Summary

Selvbygging av komplekse Todimensjonale figurer fra Single DNA Fliser

Published: May 08, 2015
doi:

Summary

DNA tiling is an effective approach to make programmable nanostructures. We describe the protocols to construct complex two-dimensional shapes by the self-assembly of single-stranded DNA tiles.

Abstract

Current methods in DNA nano-architecture have successfully engineered a variety of 2D and 3D structures using principles of self-assembly. In this article, we describe detailed protocols on how to fabricate sophisticated 2D shapes through the self-assembly of uniquely addressable single-stranded DNA tiles which act as molecular pixels on a molecular canvas. Each single-stranded tile (SST) is a 42-nucleotide DNA strand composed of four concatenated modular domains which bind to four neighbors during self-assembly. The molecular canvas is a rectangle structure self-assembled from SSTs. A prescribed complex 2D shape is formed by selecting the constituent molecular pixels (SSTs) from a 310-pixel molecular canvas and then subjecting the corresponding strands to one-pot annealing. Due to the modular nature of the SST approach we demonstrate the scalability, versatility and robustness of this method. Compared with alternative methods, the SST method enables a wider selection of information polymers and sequences through the use of de novo designed and synthesized short DNA strands.

Introduction

Forrige nukleinsyre selvmonteringsarbeid 1-25 har ført til en vellykket bygging av en rekke komplekse strukturer, inkludert DNA 2 – 5,8,10 – 13,17,23 eller RNA 7,22 periodisk 3,4,7, 22 og algoritmisk 5 todimensjonale innhegninger, bånd 10,12 og rør 4,12,13, 3D krystaller 17, polyedre 11 og endelig, former 2D 7,8. En spesielt effektiv fremgangsmåte er stillaset DNA origami, hvorved en enkelt stillas tråd brettes av mange korte hjelpe stift strengene for å danne et kompleks form 9,14 – 16,18 – 21,25.

Vi har nylig rapportert en metode for å konstruere diskrete nanostrukturer med fastsatte 2D figurer ved hjelp av enkelt-strandet fliser (SST), og demonstrerte strukturer med kompleksitet sammenlignes med DNA origami 26. Dette article er en tilpasning av vår tidligere arbeidet 26 og beskriver detaljert protokoller for å arrangere individuelt adresser SSTS til sofistikerte endelig 2D figurer med nettopp foreskrevet dimensjoner (bredder og lengder) og morfologi. En viktig fordel med SST metoden er dens modularitet. Hver komponent SST av en struktur fungerer som en modulær konstruksjon enhet i forsamlingen, og ulike undergrupper av disse SSTS produsere forskjellige former. Dermed etablerte vi en generell plattform for å bygge nanostrukturer med foreskrevet størrelser og former fra korte, syntetiske DNA-trådene.

SSTS inneholde fire domener, hver 10 eller 11 nukleotider lang (Figur 1a). De SSTS binde slik at deres parallelle spiraler lage en DNA gitter holdt sammen av crossover bindinger. Hver crossover er fosfat mellom domenene 2 og 3. fosfat strekkes kunstig i diagrammene for visuell klarhet. Crossovers er plassert to skrueviklinger (21 baser) fra hverandre (<strong> Figur 1B). De sammensatte rektangler er referert til ved sine dimensjoner i antall helikser og skrueviklinger. For eksempel, et rektangel som er seks heliksene bred og åtte skrueviklinger lenge er referert til som en 6 H x 8T rektangel. SSTS kan bli tatt ut, lagt til, eller på annen måte omdisponeres til å skape strukturer av vilkårlige former og størrelser (figur 1C). For eksempel kan en rektangulær utforming bli rullet til et rør med en ønsket lengde og radius (figur 1D).

Alternativt kan den rektangulære SST gitteret bli sett på som en molekylær lerret består av SST piksler, hver 3 nm med 7 nm. I denne studien bruker vi en molekylær lerret av 310 helaftens interne SSTS, 24 helaftens SSTS gjøre opp venstre og høyre grenser, og 28 halv lengde SSTS danner de øvre og nedre grenser. Lerretet har 24 dobbeltrom helikser koblet av crossovers og hver helix inneholder 28 skrueviklinger (294 baser) og omtales derfor somen 24H × 28T rektangulær lerret. 24H × 28T lerretet har en molekylvekt lik som en DNA origami struktur opprettet fra en M13-fag stillaset.

