Summary

Self-samling af komplekse Todimensionale Former fra Single DNA Fliser

Published: May 08, 2015
doi:

Summary

DNA tiling is an effective approach to make programmable nanostructures. We describe the protocols to construct complex two-dimensional shapes by the self-assembly of single-stranded DNA tiles.

Abstract

Current methods in DNA nano-architecture have successfully engineered a variety of 2D and 3D structures using principles of self-assembly. In this article, we describe detailed protocols on how to fabricate sophisticated 2D shapes through the self-assembly of uniquely addressable single-stranded DNA tiles which act as molecular pixels on a molecular canvas. Each single-stranded tile (SST) is a 42-nucleotide DNA strand composed of four concatenated modular domains which bind to four neighbors during self-assembly. The molecular canvas is a rectangle structure self-assembled from SSTs. A prescribed complex 2D shape is formed by selecting the constituent molecular pixels (SSTs) from a 310-pixel molecular canvas and then subjecting the corresponding strands to one-pot annealing. Due to the modular nature of the SST approach we demonstrate the scalability, versatility and robustness of this method. Compared with alternative methods, the SST method enables a wider selection of information polymers and sequences through the use of de novo designed and synthesized short DNA strands.

Introduction

Forrige nukleinsyre saml-selv arbejde 1-25 har ført til en vellykket opførelse af en bred vifte af komplekse strukturer, herunder DNA 2 – 5,8,10 – 13,17,23 eller RNA 7,22 periodiske 3,4,7, 22 og algoritmisk 5 todimensionale gitre, bånd 10,12 og slanger 4,12,13, 3D krystaller 17, polyedre 11 og finite, 2D former 7,8. En særlig effektiv metode afstivet DNA origami, hvorved en enkelt stillads streng foldes ved mange korte hjælpestoffer korte strenge til dannelse af et kompleks form 9,14 – 16,18 – 21,25.

Vi har for nylig rapporteret en metode til konstruktion af diskrete nanostrukturer med foreskrevne 2D figurer ved hjælp af enkelt-strengede fliser (SST), og demonstrerede strukturer med kompleksitet kan sammenlignes med DNA origami 26. Denne article er en tilpasning af vores tidligere arbejde 26 og beskriver detaljeret protokoller til at arrangere individuelt adresserbare SSTS i sofistikerede finite 2D figurer med præcist foreskrevne dimensioner (bredder og længder) og morfologier. En vigtig fordel ved SST metoden er dens modulopbygning. Hver komponent SST af en struktur fungerer som en modulopbygget enhed i forsamlingen, og forskellige delgrupper i disse SSTS producerer forskellige former. Således har vi etableret en generel platform til at konstruere nanostrukturer med foreskrevne størrelser og former fra korte, syntetiske DNA-strenge.

SSTS indeholder fire domæner, der hver 10 eller 11 nukleotider lang (figur 1A). De SSTS binder således, at deres parallelle helixer skabe en DNA gitter holdes sammen af ​​crossover-bindinger. Hver crossover er phosphatet mellem domænerne 2 og 3. phosphat strækkes kunstigt i diagrammerne for visuel klarhed. De delefiltre er fordelt to spiralformede drejninger (21 baser) fra hinanden (<strong> Figur 1B). De sammensatte rektangler er ved deres dimensioner, der er nævnt i antallet af spiraler og spiralformede sving. For eksempel, at et rektangel er seks helices bred og otte spiralformede vender længe er opført som et 6H × 8T rektangel. SSTS kan udelades, tilføjede, eller på anden måde omarrangeret til at skabe strukturer af vilkårlige former og størrelser (figur 1C). For eksempel kan et rektangulært design rulles til et rør med en ønsket længde og radius (figur 1D).

Alternativt kan den rektangulære SST gitter ses som en molekylær lærred består af SST pixels, hver 3 nm med 7 nm. I denne undersøgelse, bruger vi en molekylær lærred af 310 fuld længde interne SSTS, 24 fuld længde SSTS udgør de venstre og højre grænser, og 28 halvlange SSTS danner de øverste og nederste grænser. Lærredet har 24 dobbeltspiraler forbundet af delefiltre, og hver helix indeholder 28 spiralformede drejninger (294 baser) og er derfor omtalt som24 timer i × 28T rektangulære lærred. Den 24H × 28T lærred har en molekylvægt svarende til den af ​​en DNA origami struktur skabt ud fra en M13-fag stillads.

