Summary

Den Bioconjugation og Radiosynthesis af<sup> 89</sup> Zr-DFO-mærkede antistoffer

Published: February 12, 2015
doi:

Summary

Due to its multi-day radioactive half-life and favorable decay properties, the positron-emitting radiometal 89Zr is extremely well-suited for use in antibody-based radiopharmaceuticals for PET imaging. In this protocol, the bioconjugation, radiosynthesis, and preclinical application of 89Zr-labeled antibodies will be described.

Abstract

Den ekstraordinære affinitet, specificitet og selektivitet af antistoffer gør dem særdeles attraktive vektorer for tumor målrettet PET radioaktive lægemidler. På grund af deres multi-dages biologisk halveringstid, skal antistoffer være mærket med positron-emitterende radionuklider med relativt lange fysiske forfald halveringstider. Traditionelt positron-emitterende isotoper 124 I (t 1/2 = 4,18 d), 86 Y (t 1/2 = 14,7 timer), og 64 Cu (t 1/2 = 12,7 timer) er blevet anvendt til at mærke antistoffer til PET-billeddannelse. For nylig har imidlertid feltet oplevet en dramatisk stigning i brugen af positron-emitterende radiometal 89 Zr i antistofbaserede PET imagografimidler. 89 Zr er en næsten ideel radioisotop for PET imaging med immunokonjugater, som det har en fysisk halvdel -liv (t 1/2 = 78,4 timer), som er kompatibel med de in vivo farmakokinetik af antistoffer og udsender en relativ lav eneRGY positron, der producerer billeder i høj opløsning. Endvidere kan antistoffer ligefrem mærket med 89 Zr hjælp af siderofor-afledte chelator desferrioxamin (DFO). I denne protokol, vil prostata-specifikke målretning membran-antigen-antistof J591 anvendes som et modelsystem til at illustrere (1) bioconjugation af den bifunktionelle chelator DFO-isothiocyanat til et antistof, (2) radiosynthesis og oprensning af en 89 Zr- DFO-mAb radioimmunokonjugatet, og (3) in vivo PET billeddannelse med en 89 Zr-DFO-mAb radioimmunokonjugatet i en musemodel af cancer.

Introduction

På grund af deres bemærkelsesværdige følsomhed, affinitet og selektivitet er antistoffer længe været betragtet som lovende vektorer til levering af radioisotoper til cancerceller. Imidlertid har deres anvendelse i positronemissionstomografi (PET) billeddannelse været hæmmet af manglen på en passende positron-emitterende radioisotop for deres mærkning. 1-3 En af de mest kritiske overvejelser i udformningen af radioimmunoconjugates matcher den fysiske forfald halv- levetid radioisotop til in vivo-farmakokinetik af antistoffet. Mere specifikt antistoffer har ofte forholdsvis lange, multi-dages biologiske halveringstider, og derfor skal mærkes med radioisotoper med sammenlignelige fysiske halveringstider. For PET billedbehandlingsprogrammer har antistoffer traditionelt været radioaktivt mærket med 64 Cu (t 1/2 = 12,7 timer), 86 Y (t 1/2 = 14,7 timer), eller 124 I (t 1/2 = 4.18 d). 4, Men hver af 5disse radioisotoper besidder væsentlige begrænsninger, der hæmmer deres egnethed til klinisk billeddannelse. Mens radioimmunoconjugates mærket med 86 Y og 64 Cu har vist lovende i prækliniske undersøgelser, begge isotoper besidder fysiske halveringstider, der er for kort til at være effektiv til billeddannelse i mennesker. 124 Jeg derimod har en næsten ideel fysisk halveringstid for billeddannelse med antistoffer, men det er dyrt og har suboptimale henfald egenskaber, der fører til relativt lav opløsning kliniske billeder. Endvidere kan 124-mærket radioimmunoconjugates underkastes dehalogenering in vivo, en proces, der kan sænke tumor-til-baggrund aktivitet forhold. 6,7

