Vi beskriver disseksjon og ex vivo kultur av muse embryonale hud. Kultursystemet opprettholder en luft-væske-grensesnittet over vevsoverflaten og tillater avbildning på et invertert mikroskop. Melanoblasts, en komponent i utviklings hud, er fluorescensmerkede slik at deres atferd for å bli observert ved hjelp konfokalmikroskopi.
Melanoblasts er neural crest avledet forløpere for melanocytter; cellene som er ansvarlige for produksjon av pigment i huden og håret. Melanoblasts migrere gjennom epidermis av embryoet hvor de senere kolonisere utvikle hårsekkene 1,2. Neural crest celle migrasjon er grundig studert in vitro, men in vivo metoder er fortsatt ikke godt utviklet, særlig i pattedyr systemer. Ett alternativ er å bruke ex vivo organotypic kultur 3-6. Kultur av muse-embryonale hud krever opprettholdelse av en luft-væske-grensesnittet (ALI) over overflaten av vevet 3,6. Høyoppløselig live avbildning av mus embryonale huden har blitt hemmet av mangelen på en god metode som ikke bare opprettholder denne ALI men også lar kulturen å bli invertert, og derfor kompatibel med kort arbeidsavstand objektiv og mest confocal mikroskoper. Denne artikkelen beskriver de siste forbedringene til en method som bruker en gass-permeabel membran for å overvinne disse problemer og tillate høy oppløsning confocal avbildning av embryonale hud i ex vivo kultur 6.. Ved å bruke en melanoblast bestemt Cre-recombinase uttrykke muselinje kombinert med R26YFPR reporter linjen er vi i stand til å fluorescently merke melanoblast befolkningen innenfor disse hud kulturer. Teknikken tillater levende-avbildning av melanoblasts og observasjon av deres atferd og interaksjoner med vevet der de utvikler. Representative resultater er inkludert for å demonstrere evnen til å leve-bilde 6 kulturer i parallell.
Tradisjonelt embryonale huden har blitt dyrket ved å dissekere fra mus embryo og montering på et polykarbonat Nuclepore membran. Membranen blir så fløtet på kulturmediet, og dermed opprettholde en luft-væske-grensesnittet over overflaten av det fremkallende tissue 3,4. Denne teknikken er blitt brukt for å bestemme melanoblast oppførsel ved å feste vevet og vurdering melanoblast fordeling ved hjelp β-galaktosidase som en markør 7.. Vi har utviklet en metode som gjør at levende-avbildning av fluorescensmerkede melanoblasts i ex vivo hud kultur seks. Her beskriver vi metoden i detalj fra disseksjon, å sette opp, for å leve confocal bildebehandling og inkluderer noen nye forbedringer.
Melanoblasts er de embryonale forløpere av melanocytter, cellene som produserer pigment i hår og hud. Oppstår Melanoblasts i neural crest tilstøtende til det nevrale røret på rundt embryonisk dag 9 (E9) i den tredje muse embryo. Deretter de vandrer langs en dorsolaterale svei mellom ektoderm og utviklings somites. På E12.5 flytter de fra dermis til epidermis hvor de sprer og fortsette sin vandring. Den primære hårsekken mønster begynner å danne i epidermis på E14.5 og ved E15.5 melanoblasts er lokalisere til disse folliklene. For en gjennomgang av melanoblast / melanocyte utvikling se Thomas & Erickson (2008) 1. For å merke melanoblast befolkningen har vi kombinert Tyr :: CREB dyr som uttrykker Cre-recombinase drevet av muse tyrosinase arrangøren 8 med R26YFPR dyr som uttrykker gul fluoriserende protein (YFP) betinget fra ROSA26 locus ni.
Vi beskriver en metode for å kultur embryonale hud og ta bilder ved hjelp av en invertert konfokal mikroskop. Den er tilpasset formen den opprinnelige metoden beskrevet i Mort et al. (2010) 6.. ForeliggendeMetoden tillater avbildning i en 6-brønns format og fjerner avhengighet av Nuclepore membraner og på matrigel å støtte kulturen. Istedenfor ved hjelp av en liten blokk med 1% agarose for å stabilisere den embryoniske huden. Fjerne avhengigheten matrigel er viktig, spesielt i situasjoner der responsen fra embryonale huden til løselige vekstfaktorer er fokus for studien. Vår opprinnelige metoden har allerede blitt brukt til å få ny innsikt i melanoblast utvikling 10-13 og vi forventer at de forbedringene vi beskriver her vil gjøre det mer kraftig som en eksperimentell teknikk spesielt der flere parallelle kulturer er et krav.
Vi beskriver en metode for å kultur embryonale hud som er PARTICULARITY mottagelig for live-cell imaging på omvendte confocal mikroskoper. Fremgangsmåten omfatter nylige forbedringer som tillater seks kulturene som skal bli avbildet i parallell og fjerner avhengighet av matrigel og Nuclepore membraner av den opprinnelige metoden til 6. Den avgjørende forskjell teknisk av lignende teknikker er bruk av en gass-permeabel membran lummox å etablere en luft-væske-grensesnittet, og også til å fungere som et …
The authors have nothing to disclose.
Arbeidet ble støttet av kjernefinansiering fra Medical Research Council. Vi er takknemlige for Craig Nicol for å utarbeide tekniske tegninger. Vi er takknemlige for Matthew Pearson og Paul Perry for sin bildestøtte.
DMEM high glucose | Biochrom AG | F0475 | without phenol red |
Penicillin | Sigma | P3032 | |
Streptomycin | Sigma | S9137 | |
Fetal calf serum | Hyclone | SV30160.03 | |
Glutamax | Gibco | 35050-038 | |
Ethanol | Generic | ||
Live imaging chamber | Custom made | ||
Lummox dishes | Sarstedt | 94.6077.410 | |
6-well plate | Greiner Bio-One | 657-160 | |
Single edged razor blade | Fisher Scientific | 1244-3170 | |
Agarose | Biogene | 300-300 | |
Fine pastette | Generic | ||
PBS | Generic | ||
Kebab skewers | Waitrose | Bamboo BBQ skewers 30cm | |
Toothbrush | Generic | ||
Petri dishes | Greiner Bio-One | 633185 | |
Suture thread | Look | SP115 | Black silk suture thread |