Summary

Organotypic skive kulturer til å studere oligodendrocyte Dynamics og myelinisering

Published: August 25, 2014
doi:

Summary

A technique to study NG2 cells and oligodendrocytes using a slice culture system of the forebrain and cerebellum is described. This method allows examination of the dynamics of proliferation and differentiation of cells within the oligodendrocyte lineage where the extracellular environment can be easily manipulated while maintaining tissue cytoarchitecture.

Abstract

NG2 uttrykkende celler (polydendrocytes, oligodendrocyte forløper-celler) er de fjerde store glial cellepopulasjon i det sentrale nervesystemet. Under embryonal og postnatal utvikling de aktivt spre og generere myelinating oligodendrocytter. Disse cellene har ofte vært studert i primær dissosiert kulturer, nevroner cocultures, og i fast vev. Bruke nylig tilgjengelige transgene mus linjer skive kultur-systemer kan brukes til å undersøke spredning og differensiering av oligodendrocyte avstamning celler i både grå og hvit substans regioner av brain og lillehjernen. Skive kulturer er forberedt fra tidlig postnatal mus og holdes i kultur i opptil 1 måned. Disse skiver kan avbildes flere ganger i løpet av kulturen for å undersøke cellulær oppførsel og interaksjoner. Denne metoden gjør det mulig visualisering av NG2 celledeling og trappene til oligodendrocyte differensiering samtidig som detaljert analyse av region-avhengigeent NG2 celle og oligodendrocyte funksjonelle heterogenitet. Dette er en kraftfull teknikk som kan brukes for å undersøke de indre og ytre signaler som påvirker disse cellene med tiden, i et cellulært miljø som er svært lik den som finnes in vivo.

Introduction

Organoytpic skive kulturer i det sentrale nervesystemet har vist seg å være svært nyttig for å studere nervecellen og glial cellebiologi i en semiintact system 1 – 4. Disse kulturene er relativt enkle å adoptere og beholde mange fordelene med primær dissociated cellekulturer som manipulering av det ekstracellulære miljøet og enkel tilgang for gjentatt langsiktig levende celle bildebehandling og elektrofysiologiske opptak 5-9. I tillegg skive kulturer opprett 3-dimensjonale vev cytoarchitecture, regional neural-tilkobling, og de fleste store celletyper som er tilstede i systemet. Disse egenskapene gjør disse kulturene et unikt og praktisk system for å undersøke enkelt celle atferd og fysiologi med mobilnettet og miljømessige interaksjoner.

NG2 celler er en befolkning på gliacellene i pattedyrs sentrale nervesystemet som fortsetter å spre seg og generere myelinating oligodendrocytter under embryonal og postnatal utvikling 10. De har blitt grundig studert i dissosiert primære cellekulturer, og ny utvikling av transgene mus linjer med NG2 celle-spesifikke uttrykk for fluorescerende proteiner har tilrettelagt in vivo skjebne kartlegging og elektrofysiologiske opptak i akutte slice forberedelser. Selv med disse studiene, er lite kjent om de timelige dynamikken i NG2 celleproliferasjon og oligodendrocyte differensiering. Selv dissosierte cellekultur er mye brukt for den relative innretningen i farmakologiske og genetiske manipulasjoner, er det ikke egnet for utspørrende funksjonelle forskjeller i disse celler i forskjellige områder av hjernen, spesielt når det er ønskelig å opprettholde sammenhengen av det cellulære mikromiljø. Skive kulturer gir en enkel alternativ som er mottagelig for farmakologiske manipulasjoner og har blitt brukt til å undersøke oligodendrocyte myelinisering 11,12, celleular respons etter Lysolecitin (LPC) eller antistoff indusert demyelination 13,14, og induksjon av remyelination via farmakologisk behandling 15.

En metode for å undersøke og opptre live bildebehandling og fast vev (eller postfixation) analyse av NG2 celleproliferasjon og oligodendrocyte differensiering i organotypic skive kulturer tatt fra både brain og lillehjernen er beskrevet. Dette er en effektiv metode som kan brukes til å studere den celle skjebnen til enkelt NG2 celler etter delingen 16 og for å oppdage region-og aldersavhengige forskjeller i vekstfaktor indusert NG2 celleproliferasjon 17. Denne relativt enkle teknikk er allment tilgjengelig for videre undersøke celle iboende og / eller miljø mekanismene som regulerer fysiologien av disse gliaceller og deres respons for neuronal aktivitet eller myelin skade.