Drevet til at finde en positron-emitterende radioisotop at fortrænge 64 Cu, 86 Y, og 124 jeg i radioimmunoconjugates har givet næring den seneste stigning i forskning i 89 Zr-mærkede antistoffer. 8-12 Than årsag til fremkomsten af 89 Zr er ligetil: de radiometal besidder næsten ideelle kemiske og fysiske egenskaber til brug i diagnostiske PET radioimmunoconjugates 13 89 Zr fremstilles via 89 Y (p, n) 89 Zr reaktion på en cyklotron ved hjælp af en. kommercielt tilgængelige og 100% naturligt forekommende 89 Y målet. 14,15 Den radiometal har en positron udbytte på 23%, henfalder med en halveringstid på 78,4 timer og udsender positroner med den relativt lave energi 395,5 keV (figur 1). 13,16,17 Det er vigtigt at bemærke, at 89 Zr udsender også en høj energi, 909 keV γ-ray med 99% effektivitet. Mens dette emission ikke griber energisk med de udsendte 511 keV fotoner, det kræver ekstra overvejelser med hensyn til transport, håndtering og dosimetri. Trods denne advarsel disse henfaldskarakteristikkerne sidste ende betyder, at 89 Zr ikke kun har en gunstigere half-liv for billeddannelse med antistoffer end 86 Y og 64 Cu men kan også producere billeder med højere opløsning end 124 I, som udsender positroner med højere energier 687 og 975 keV, samt et antal fotoner med energier inden 100-150 keV af 511 keV positron-skabte fotoner. 13 Endvidere 89 Zr er også sikrere at håndtere, billigere at fremstille, og residualizes i tumorer mere effektivt end dets radioaktivt modstykke. 18,19 En mulig begrænsning af 89 Zr er, at det ikke har en terapeutisk isotopologue fx 86 Y (PET) vs. 90 Y (terapi). Dette udelukker opførelsen af ​​kemisk identiske, surrogat billeddannende midler, der kan anvendes som dosimetriske spejdere til deres terapeutiske kolleger. Når det er sagt, undersøgelser tyder på, at 89 Zr-mærkede antistoffer har potentiale som billeddannende surrogater for 90 Y- og 177 Lu-mærkede immunkonjugater.20,21

Fra et kemisk synspunkt, som et gruppe IV metal, 89 Zr eksisterer som en 4 kation i vandig opløsning. ZR 4+ ion er stærkt opladet, relativt stor (effektiv ionradius = 0,84 Å), og kan klassificeres som en "hård" kation. Som sådan er det udviser en præference for ligander, der bærer op til otte hårde, anioniske ilt donorer. Let den mest almindelige chelatoren anvendt i 89 Zr-mærkede radioimmunoconjugates er desferrioxamin (DFO), en siderofor-afledt, acyklisk chelator bærer tre hydroxamat grupper. Liganden stabilt koordinerer Zr 4+ kation hurtigt og rent ved stuetemperatur på biologisk relevante pH-niveauer, og den resulterende Zr-DFO-kompleks forbliver stabil i løbet af flere dage i saltvand, blodserum og fuldblod. 22 Computational studier tyder stærkt at DFO danner et hexacoordinate kompleks med Zr 4+, hvori metallet center er koordineret til tre Neutral og tre anioniske ilt donorer af liganden samt to eksogene vand ligander (Figur 2). 23,24 In vivo opførsel radioimmunoconjugates beskæftiger den 89 Zr-DFO konjugering stillads har generelt været fremragende. Men i nogle tilfælde, billedbehandling og akutte biodistributionsstudier har vist forhøjede aktivitetsniveauer i knoglerne i mus injiceret med 89 Zr-mærkede antistoffer, data, der tyder på, at osteophilic 89 Zr 4+ kation frigives fra chelatoren in vivo og efterfølgende mineralizes i knoglen. 25. For nylig har en række undersøgelser af udviklingen af nye 89 Zr 4+ chelatorer især ligander med otte ilt donorer har optrådt i litteraturen. 24,26,27 dog på nuværende tidspunkt, DFO er den mest anvendte chelator i 89 Zr-mærket radioimmunoconjugates med en bred margin. En række forskelligebioconjugation strategier er blevet anvendt til at fastgøre DFO til antistoffer, herunder bioorthogonal klik kemi, omsætning af thiol-reaktivt DFO konstruktioner med cysteiner i antistoffet, og omsætningen af aktiveret ester-bærende DFO konstruktioner med lysiner i antistoffet. 4,28- 30 Let den mest almindelige strategi har imidlertid været anvendelsen af et isothiocyanat-bærende derivat af DFO, DFO-NCS (figur 2). 22 Denne kommercielt tilgængelig bifunktionel chelator robust og pålideligt danner stabile, covalent thiourinstof-bindinger med lysinerne i antistof (figur 3).

