Summary

Ex vivo Culture of Mouse Embryonic Hud og Live-avbildning av Melanoblast Migration

Published: May 19, 2014
doi:

Summary

Vi beskriver disseksjon og ex vivo kultur av muse embryonale hud. Kultursystemet opprettholder en luft-væske-grensesnittet over vevsoverflaten og tillater avbildning på et invertert mikroskop. Melanoblasts, en komponent i utviklings hud, er fluorescensmerkede slik at deres atferd for å bli observert ved hjelp konfokalmikroskopi.

Abstract

Melanoblasts er neural crest avledet forløpere for melanocytter; cellene som er ansvarlige for produksjon av pigment i huden og håret. Melanoblasts migrere gjennom epidermis av embryoet hvor de senere kolonisere utvikle hårsekkene 1,2. Neural crest celle migrasjon er grundig studert in vitro, men in vivo metoder er fortsatt ikke godt utviklet, særlig i pattedyr systemer. Ett alternativ er å bruke ex vivo organotypic kultur 3-6. Kultur av muse-embryonale hud krever opprettholdelse av en luft-væske-grensesnittet (ALI) over overflaten av vevet 3,6. Høyoppløselig live avbildning av mus embryonale huden har blitt hemmet av mangelen på en god metode som ikke bare opprettholder denne ALI men også lar kulturen å bli invertert, og derfor kompatibel med kort arbeidsavstand objektiv og mest confocal mikroskoper. Denne artikkelen beskriver de siste forbedringene til en method som bruker en gass-permeabel membran for å overvinne disse problemer og tillate høy oppløsning confocal avbildning av embryonale hud i ex vivo kultur 6.. Ved å bruke en melanoblast bestemt Cre-recombinase uttrykke muselinje kombinert med R26YFPR reporter linjen er vi i stand til å fluorescently merke melanoblast befolkningen innenfor disse hud kulturer. Teknikken tillater levende-avbildning av melanoblasts og observasjon av deres atferd og interaksjoner med vevet der de utvikler. Representative resultater er inkludert for å demonstrere evnen til å leve-bilde 6 kulturer i parallell.

Introduction

Tradisjonelt embryonale huden har blitt dyrket ved å dissekere fra mus embryo og montering på et polykarbonat Nuclepore membran. Membranen blir så fløtet på kulturmediet, og dermed opprettholde en luft-væske-grensesnittet over overflaten av det fremkallende tissue 3,4. Denne teknikken er blitt brukt for å bestemme melanoblast oppførsel ved å feste vevet og vurdering melanoblast fordeling ved hjelp β-galaktosidase som en markør 7.. Vi har utviklet en metode som gjør at levende-avbildning av fluorescensmerkede melanoblasts i ex vivo hud kultur seks. Her beskriver vi metoden i detalj fra disseksjon, å sette opp, for å leve confocal bildebehandling og inkluderer noen nye forbedringer.

Melanoblasts er de embryonale forløpere av melanocytter, cellene som produserer pigment i hår og hud. Oppstår Melanoblasts i neural crest tilstøtende til det nevrale røret på rundt embryonisk dag 9 (E9) i den tredje muse embryo. Deretter de vandrer langs en dorsolaterale svei mellom ektoderm og utviklings somites. På E12.5 flytter de fra dermis til epidermis hvor de sprer og fortsette sin vandring. Den primære hårsekken mønster begynner å danne i epidermis på E14.5 og ved E15.5 melanoblasts er lokalisere til disse folliklene. For en gjennomgang av melanoblast / melanocyte utvikling se Thomas & Erickson (2008) 1. For å merke melanoblast befolkningen har vi kombinert Tyr :: CREB dyr som uttrykker Cre-recombinase drevet av muse tyrosinase arrangøren 8 med R26YFPR dyr som uttrykker gul fluoriserende protein (YFP) betinget fra ROSA26 locus ni.

Vi beskriver en metode for å kultur embryonale hud og ta bilder ved hjelp av en invertert konfokal mikroskop. Den er tilpasset formen den opprinnelige metoden beskrevet i Mort et al. (2010) 6.. ForeliggendeMetoden tillater avbildning i en 6-brønns format og fjerner avhengighet av Nuclepore membraner og på matrigel å støtte kulturen. Istedenfor ved hjelp av en liten blokk med 1% agarose for å stabilisere den embryoniske huden. Fjerne avhengigheten matrigel er viktig, spesielt i situasjoner der responsen fra embryonale huden til løselige vekstfaktorer er fokus for studien. Vår opprinnelige metoden har allerede blitt brukt til å få ny innsikt i melanoblast utvikling 10-13 og vi forventer at de forbedringene vi beskriver her vil gjøre det mer kraftig som en eksperimentell teknikk spesielt der flere parallelle kulturer er et krav.