Protocol

MERK: Alle dyr prosedyrer følger retningslinjene og har blitt godkjent av Institutional Animal Care og bruk komité (IACUC) ved University of Connecticut. MERK: For disse eksperimentene konstitutive NG2cre 18 (JAX # 008533) og induserbare NG2creER 16 (JAX # 008538) transgene mus krysset til Z / EG 19 (JAX # 003920) eller gtRosa26: YFP reporter 20 (JAX # 006148) linjer henholdsvis ble brukt til bilde NG2 celler og deres avkom. Til bilde modne oligodendrocytter ble PLPDsRed transgene mus <s…

Representative Results

Eksempler på representative data er gitt nedenfor som er oppnådd ved bruk skive kulturer fra både brain og lillehjernen av P8 NG2cre: ZEG, NG2creER: YFP og PLPDsRed transgene mus linjer. NG2 celler kan avbildes over dager i forhjerne og lillehjernen skiver (figur 1B-D, Video 1) og fenotype av disse cellene kan bestemmes etter fiksering og farging med NG2 og CC1 antistoffer (Figur 1E). I tillegg til live bildebehandling, kan celleproliferasjon også vurderes ved hjelp av immunhistokje…

Discussion

Myelinisering i sentralnervesystemet er vesentlig for effektiv kommunikasjon og aksonal neuronal overlevelse 22. NG2 celler produseres kontinuerlig myelinating oligodendrocytter inn i voksenlivet og samtidig opprettholde en fastboende befolkning i de fleste områder av hjernen 16,23 – 25. Noen genetiske og molekylære mekanismene som regulerer differensiering av disse cellene er blitt beskrevet, men mye gjenstår å bli oppdaget. Organotypic skive kulturer er et praktisk verktøy for å undersøke …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was funded by grants from the National Multiple Sclerosis Society (RG4179 to A.N.), the National Institutes of Health (NIH R01NS073425 and R01NS074870 to A.N.) and the National Science Foundation (A.N.). We thank Dr. Frank Kirchhoff (University of Saarland, Homburg Germany) for providing PLPDsRed transgenic mice. We thank Youfen Sun for her assistance in maintaining the transgenic mouse colony.

Materials

Slice Culture Medium
Minimum Essential Medium Invitrogen 11090 50%
Hank’s Balanced Salt Solution Invitrogen 14175 25%
HEPES Sigma-Aldrich H-4034 25mM
L-Glutamine Invitrogen 25030 1mM
Insulin Sigma-Aldrich I6634 1mg/L
Ascorbic Acid Sigma-Aldrich A-0278 0.4mM
Horse Serum Hyclone SH30074.03 25%
Titrate to pH 7.22 with NaOH, filter with bottle top filter, and store at 4 degrees Celsius
Dissection Buffer
NaCl Sigma-Aldrich S3014 124mM
KCl Sigma-Aldrich P5405 3.004mM
KH2PO4 Sigma-Aldrich P5655 1.25mM
MgSO4 (anhydrous) Sigma-Aldrich M7506 4.004mM
CaCl2 2H2O Sigma-Aldrich C7902 2mM
NaHCO3 Sigma-Aldrich S5761 26mM
D-(+)-Glucose Sigma-Aldrich G7021 10mM
Ascorbic Acid Sigma-Aldrich A-0278 2.0mM
Adenosine Sigma-Aldrich A4036 0.075mM
Filter with bottle top filter and store at 4 degrees Celsius, oxygenate with 95%O2 5%CO2 before use
Other Reagents and Supplies
4-hydroxy tamoxifen (4OHT) Sigma-Aldrich H7904 100nM
Paraformaldehyde (PFA) EM Sciences 19200 4%
L-Lysine Sigma-Aldrich L-6027 0.1M
Sodium Metaperiodate Sigma-Aldrich S-1878 0.01M
Rabbit anti NG2 antibody Chemicon (Millipore) AB5320 1:500
Mouse anti CC1 antibody Calbiochem (Millipore) OP80 1:200
Mouse anti Ki67 antibody Vision Biosystems NCL-Ki67-MM1 1:300
Mouse anti NeuN antibody Chemicon (Millipore) MAB377 1:500
Species specific secondary antibodies Jackson Immunoresearch
Normal Goat Serum (NGS) 5%
Triton X-100 0.10%
Mounting medium with DAPI Vector Labs H-1200
Millicell culture membrane inserts 0.45μm pore size Fisher Scientific PICM03050
Bottle top filters Fisher Scientific 09-740-25E
Ethanol
95% O2 5% CO2 gas mix
Phosphate Buffered Saline (PBS)
Sterile six well plates
Dissecting (hippocampal) or weighing spatulas
Manual or automatic tissue chopper
Razor blades
Disposable transfer pipettes
35mm and 60mm sterile Petri dishes
Stereomicroscope
Inverted Phase Microscope
Laminar Flow Hood
Tissue Culture Incubator
Inverted Fluorescence Microcope