I de seneste år har en lang række 89 Zr-DFO-mærkede radioimmunoconjugates blevet rapporteret i litteraturen. Prækliniske undersøgelser har især været rigelige, og byder antistoffer lige fra de mere velkendte cetuximab, bevacizumab og trastuzumab til mere esoteriske antistoffer såsom CD105-targeting TRC105 og fPSA-targeting 5A10. 30-36 Senere har et lille antal tidlige fase kliniske forsøg med 89 Zr-DFO-mærkede antistoffer opstod i litteraturen. Konkret har grupper i Nederlandene publicerede forsøg beskæftiger 89 Zr-DFO-cmAb u36, 89 Zr-DFO-ibritumomab tiuxetan, og 89 Zr-DFO-trastuzumab. 21,32,37 Derudover er en række andre kliniske forsøg med 89 ZR-mærkede radioimmunoconjugates er igangværende, herunder efterforskning her på Memorial Sloan Kettering Cancer Center ved hjælp af PSMA-målretning 89 Zr-DFO-J591 for prostatakræft billedbehandling og HER2-rettet 89 Zr-DFO-trastuzumab for brystkræft billeddannelse. 23, 30 Hertil kommer, mens radiomærkede antistoffer forbliver de mest almindelige 89 Zr-mærkede radioaktive lægemidler den radiometal er også i stigende grad været ansat andre vektorer, herunder peptider, proteiner og nanomaterialer. 38-43 </sup>

Den modularitet med denne 89 Zr-DFO mærkning metode er et enormt aktiv. Repertoiret af biomarkør målretning antistoffer er stadigt voksende, og interessen for at udføre in vivo PET-billeddannelse ved hjælp af disse konstruktioner er i hastig vækst. Som et resultat mener vi, at udviklingen af ​​mere standardiserede fremgangsmåder og protokoller kan gavne området. En fremragende skrevet forsøgsprotokol til DFO-NCS konjugering og 89 Zr radioaktiv mærkning er allerede blevet offentliggjort af Vosjan, et al. 22 Vi føler, at det visuelle demonstration, som dette arbejde yderligere kunne hjælpe efterforskerne ny på disse teknikker. I protokollen ved hånden, vil prostata-specifikke målretning membran-antigen-antistof J591 anvendes som et modelsystem til at illustrere (1) bioconjugation af den bifunktionelle chelator DFO-isothiocyanat til et antistof, (2) radiosynthesis og oprensning af 89 ZR-DFO-mAb radioimmunokonjugatet,og (3) in vivo PET billeddannelse med en 89 Zr-DFO-mAb radioimmunokonjugatet i en musemodel af cancer. 23,44,45

Protocol

Alle de in vivo dyreforsøg beskrevne blev udført efter en godkendt protokol og under de etiske retningslinjer for Memorial Sloan Kettering Cancer Center Institutional Animal Care og brug Udvalg (IACUC). 1. Konjugering af DFO-NCS til J591 I et 1,7 ml mikrocentrifugerør, fremstilles en opløsning 2-5 mg / ml J591 i 1 ml af enten 1x phosphatpufret saltvand (pH 7,4) eller 0,5 M HEPES-buffer (pH 7,4). Opløs DFO-NCS i tørt DMSO ved en koncentration på mellem 5-1…

Representative Results

Det første skridt i denne protokol bøjningen af ​​DFO-NCS til antistoffet er typisk ganske robust og pålidelig. Generelt kan det oprensede, chelator-modificerede immunokonjugat opnås i> 90% udbytte, og under anvendelse af 3 molækvivalenter af DFO-NCS i den oprindelige konjugationsreaktion vil give en vis-of-mærkning af chelatoren omtrent 1,0-1,5 DFO / mAb. De 89 Zr radioaktiv mærkning og purifikationstrin proceduren er også ligetil. Ved de koncentrationer, der er skitseret i ovennævnte protoko…

Discussion

Mens byggeriet, radioaktiv mærkning, og billedbehandling på 89 Zr-DFO-labled radioimmunoconjugates er generelt en temmelig enkel procedure, er det vigtigt at holde et par vigtige overvejelser i tankerne i hvert trin i processen. For eksempel, måske den mest sandsynlige årsag til bekymring under konjugering trin i proceduren er sammenlægning af antistoffet under konjugationsreaktionen. Dette problem er mest ofte et produkt af dårlig blanding af konjugeringsreaktionen efter tilsætningen af DFO-NCS stamop…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne takker Prof. Thomas Reiner, Dr. Jacob Houghton og Dr. Serge Lyaschenko for nyttige samtaler.