Protocol

1. DNA Sequence Design Brug UNIQUIMER software 27 at designe en SST-finite struktur ved at angive antallet af dobbeltspiraler, længder af top og bund helix for hver dobbelt helix, og crossover mønster for at skabe en 24H × 28T lærred. Når du har defineret disse parametre, er den overordnede arkitektur (streng komposition og komplementariteten aftale) illustreret grafisk i programmet. Generere sekvenser for de strenge af den angivne struktur for at opfylde komplementaritet arrangement…

Representative Results

Den selvsamling af SSTS (figur 1) vil give en 24H × 28T rektangel, som illustreret i figur 2. DNA-sekvenser for de forskellige SSTS kan modificeres / optimeret til at muliggøre streptavidin mærkning (figur 3 og 4), omdannelsen af en rektangel til et rør (figur 5), den programmerbare selvsamling af SSTS til dannelse rør og rektangler af varierende størrelser (figur 10), og opførelsen af 2D vilkårlige former ved h…

Discussion

I strukturen dannelse trin, er det vigtigt at holde en passende koncentration af magnesium kationer (f.eks., 15 mM) i DNA-strengen blanding selvstændige samle DNA nanostrukturer. Ligeledes i agarosegelen karakterisering / oprensningstrin, er det vigtigt at holde en passende magnesium kation koncentration (f.eks., 10 mM) i gelen og gelen kørende buffer til at opretholde de DNA nanostrukturer under elektroforese. For 24H × 28T rektangel struktur, testede vi annealing i forskellige Mg ++ kon…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbejde blev finansieret af Kontoret for Naval Research Young Investigator Program Award N000141110914, Office of Naval Research Grant N000141010827, NSF KARRIERE Award CCF1054898, NIH direktørens New Innovator Award 1DP2OD007292 og Wyss Instituttet for Biologisk Inspireret Engineering Faculty Startup Fund (til PY), og Tsinghua-Peking Center for Life Sciences Startup Fund (til BW).

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
DNA Strands  Integrated DNA Technology Section 3.1
SYBR Safe DNA gel stain Invitrogen S33102 Section 3.4.2
Freeze'N Squeeze DNA Gel Extraction Spin Columns BIO-RAD 731-6166 Section 3.6
Bruker's Sharp Nitride Lever Probes Bruker AFM Probes SNL10 Section 4.3
Safe Imager 2.0 Blue Light Transilluminator Invitrogen G6600 Section 3.6
Centrifuge 5430R Eppendorf 5428 000.414 Section 3.6
Transmission Electron Microscope  Jeol Jem 1400 Section 7.4
Multimode 8 Veeco Section 4
Typhoon FLA 9000 Laser Scanner GE Heathcare Life Sciences 28-9558-08 Section 3.5
Ultrapure Distilled water Invitrogen 10977-023 Section 3.7.1
Mica disk SPI Supplies 12001-26-2 Section 4.1
Steel mounting disk Ted Pella, Inc. 16218 Section 4.1
carbon coated copper grid for TEM Electron Microscopy Sciences FCF400-Cu Section 7.2
tweezers Dumont 0203-N5AC-PO Section 7.31
glow discharge system Quorum Technologies K100X Section 7.2
DNA Engine Tetrad 2 Peltier Thermal Cycler BIO-RAD PTC–0240G Section 3.3
Owl Easycast B2 Mini Gel Electrophoresis Systems ThermoScientific B2 Section 3.4.3
Seekam LE Agarose 500G Lonza 50004 Section 3.4.1
GeneRuler 1kb Plus DNA Ladder, Ready-To-Use 75-20000bp ThermoScientific SM1333 Section 3.4.4
Nanodrop 2000c UV-vis Spectrophotometer ThermoScientific Section 3.7
0.2 um filter Corning Inc. 431219 Section 7.1.2