References

  1. Stoppini, L., Buchs, P. A., Muller, D. A simple method for organotypic cultures of nervous tissue. Journal of Neuroscience Methods. 37 (2), (1991).
  2. Gogolla, N., Galimberti, I., DePaola, V., Caroni, P. Preparation of organotypic hippocampal slice cultures for long-term live imaging. Nature Protocols. 1 (3), 1165-1171 (2006).
  3. Gähwiler, B. H., Capogna, M., Debanne, D., McKinney, R. A., Thompson, S. M. Organotypic slice cultures: a technique has come of age. Trends in Neurosciences. 20 (10), 471-477 (1997).
  4. Yamamoto, N., Kurotani, T., Toyama, K. Neural connections between the lateral geniculate nucleus and visual cortex in vitro. Science. 245 (4914), 192-194 (1989).
  5. Bahr, B. A., Kessler, M., et al. Stable maintenance of glutamate receptors and other synaptic components in long-term hippocampal slices. Hippocampus. 5 (5), 425-439 (1995).
  6. Noctor, S. C., Flint, A. C., Weissman, T. A., Dammerman, R. S., Kriegstein, A. R. Neurons derived from radial glial cells establish radial units in neocortex. Nature. 409 (6821), 714-720 (2001).
  7. Noctor, S. C., Martínez-Cerdeño, V., Ivic, L., Kriegstein, A. R. Cortical neurons arise in symmetric and asymmetric division zones and migrate through specific phases. Nature Neuroscience. 7 (2), (2004).
  8. Kapfhammer, J. P., Gugger, O. S. The analysis of purkinje cell dendritic morphology in organotypic slice cultures. Journal of Visualized Experiments JoVE. (61), (2012).
  9. Elias, L., Kriegstein, A. Organotypic slice culture of E18 rat brains. Journal of Visualized Experiments JoVE. (6), e235 (2007).
  10. Nishiyama, A., Komitova, M., Suzuki, R., Zhu, X. Polydendrocytes (NG2 cells): multifunctional cells with lineage plasticity. Nature Reviews Neuroscience. 10 (1), 9-22 (2009).
  11. Haber, M., Vautrin, S., Fry, E. J., Murai, K. K. Subtype-specific oligodendrocyte dynamics in organotypic culture. Glia. 57 (9), 1000-1013 (2009).
  12. Bin, J. M., Leong, S. Y., Bull, S. -. J., Antel, J. P., Kennedy, T. E. Oligodendrocyte precursor cell transplantation into organotypic cerebellar shiverer slices: a model to study myelination and myelin maintenance. PloS one. 7 (7), (2012).
  13. Birgbauer, E., Rao, T. S., Webb, M. Lysolecithin induces demyelination in vitro in a cerebellar slice culture system. Journal of Neuroscience Research. 78 (2), 157-166 (2004).
  14. Harrer, M. D., von Budingen, H. C., et al. Live imaging of remyelination after antibody-mediated demyelination in an ex model for immune mediated CNS damage. Experimental Neurology. 216 (2), 431-438 (2009).
  15. Fancy, S. P. J., Harrington, E. P., et al. Axin2 as regulatory and therapeutic target in newborn brain injury and remyelination. Nature Neuroscience. 14 (8), 1009-1016 (2011).
  16. Zhu, X., Hill, R. A., Dietrich, D., Komitova, M., Suzuki, R., Nishiyama, A. Age-dependent fate and lineage restriction of single NG2 cells. Development. 138 (4), 745-753 (2011).
  17. Hill, R. A., Patel, K. D., Medved, J., Reiss, A. M., Nishiyama, A. NG2 Cells in White Matter But Not Gray Matter Proliferate in Response to PDGF. Journal of Neuroscience. 33 (36), 14558-14566 (2013).
  18. Zhu, X., Bergles, D. E., Nishiyama, A. NG2 cells generate both oligodendrocytes and gray matter astrocytes. Development. 135 (1), 145-157 (2008).
  19. Novak, A., Guo, C., Yang, W., Nagy, A., Lobe, C. G. Z/EG, a double reporter mouse line that expresses enhanced green fluorescent protein upon Cre-mediated excision. Genesis. 28 (3-4), 147-155 (2000).