Materials

Name of the Material/Equipment Company Catalog Number Comments
p-SCN-Bn-DFO Macrocyclics B-705 Store at -80 °C
[89Zr]Zr-oxalate Various, including Perkin-Elmer Caution: Radioactive material
PD-10 Desalting Columns GE Healthcare 17-0851-01  Store at room temperature
Amicon Ultra-4 Centrifugal Filter Units EMD Millipore UFC805024 Store at room temperature
Silica Gel Impregnanted RadioTLC Paper Agilent Technologies SGI0001 Cut into strips 0.5 cm wide

References

  1. Wu, A. M. Antibodies and antimatter: The resurgence of immuno-PET. Journal of Nuclear Medicine. 50 (1), 2-5 (2009).
  2. Wu, A. M., Olafsen, T. Antibodies for molecular imaging of cancer. Cancer Journal. 14 (3), 191-197 (2008).
  3. Wu, A. M., Senter, P. D. Arming antibodies: prospects and challenges for immunoconjugates. Nature Biotechnology. 23 (9), 1137-1146 (2005).
  4. Zeglis, B. M., Lewis, J. S. A practical guide to the construction of radiometallated bioconjugates for positron emission tomography. Dalton Transactions. 40 (23), 6168-6195 (2011).
  5. Zalutsky, M. R., Lewis, J. S., Welc, M. J., Redvanly, C. S. . Handbook of Radiopharmaceuticals. 24, 685-714 (2003).
  6. Carrasquillo, J. A., et al. 124I-huA33 antibody PET of colorectal cancer. Journal of Nuclear Medicine. 52 (8), 1173-1180 (2011).
  7. Divgi, C. R., et al. Preoperative characterisation of clear-cell renal carcinoma using iodine-124-labelled antibody chimeric G250 (124I-cG250) and PET in patients with renal masses: a phase I trial. The Lancet Oncology. 8 (4), 304-310 (2007).
  8. Severin, G. W., Engle, J. W., Barnhart, T. E., Nickles, R. J. Zr-89 radiochemistry for positron emission tomography. Medicinal Chemistry. 7 (5), 389-394 (2012).
  9. Nayak, T. K., Brechbiel, M. W. Radioimmunoimaging with longer-lived positron-emitting radionuclides: potentials and challenges. Bioconjugate Chemistry. 20 (5), 825-841 (2009).
  10. Vugts, D. J., Van Dongen, G. 89Zr-labeled compounds for PET imaging guided personalized therapy. Drug Discovery Today. 8 (2), e53-e61 (2011).
  11. Dongen, G. A. M. S., Visser, G. W. M., de Hooge, M. N. L. u. b. -., de Vries, E. G., Perk, L. R. Immuno-PET: a navigator in monoclonal antibody development and applications. Oncologist. 12 (12), 1379-1389 (2007).
  12. Deri, M. A., Zeglis, B. M., Francesconi, L. C., Lewis, J. S. PET imaging with 89Zr: From radiochemistry to the clinic. Nuclear Medicine and Biology. 40 (1), 3-14 (2013).
  13. Holland, J. P., Williamson, M. J., Lewis, J. S. Unconventional nuclides for radiopharmaceuticals. Molecular Imaging. 9 (1), 1-20 (2010).
  14. Holland, J. P., Sheh, Y. C., Lewis, J. S. Standardized methods for the production of high specific-activity zirconium-89. Nuclear Medicine and Biology. 36 (7), 729-739 (2009).
  15. Meijs, W. E., et al. Production of highly pure no-carrier added 89Zr for the labelling of antibodies with a positron emitter. Applied Radiation and Isotopes. 45 (12), 1143-1147 (1994).
  16. Vugts, D. J., van Dongen, G. A. M. S. 89Zr-labeled compounds for PET imaging guided personalized therapy. Drug Discovery Today: Technologies. 8 (2-4), e53-e61 (2011).
  17. Severin, G. W., Engle, J. W., Barnhart, T. E., Nickles, R. J. 89Zr radiochemistry for positron emission tomography. Medicinal Chemistry. 11 (7), 389-394 (2011).
  18. Perk, L. R., et al. Quantitative PET imaging of Met-expressing human cancer xenografts with 89Zr-labelled monoclonal antibody DN30. European Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging. 35 (10), 1857-1867 (2008).
  19. Knowles, S. M., et al. Quantitative immunoPET of prostate cancer xenografts with Zr-89- and I-124-labeled anti-PSCA A11 minibody. Journal of Nuclear Medicine. 55 (3), 452-459 (2014).