Protocol

1. DNA Sequence Design Bruk UNIQUIMER programvare 27 for å designe et SST-endelig struktur ved å spesifisere antallet toseters helikser, lengder på topp og bunn helix for hver dobbeltspiralen, og crossover mønster for å skape en 24H × 28T lerret. Etter å ha definert disse parametre, blir den samlede arkitektur (tråd sammensetning og komplementaritet arrangement) vist grafisk i programmet. Generere sekvenser for trådene i den angitte strukturen for å møte komplementaritet arrang…

Representative Results

Den selvbygging av SSTS (figur 1) vil gi et 24H x 28T rektangel, som illustrert i figur 2. DNA-sekvenser for de ulike SSTS kan modifiseres / optimalisert for å muliggjøre merking streptavidin (figur 3 og 4), transformasjon av en rektangel til et rør (figur 5), den programmerbare selvbygging av SSTS å danne rør og rektangler av varierende størrelse (figur 10), og konstruksjonen av 2D vilkårlige former ved hjelp av…

Discussion

I strukturen dannelsestrinnet, er det viktig å holde en passende konsentrasjon av magnesium-kationer (f.eks., 15 mM) i DNA-tråden blandingen til selv montere DNA nanostrukturer. Tilsvarende, i agarosegelen karakteriser / rensetrinnet, er det viktig å holde en passende konsentrasjon magnesium kation (f.eks., 10 mM) i gelen og gelen rennende buffer for å opprettholde DNA-nanostrukturer under elektroforese. For 24H x 28T rektangel struktur, testet vi gløding i forskjellige konsentrasjoner, og Mg <sup…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble finansiert av Office of Naval Research Young Investigator Program Award N000141110914, Office of Naval Research Grant N000141010827, NSF KARRIERE Award CCF1054898, NIH direktørens New Innovator Award 1DP2OD007292 og Wyss Institutt for Biologisk Inspirert teknikk Fakultet Startup Fund (til PY) og Tsinghua-Peking Senter for miljø- og biovitenskap Startup Fund (til BW).

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
DNA Strands  Integrated DNA Technology Section 3.1
SYBR Safe DNA gel stain Invitrogen S33102 Section 3.4.2
Freeze'N Squeeze DNA Gel Extraction Spin Columns BIO-RAD 731-6166 Section 3.6
Bruker's Sharp Nitride Lever Probes Bruker AFM Probes SNL10 Section 4.3
Safe Imager 2.0 Blue Light Transilluminator Invitrogen G6600 Section 3.6
Centrifuge 5430R Eppendorf 5428 000.414 Section 3.6
Transmission Electron Microscope  Jeol Jem 1400 Section 7.4
Multimode 8 Veeco Section 4
Typhoon FLA 9000 Laser Scanner GE Heathcare Life Sciences 28-9558-08 Section 3.5
Ultrapure Distilled water Invitrogen 10977-023 Section 3.7.1
Mica disk SPI Supplies 12001-26-2 Section 4.1
Steel mounting disk Ted Pella, Inc. 16218 Section 4.1
carbon coated copper grid for TEM Electron Microscopy Sciences FCF400-Cu Section 7.2
tweezers Dumont 0203-N5AC-PO Section 7.31
glow discharge system Quorum Technologies K100X Section 7.2
DNA Engine Tetrad 2 Peltier Thermal Cycler BIO-RAD PTC–0240G Section 3.3
Owl Easycast B2 Mini Gel Electrophoresis Systems ThermoScientific B2 Section 3.4.3
Seekam LE Agarose 500G Lonza 50004 Section 3.4.1
GeneRuler 1kb Plus DNA Ladder, Ready-To-Use 75-20000bp ThermoScientific SM1333 Section 3.4.4
Nanodrop 2000c UV-vis Spectrophotometer ThermoScientific Section 3.7
0.2 um filter Corning Inc. 431219 Section 7.1.2

