia: an association to postoperative cognitive impairment. Anesthesiology. 116, 779-787 (2012).
  36. Leboucher, A., et al. Detrimental effects of diet-induced obesity on tau pathology are independent of insulin resistance in tau transgenic mice. Diabetes. 62, 1681-1688 (2013).
  37. Deramecourt, V., et al. Clinical, neuropathological, and biochemical characterization of the novel tau mutation P332S. J Alzheimers Dis. 31, 741-749 (2012).
  38. Birdsill, A. C., Walker, D. G., Lue, L., Sue, L. I., Beach, T. G. Postmortem interval effect on RNA and gene expression in human brain tissue. Cell Tissue Bank. 12, 311-318 (2011).
  39. Bell, J. E., et al. Management of a twenty-first century brain bank: experience in the BrainNet Europe consortium. Acta Neuropathol. 115, 497-507 (2008).
  40. Crecelius, A., et al. Assessing quantitative post-mortem changes in the gray matter of the human frontal cortex proteome by 2-D DIGE. Proteomics. 8, 1276-1291 (2008).
  41. Swatton, J. E., Prabakaran, S., Karp, N. A., Lilley, K. S., Bahn, S. Protein profiling of human postmortem brain using 2-dimensional fluorescence difference gel electrophoresis (2-D DIGE). Mol Psychiatry. 9, 128-143 (2004).
  42. Viswanathan, S., Unlu, M., Minden, J. S. Two-dimensional difference gel electrophoresis. Nat Protoc. 1, 1351-1358 (2006).
  43. Tannu, N. S., Hemby, S. E. Two-dimensional fluorescence difference gel electrophoresis for comparative proteomics profiling. Nat Protoc. 1, 1732-1742 (2006).
check_url/51339?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Fernandez-Gomez, F., Jumeau, F., Derisbourg, M., Burnouf, S., Tran, H., Eddarkaoui, S., Obriot, H., Dutoit-Lefevre, V., Deramecourt, V., Mitchell, V., Lefranc, D., Hamdane, M., Blum, D., Buée, L., Buée-Scherrer, V., Sergeant, N. Consensus Brain-derived Protein, Extraction Protocol for the Study of Human and Murine Brain Proteome Using Both 2D-DIGE and Mini 2DE Immunoblotting. J. Vis. Exp. (86), e51339, doi:10.3791/51339 (2014).

View Video