  20. Soriano, P. Generalized lacZ expression with the ROSA26 Cre reporter strain. Nature Genetics. 21 (1), 70-71 (1999).
  21. Hirrlinger, P. G., Scheller, A., et al. Expression of reef coral fluorescent proteins in the central nervous system of transgenic mice. Molecular and Cellular Neuroscience. 30 (3), 291-303 (2005).
  22. Nave, K. -. A. Myelination and support of axonal integrity by glia. Nature. 468 (7321), 244-252 (2010).
  23. Rivers, L. E., Young, K. M., et al. PDGFRA/NG2 glia generate myelinating oligodendrocytes and piriform projection neurons in adult mice. Nature Neuroscience. 11 (12), 1392-1401 (2008).
  24. Dimou, L., Simon, C., Kirchhoff, F., Takebayashi, H., Gotz, M. Progeny of Olig2-expressing progenitors in the gray and white matter of the adult mouse cerebral cortex. The Journal of Neuroscience. 28 (41), 10434-10442 (2008).
  25. Kang, S. H., Fukaya, M., Yang, J. K., Rothstein, J. D., Bergles, D. E. NG2+ CNS glial progenitors remain committed to the oligodendrocyte lineage in postnatal life and following neurodegeneration. Neuron. 68 (4), 668-681 (2010).
  26. Ioannidou, K., Anderson, K. I., Strachan, D., Edgar, J. M., Barnett, S. C. Time-lapse imaging of the dynamics of CNS glial-axonal interactions in vitro and ex vivo. PloS one. 7 (1), e30775 (2012).
  27. Ghoumari, A. M., Baulieu, E. E., Schumacher, M. Progesterone increases oligodendroglial cell proliferation in rat cerebellar slice cultures. Neuroscience. 135 (1), 47-58 (2005).
  28. Azim, K., Butt, A. M. GSK3β negatively regulates oligodendrocyte differentiation and myelination in vivo. Glia. 59 (4), 540-553 (2011).
  29. Hussain, R., El-Etr, M., et al. Progesterone and nestorone facilitate axon remyelination: a role for progesterone receptors. Endocrinology. 152 (10), 3820-3831 (2011).
  30. Pampaloni, F., Reynaud, E. G., Stelzer, E. H. K. The third dimension bridges the gap between cell culture and live tissue. Nature Reviews. Molecular Cell Biology. 8 (10), 839-845 (2007).
  31. Lubetzki, C., Demerens, C., et al. Even in culture, oligodendrocytes myelinate solely axons. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 90 (14), 6820-6824 (1993).
  32. Demerens, C., Stankoff, B., et al. Induction of myelination in the central nervous system by electrical activity. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 93 (18), 9887-9892 (1996).
  33. Wood, P. M., Bunge, R. P. Evidence that sensory axons are mitogenic for Schwann cells. Nature. 256 (5519), 662-664 (1975).
  34. Stevens, B., Tanner, S., Fields, R. D. Control of myelination by specific patterns of neural impulses. The Journal of Neuroscience. 18 (22), 9303-9311 (1998).
  35. Stevens, B., Porta, S., Haak, L. L., Gallo, V., Fields, R. D. Adenosine: a neuron-glial transmitter promoting myelination in the CNS in response to action potentials. Neuron. 36 (5), 855-868 (2002).
  36. Wake, H., Lee, P. R., Fields, R. D. Control of local protein synthesis and initial events in myelination by action potentials. Science. 333 (6049), 1647-1651 (2011).
  37. Rosenberg, S. S., Kelland, E. E., Tokar, E., De la Torre, A. R., Chan, J. R. The geometric and spatial constraints of the microenvironment induce oligodendrocyte differentiation. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 105 (38), 14662-14667 (2008).
check_url/51835?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Hill, R. A., Medved, J., Patel, K. D., Nishiyama, A. Organotypic Slice Cultures to Study Oligodendrocyte Dynamics and Myelination. J. Vis. Exp. (90), e51835, doi:10.3791/51835 (2014).

View Video