References

  1. Seeman, N. C. Nucleic acid junctions and lattices. J. Theor. Biol. 99 (2), 237-247 (1982).
  2. Fu, T. J., Seeman, N. C. DNA double-crossover molecules. Biochemistry. 32 (13), 3211-3220 (1993).
  3. Winfree, E., Liu, F., Wenzler, L. A., Seeman, N. C. Design and self-assembly of two-dimensional DNA crystals. Nature. 394 (6693), 539-544 (1998).
  4. Yan, H., Park, S. H., Finkelstein, G., Reif, J. H., LaBean, T. H. DNA-templated self-assembly of protein arrays and highly conductive nanowires. Science. 301 (5641), 1882-1884 (2003).
  5. Rothemund, P. W. K., Papadakis, N., Winfree, E. Algorithmic self-assembly of DNA Sierpinski triangles. PLoS Biol. 2 (12), e424 (2004).
  6. Shih, W., Quispe, J., Joyce, G. A 1.7-kilobase single-stranded DNA that folds into a nanoscale octahedron. Nature. 427 (6975), 618-621 (2004).
  7. Chworos, A., et al. Building programmable jigsaw puzzles with RNA. Science. 306 (5704), 2068-2072 (2004).
  8. Park, S. H., et al. Finite-size, fully-addressable DNA tile lattices formed by hierarchical assembly procedures. Angew. Chem. Int. Ed. 45 (5), 735-739 (2006).
  9. Rothemund, P. W. K. Folding DNA to create nanoscale shapes and patterns. Nature. 440 (7082), 297-302 (2006).
  10. Schulman, R., Winfree, E. Synthesis of crystals with a programmable kinetic barrier to nucleation. Proc. Natl Acad. Sci. USA. 104 (39), 15236-15241 (2007).
  11. He, Y., et al. Hierarchical self-assembly of DNA into symmetric supramolecular polyhedra. Nature. 452 (7184), 198-201 (2008).
  12. Yin, P., et al. Programming DNA tube circumferences. Science. 321 (5890), 824-826 (2008).
  13. Sharma, J., et al. Control of self-assembly of DNA tubules through integration of gold nanoparticles. Science. 323 (5910), 112-116 (2009).
  14. Douglas, S. M., Dietz, H., Liedl, T., Högberg, B., Graf, F., Shih, W. M. Self-assembly of DNA into nanoscale three-dimensional shapes. Nature. 459 (7245), 414-418 (2009).
  15. Andersen, E. S., et al. Self-assembly of a nanoscale DNA box with a controllable lid. Nature. 459 (7243), 73-76 (2009).
  16. Dietz, H., Douglas, S. M., Shih, W. M. Folding DNA into twisted and curved nanoscale shapes. Science. 325 (5941), 725-730 (2009).
  17. Zheng, J. P., et al. From molecular to macroscopic via the rational design of self-assembled 3D. DNA crystal. Nature. 461 (7260), 74-77 (2009).
  18. Han, D., et al. DNA origami with complex curvatures in three-dimensional space. Science. 332 (6024), 342-346 (2011).
  19. Liu, W., Zhong, H., Wang, R., Seeman, N. C. Crystalline two-dimensional DNA origami arrays. Angew. Chem. Int. Ed. 50 (1), 264-267 (2011).
  20. Zhao, Z., Liu, Y., Yan, H. Organizing DNA origami tiles into larger structures using preformed scaffold frames. Nano Lett. 11 (7), 2997-3002 (2011).
  21. Woo, S., Rothemund, P. Programmable molecular recognition based on the geometry of DNA nanostructures. Nat. Chem. 3 (8), 620-627 (2011).
  22. Delebecque, C. J., Lindner, A. B., Silver, P. A., Aldaye, F. A. Organization of intracellular reactions with rationally designed RNA assemblies. Science. 333 (6041), 470-474 (2011).
  23. Lin, C., Liu, Y., Rinker, S., Yan, H. DNA tile based self-assembly: building complex nanoarchitectures. ChemPhysChem. 7 (8), 1641-1647 (2006).
  24. Seeman, N. C. Nanomaterials based on DNA. Annu. Rev. Biochem. 79 (1), 65-87 (2010).
  25. Voigt, N. V., Nangreave, J., Yan, H., Gothelf, K. V. DNA origami: a quantum leap for self-assembly of complex structures. Chem. Soc. Rev. 40 (12), 5636-5646 (2011).
  26. Wei, B., Dai, M., Yin, P. Complex Shapes self-assembled from single stranded DNA tiles. Nature. 485 (7400), 623-626 (2012).
  27. Wei, B., Wang, Z., Mi, Y. Uniquimer: software of de novo DNA sequence generation for DNA self-assembly: an introduction and the related applications in DNA self-assembly. J. Comput. Theor. Nanosci. 4 (1), 133-141 (2007).
  28. Seeman, N. C. De novo design of sequences for nucleic acid structural engineering. J. Biomol. Struct. Dyn. 8 (3), 573-581 (1990).
  29. Hansma, H. G., Laney, D. E. DNA binding to mica correlates with cationic radius: assay by atomic force microscopy. Biophys. J. 70 (4), 1933-1939 (1996).
  30. Seelig, G., Soloveichik, D., Zhang, D. Y., Winfree, E. Enzyme-free nucleic acid logic circuits. Science. 314 (5805), 1585-1588 (2006).
  31. Yin, P., Choi, H. M. T., Calvert, C. R., Pierce, N. A. Programming biomolecular self-assembly pathways. Nature. 451 (7176), 318-322 (2008).
check_url/52486?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Wei, B., Vhudzijena, M. K., Robaszewski, J., Yin, P. Self-assembly of Complex Two-dimensional Shapes from Single-stranded DNA Tiles. J. Vis. Exp. (99), e52486, doi:10.3791/52486 (2015).

View Video