References

  1. Seeman, N. C. Nucleic acid junctions and lattices. J. Theor. Biol. 99 (2), 237-247 (1982).
  2. Fu, T. J., Seeman, N. C. DNA double-crossover molecules. Biochemistry. 32 (13), 3211-3220 (1993).
  3. Winfree, E., Liu, F., Wenzler, L. A., Seeman, N. C. Design and self-assembly of two-dimensional DNA crystals. Nature. 394 (6693), 539-544 (1998).
  4. Yan, H., Park, S. H., Finkelstein, G., Reif, J. H., LaBean, T. H. DNA-templated self-assembly of protein arrays and highly conductive nanowires. Science. 301 (5641), 1882-1884 (2003).
  5. Rothemund, P. W. K., Papadakis, N., Winfree, E. Algorithmic self-assembly of DNA Sierpinski triangles. PLoS Biol. 2 (12), e424 (2004).
  6. Shih, W., Quispe, J., Joyce, G. A 1.7-kilobase single-stranded DNA that folds into a nanoscale octahedron. Nature. 427 (6975), 618-621 (2004).
  7. Chworos, A., et al. Building programmable jigsaw puzzles with RNA. Science. 306 (5704), 2068-2072 (2004).
  8. Park, S. H., et al. Finite-size, fully-addressable DNA tile lattices formed by hierarchical assembly procedures. Angew. Chem. Int. Ed. 45 (5), 735-739 (2006).
  9. Rothemund, P. W. K. Folding DNA to create nanoscale shapes and patterns. Nature. 440 (7082), 297-302 (2006).
  10. Schulman, R., Winfree, E. Synthesis of crystals with a programmable kinetic barrier to nucleation. Proc. Natl Acad. Sci. USA. 104 (39), 15236-15241 (2007).
  11. He, Y., et al. Hierarchical self-assembly of DNA into symmetric supramolecular polyhedra. Nature. 452 (7184), 198-201 (2008).
  12. Yin, P., et al. Programming DNA tube circumferences. Science. 321 (5890), 824-826 (2008).
  13. Sharma, J., et al. Control of self-assembly of DNA tubules through integration of gold nanoparticles. Science. 323 (5910), 112-116 (2009).
  14. Douglas, S. M., Dietz, H., Liedl, T., Högberg, B., Graf, F., Shih, W. M. Self-assembly of DNA into nanoscale three-dimensional shapes. Nature. 459 (7245), 414-418 (2009).
  15. Andersen, E. S., et al. Self-assembly of a nanoscale DNA box with a controllable lid. Nature. 459 (7243), 73-76 (2009).
  16. Dietz, H., Douglas, S. M., Shih, W. M. Folding DNA into twisted and curved nanoscale shapes. Science. 325 (5941), 725-730 (2009).
  17. Zheng, J. P., et al. From molecular to macroscopic via the rational design of self-assembled 3D. DNA crystal. Nature. 461 (7260), 74-77 (2009).
  18. Han, D., et al. DNA origami with complex curvatures in three-dimensional space. Science. 332 (6024), 342-346 (2011).
  19. Liu, W., Zhong, H., Wang, R., Seeman, N. C. Crystalline two-dimensional DNA origami arrays. Angew. Chem. Int. Ed. 50 (1), 264-267 (2011).
  20. Zhao, Z., Liu, Y., Yan, H. Organizing DNA origami tiles into larger structures using preformed scaffold frames. Nano Lett. 11 (7), 2997-3002 (2011).
  21. Woo, S., Rothemund, P. Programmable molecular recognition based on the geometry of DNA nanostructures. Nat. Chem. 3 (8), 620-627 (2011).
  22. Delebecque, C. J., Lindner, A. B., Silver, P. A., Aldaye, F. A. Organization of intracellular reactions with rationally designed RNA assemblies. Science. 333 (6041), 470-474 (2011).
  23. Lin, C., Liu, Y., Rinker, S., Yan, H. DNA tile based self-assembly: building complex nanoarchitectures. ChemPhysChem. 7 (8), 1641-1647 (2006).
  24. Seeman, N. C. Nanomaterials based on DNA. Annu. Rev. Biochem. 79 (1), 65-87 (2010).
  25. Voigt, N. V., Nangreave, J., Yan, H., Gothelf, K. V. DNA origami: a quantum leap for self-assembly of complex structures. Chem. Soc. Rev. 40 (12), 5636-5646 (2011).
  26. Wei, B., Dai, M., Yin, P. Complex Shapes self-assembled from single stranded DNA tiles. Nature. 485 (7400), 623-626 (2012).
  27. Wei, B., Wang, Z., Mi, Y. Uniquimer: software of de novo DNA sequence generation for DNA self-assembly: an introduction and the related applications in DNA self-assembly. J. Comput. Theor. Nanosci. 4 (1), 133-141 (2007).
  28. Seeman, N. C. De novo design of sequences for nucleic acid structural engineering. J. Biomol. Struct. Dyn. 8 (3), 573-581 (1990).
  29. Hansma, H. G., Laney, D. E. DNA binding to mica correlates with cationic radius: assay by atomic force microscopy. Biophys. J. 70 (4), 1933-1939 (1996).
  30. Seelig, G., Soloveichik, D., Zhang, D. Y., Winfree, E. Enzyme-free nucleic acid logic circuits. Science. 314 (5805), 1585-1588 (2006).
  31. Yin, P., Choi, H. M. T., Calvert, C. R., Pierce, N. A. Programming biomolecular self-assembly pathways. Nature. 451 (7176), 318-322 (2008).
check_url/52486?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Wei, B., Vhudzijena, M. K., Robaszewski, J., Yin, P. Self-assembly of Complex Two-dimensional Shapes from Single-stranded DNA Tiles. J. Vis. Exp. (99), e52486, doi:10.3791/52486 (2015).

View Video