  20. Rizvi, S. F., et al. radiation dosimetry and scouting of 90Y-ibritumomab tiuxetan therapy in patients with relapsed B-cell non-Hodgkin’s lymphoma using 89Zr-ibritumomab tiuxetan and PET. European Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging. 39 (3), 512-520 (2012).
  21. Perk, L. R., et al. Preparation and evaluation of Zr-89-Zevalin for monitoring of Y-90-Zevalin biodistribution with positron emission tomography. European Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging. 33 (11), 1337-1345 (2006).
  22. Vosjan, M., et al. Conjugation and radiolabeling of monoclonal antibodies with zirconium-89 for PET imaging using the bifunctional chelate p-isothiocyanatobenzyl-desferrioxamine. Nature Protocols. 5 (4), 739-743 (2010).
  23. Holland, J. P., et al. Zr-89-DFO-J591 for ImmunoPET of prostate-specific membrane antigen expression in vivo. Journal of Nuclear Medicine. 51 (8), 1293-1300 (2010).
  24. Deri, M. A., et al. Alternative chelator for (89)Zr-radiopharmaceuticals: Radiolabeling and evaluation of 3,4,3-(LI-1,2-HOPO). Journal of Medicinal Chemistry. 57 (11), 4849-4860 (2014).
  25. Abou, D. S., Ku, T., Smith-Jones, P. M. In vivo biodistribution and accumulation of 89Zr in mice. Nuclear Medicine and Biology. 38 (5), 675-681 (2011).
  26. Guerard, F., Lee, Y. S., Brechbiel, M. W. Rational design, synthesis, and evaluation of tetrahydroxaminc acid chelators for stable complexation of zirconium(IV). Chemistry: A European Journal. 20 (19), 5584-5591 (2014).
  27. Guerard, F., et al. Investigation of Zr(IV) and 89Zr(IV) complexation with hydroxamates: progress towards designing a better chelator than desferrioxamine B for immuno-PET imaging. Chemical Communications. 49 (10), 1002-1004 (2013).
  28. Zeglis, B. M., et al. Modular strategy for the construction of radiometalated antibodies for positron emission tomography based on inverse electron demand Diels-Alder click chemistry. Bioconjugate Chemistry. 22 (10), 2048-2059 (2011).
  29. Tinianow, J. N., et al. Site-specifically Zr-89-labeled monoclonal antibodies for ImmunoPET. Nuclear Medicine and Biology. 37 (3), 289-297 (2010).
  30. Holland, J. P., et al. Measuring the pharmacodynamic effects of a novel Hsp90 inhibitor on HER2/neu expression in mice using Zr-89-DFO-trastuzumab. PLoS ONE. 5 (1), (2010).
  31. Aerts, H., et al. Disparity between in vivo EGFR expression and Zr-89-labeled cetuximab uptake assessed with PET. Journal of Nuclear Medicine. 50 (1), 123-131 (2009).
  32. Nagengast, W. B., et al. Zr-89-Bevacizumab PET of early antiangiogenic tumor response to treatment with HSP90 inhibitor NVP-AUY922. Journal of Nuclear Medicine. 51 (5), 761-767 (2010).
  33. Nagengast, W. B., et al. In vivo VEGF imaging with radiolabeled bevacizumab in a human ovarian tumor xenograft. Journal of Nuclear Medicine. 48 (8), 1313-1319 (2007).
  34. Dijkers, E. C. F., et al. Development and characterization of clinical-grade Zr-89-trastuzumab for HER2/neu immunoPET imaging. Journal of Nuclear Medicine. 50 (6), 974-981 (2009).
  35. Ulmert, D., et al. Imaging androgen receptor signaling with a radiotracer targeting free prostate-specific antigen. Cancer Discovery. 2 (4), 320-327 (2012).
  36. Hong, H., et al. Positron emission tomography imaging of CD105 expression with 89Zr-Df-TRC105. European Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging. 39 (1), 138-148 (2012).
  37. Dijkers, E. C., et al. Biodistribution of Zr-89-trastuzumab and PET omaging of HER2-positive lesions in patients with metastatic breast cancer. Clinical Pharmacolog., & Therapeutics. 87 (5), 586-592 (2012).
  38. Heneweer, C., Holland, J. P., Divilov, V., Carlin, S., Lewis, J. S. Magnitude of enhanced permeability and retention effect in tumors with different phenotypes: Zr-89-abumin as a model system. Journal of Nuclear Medicine. 52 (4), 625-633 (2011).