Protocol

Alle dyr arbeidet ble utført i henhold til institusjonelle retningslinjer under lisens av det britiske Home Office (prosjekt lisensnummer PPL 60/3785 og 60/4424). En. Forberedelse Merke melanoblasts i utviklings huden ved å kombinere en passende Cre-recombinase uttrykke mus tråd med et fluorescerende reporter mus linje. Tyr :: Crea, Tyr :: CREB 8 og Wnt1 :: Cre 14 har blitt brukt med hell som Cre-uttrykke linjer og R26YFPR ni</su…

Representative Results

Figur 2 viser representative resultater fra en tid forfalle eksperiment ved hjelp av embryonale hud fra Tyr :: CREB x R26YFPR embryoer ved E14.5. 6 embryonale hud kulturer ble fotografert ved konfokal mikroskopi hvert 2 min i 18 timer. Den freeware bildeanalyse programvarepakke ImageJ ble brukt til å analysere oppførselen til YFP-merket melanoblasts i de seks filmene. De melanoblasts var automatisk spores ved hjelp av wrMTrck plugin utviklet av Jesper Søndergaard Pedersen ( <a href="http://w…

Discussion

Vi beskriver en metode for å kultur embryonale hud som er PARTICULARITY mottagelig for live-cell imaging på omvendte confocal mikroskoper. Fremgangsmåten omfatter nylige forbedringer som tillater seks kulturene som skal bli avbildet i parallell og fjerner avhengighet av matrigel og Nuclepore membraner av den opprinnelige metoden til 6. Den avgjørende forskjell teknisk av lignende teknikker er bruk av en gass-permeabel membran lummox å etablere en luft-væske-grensesnittet, og også til å fungere som et …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Arbeidet ble støttet av kjernefinansiering fra Medical Research Council. Vi er takknemlige for Craig Nicol for å utarbeide tekniske tegninger. Vi er takknemlige for Matthew Pearson og Paul Perry for sin bildestøtte.

Materials

DMEM high glucose Biochrom AG F0475 without phenol red
Penicillin Sigma P3032
Streptomycin Sigma S9137
Fetal calf serum Hyclone SV30160.03
Glutamax Gibco 35050-038
Ethanol Generic
Live imaging chamber Custom made
Lummox dishes Sarstedt 94.6077.410
6-well plate Greiner Bio-One 657-160
Single edged razor blade Fisher Scientific 1244-3170
Agarose Biogene 300-300
Fine pastette Generic
PBS Generic
Kebab skewers Waitrose Bamboo BBQ skewers 30cm
Toothbrush Generic
Petri dishes Greiner Bio-One 633185
Suture thread Look SP115 Black silk suture thread

References

  1. Thomas, A. J., Erickson, C. A. The making of a melanocyte: the specification of melanoblasts from the neural crest. Pigment Cell & Melanoma Research. 21 (6), 598-610 (2008).
  2. Mayer, T. C. The migratory pathway of neural crest cells into the skin of mouse embryos. Developmental Biology. 34 (1), 39-46 (1973).
  3. Kashiwagi, M., Huh, N., Turksen, K. Organ Culture of Developing Mouse Skin and Its Application for Molecular Mechanistic Studies of Morphogenesis. Epidermal Cells: Methods and Protocols. 289, 39-45 (2005).
  4. Kashiwagi, M., Kuroki, T., Huh, N. Specific inhibition of hair follicle formation by epidermal growth factor in an organ culture of developing mouse skin. Developmental Biology. 189 (1), 22-32 (1997).
  5. Van Der Wel, L. I., Wei, L., Prens, E. P., Laman, J. D., Companjen, A. R. A modified ex vivo skin organ culture system for functional studies. Archives of Dermatological Research. 293 (4), 184-190 (2001).
  6. Mort, R. L., Hay, L., Jackson, I. J. Ex vivo live imaging of melanoblast migration in embryonic mouse skin. Pigment Cell & Melanoma Research. 23 (2), 299-301 (2010).
  7. Jordan, S. A. A., Jackson, I. J. J. MGF (KIT ligand) is a chemokinetic factor for melanoblast migration into hair follicles. Developmental Biology. 225 (2), 424-436 (2000).
  8. Delmas, V., Martinozzi, S., Bourgeois, Y., Holzenberger, M., Larue, L. Cre-mediated recombination in the skin melanocyte lineage. Genesis. 36 (2), 73-80 (2003).
  9. Srinivas, S., et al. Cre reporter strains produced by targeted insertion of EYFP and ECFP into the ROSA26 locus. BMC Developmental Biology. 1 (1), (2001).
  10. Li, A., et al. Rac1 Drives Melanoblast Organization during Mouse Development by Orchestrating Pseudopod. Driven Motility and Cell-Cycle Progression. Developmental Cell. 21 (4), 722-734 (2011).
  11. Li, A., et al. Activated Mutant NRas(Q61K) Drives Aberrant Melanocyte Signaling, Survival, and Invasiveness via a Rac1-Dependent Mechanism. The Journal of Investigative Dermatology. , 1-12 (2012).
  12. Schachtner, H., et al. Tissue inducible Lifeact expression allows visualization of actin dynamics in vivo and ex vivo. European Journal of Cell Biology. 91 (11-12), 923-929 (2012).
  13. Ma, Y., et al. Fascin 1 is transiently expressed in mouse melanoblasts during development and promotes migration and proliferation. Development. 140 (10), 2203-2211 (2013).
  14. Danielian, P. S., Muccino, D., Rowitch, D. H., Michael, S. K., McMahon, A. P. Modification of gene activity in mouse embryos in utero by a tamoxifen-inducible form of Cre recombinase. Current Biology. 8 (24), 1323-1326 (1998).
  15. Shea, K., Geijsen, N. Dissection of 6.5 dpc mouse embryos. Journal of Visualized Experiments. (2), (2007).
check_url/51352?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Mort, R. L., Keighren, M., Hay, L., Jackson, I. J. Ex vivo Culture of Mouse Embryonic Skin and Live-imaging of Melanoblast Migration. J. Vis. Exp. (87), e51352, doi:10.3791/51352 (2014).

View Video