  39. Holland, J. P., et al. Annotating MYC status with 89Zr-transferrin imaging. Nature Medicine. 18 (10), 1586-1591 (2012).
  40. Jacobson, O., et al. MicroPET imaging of integrin avB3 expressing tumors using 89Zr-RGD peptides. Molecular Imaging and Biology. 13 (6), 1224-1233 (2011).
  41. Keliher, E. J., et al. 89Zr-labeled dextran nanoparticles allow in vivo macrophage imaging. Bioconjugate Chemistry. 22 (12), 2383-2389 (2011).
  42. Abou, D. S., et al. 89Zr-labeled paramagnetic octreotide-liposomes for PET-MR imaging of cancer. Pharmaceutical Research. 30 (3), 878-888 (2013).
  43. Miller, L., et al. Synthesis, characterization, and biodistribution of multiple 89Zr-labeled pore-expanded mesoporous silica nanoparticles for PET. Nanoscale. 6 (9), 4928-4935 (2014).
  44. Zeglis, B. M., et al. An enzyme-mediated methodology for the site-specific radiolabeling of antibodies based on catalyst-free click chemistry. Bioconjugate Chemistry. 24 (6), 1057-1067 (2013).
  45. Nanus, D. M., et al. Clinical use of monoclonal antibody HuJ591 therapy: targeting prostate specific membrane antigen. Journal of Urology. 170 (6 Pt 2), S84-S88 (2003).
  46. Joshi, R., Gangabhagirathi, R., Venu, S., Adhikari, S., Mukherjee, T. Antioxidant activity and free radical scavenging reactions of gentisic acid: in vitro and pulse radiolysis studies. Free Radical Research. 46 (1), 11-20 (2012).
  47. Saran, M., Bors, W. Radiation chemistry of physiological saline reinvestigated: evidence that chloride-derived intermediates play a key role in cytotoxicity. Radiation Research. 147 (1), 70-77 (1997).
  48. Machholz, E., Mulder, G., Ruiz, C., Corning, B. F., Prichett-Corning, K. R. Manual restraint and common compound administration routes in mice and rats. Journal of Visualized Experiments. (67), e2771 (2012).
  49. Collier, H., Warner, B. T., Skerry, R. Multiple toe-pinch method for testing analgesic drugs. British Journal of Pharmacology and Chemotherapeutics. 17, 28-40 (1961).
  50. Zanzonico, P. Positron emission tomography: a review of basic principles, scanner design and performance, and current systems. Seminars in Nuclear Medicine. 34 (2), 87-111 (2004).
  51. Anderson, C. J., et al. Copper-64-labeled antibodies for PET imaging. Journal of Nuclear Medicine. 33 (9), 1685-1691 (1992).
  52. Anderson, C. J., et al. Preparation, biodistribution and dosimetry of copper-64-labeled anti-colorectal carcinoma monoclonal antibody fragments 1A3-F(ab’)2. Journal of Nuclear Medicine. 36 (5), 850-858 (1995).
  53. Lindmo, T., Boven, E., Cuttitta, F., Fedorko, J., Bunn, P. A. Determination of the immunoreactive fraction of radiolabeled monoclonal antibodies by linear extrapolation to binding at infinite antigen excess. Journal of Immunological Methods. 72 (1), 77-89 (1984).
  54. Lindmo, T., Bunn, P. A. Determination of the true immunoreactive fraction of monoclonal antibodies after radiolabeling. Methods in Enzymology. 121 (1), 678-691 (1986).
  55. Cohen, R., et al. Inert coupling of IRDye800CW to monoclonal antibodies for clinical optical imaging of tumor targets. European Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging. 1 (1), 31-43 (2011).
  56. Ruggiero, A., et al. Targeting the Internal Epitope of Prostate-Specific Membrane Antigen with Zr-89-7E11 Immuno-PET. Journal of Nuclear Medicine. 52 (10), 1608-1615 (2011).
  57. Nayak, T. K., Garmestani, K., Milenic, D. E., Brechbiel, M. W. . PET and MRI of Metastatic Peritoneal and Pulmonary Colorectal Cancer in Mice with Human Epidermal Growth Factor Receptor 1-Targeted Zr-89-Labeled Panitumumab. Journal of Nuclear Medicine. 53 (1), 113-120 (2012).
check_url/52521?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Zeglis, B. M., Lewis, J. S. The Bioconjugation and Radiosynthesis of 89Zr-DFO-labeled Antibodies. J. Vis. Exp. (96), e52521, doi:10.3791/52521 (2015).

View Video