Summary

Bruk av Chironomidae (Diptera) Surface-Floa pupal Exuviae som Rapid Bioassessment protokoll for vannforekomster

Published: July 24, 2015
doi:

Summary

Rapid bioassessment protocols using benthic macroinvertebrates are often used to monitor and assess water quality. An efficient protocol involves collections of Chironomidae surface-floating pupal exuviae (SFPE). Here, techniques for field collection, laboratory processing, slide mounting, and identification of Chironomidae SFPE are described.

Abstract

Rapid bioassessment protokoller ved hjelp av bunndyr macroinvertebrate assemblages har blitt brukt for å vurdere menneskelig påvirkning av vannkvaliteten. Uheldigvis tradisjonelle bunn larver prøvetakingsmetoder, slik som dip-net, kan være tidkrevende og kostbart. Et alternativ protokollen innebærer samling av Chironomidae overflate flytende pupal exuviae (SFPE). Chironomidae er en artsrik familie av fluer (Diptera) som umodne stadier oppstår vanligvis i akvatiske habitater. Voksen fjærmygg dukke opp fra vannet, forlater sine pupal skinn, eller exuviae, flyter på vannoverflaten. Exuviae ofte samle seg langs bredden eller bak hindringer ved virkningen av vind eller vannstrømmen, der de kan samles for å vurdere chironomid mangfold og rikdom. Fjærmygg kan brukes som viktige biologiske indikatorer, siden noen arter er mer tolerante for forurensning enn andre. Derfor, den relative overflod og artssammensetning av innsamlede SFPE reflektereendringer i vannkvaliteten. Her er metoder forbundet med feltsamling, laboratorium prosessering, slide montering, og identifisering av chironomid SFPE beskrevet i detalj. Fordeler med SFPE metoden inkluderer minimal forstyrrelse på et prøveareal, effektiv og økonomisk prøvetaking og laboratorie bearbeiding, enkel identifisering, anvendbarhet i nesten alle vannmiljøer, og en potensielt mer sensitiv mål på økosystemet stress. Begrensninger omfatte manglende evne til å avgjøre larvemikrohabitat bruk og manglende evne til å identifisere pupal exuviae arter hvis de ikke har vært forbundet med voksne menn.

Introduction

Biologiske overvåkingsprogrammer, som bruker levende organismer for å vurdere miljørettet helsevern, blir ofte brukt for å vurdere vannkvalitet eller overvåke suksess av økosystem restaurering programmer. Rapid bioassessment protokoller (RBP) ved hjelp av bunndyr macroinvertebrate assemblages har vært populære blant statlige vannressursbyråer siden 1989 1. Tradisjonelle metoder for prøvetaking bentiske makroinvertebrater for RBPs, som dip-net, Surber sampler, og Hess sampler 2 kan være tid- tidkrevende, dyrt og kan bare måle sammenstillinger fra en bestemt mikrohabitat tre. En effektiv, alternativ RBP for generering av biologisk informasjon om en bestemt vannforekomst innebærer samling av Chironomidae overflate flytende pupal exuviae (SFPE) 3.

Den Chironomidae (Insecta: Diptera), vanligvis kjent som non-sviknott, er holometabolous fluer som vanligvis oppstår i vannmiljø før dukker opp som voksne 60, på en vannflate. Den chironomid familien er artsrik, med ca 5000 arter beskrevet over hele verden; imidlertid så mange som 20.000 arter beregnet til å eksistere fire. Fjærmygg er nyttige i å dokumentere vann og habitatkvalitet i mange akvatiske økosystemer på grunn av sin høye mangfold og variable forurensning toleransenivåer fem. Videre er de ofte de mest tallrike og utbredte bentiske makroinvertebrater i akvatiske systemer, vanligvis står for 50% eller mer av artene i samfunnet 5,6. Etter fremveksten av den jordiske voksen, pupal exuviae (støpt pupal huden) er fortsatt flyter på vannflaten (figur 1). Pupal exuviae seg langs bredden eller bak hindringer gjennom handling av vind eller vann strøm og kan enkelt og raskt samlet for å gi et omfattende utvalg av chironomid arter som har dukket opp i løpet av forrige 24-48 hr 7.

ntent "> Den relative overflod og taksonomiske sammensetningen av innsamlede SFPE reflekterer vannkvalitet, med tanke på at noen arter er svært forurensning tolerant, mens andre er ganske følsom 5 The SFPE metoden har mange fordeler fremfor tradisjonelle larve chironomid sampling teknikker inkludert:. (1) minimal eventuelt oppstår habitat forstyrrelse ved en samplingsområde, (2) prøver ikke fokusere på å samle levende organismer, men snarere den ikke-levende hud, slik at banen av samfunnet dynamikk blir ikke påvirket, (3) identifikasjon til genus, og ofte arter, er relativt lett gitt riktige nøkler og beskrivelser 3, (4) innsamling, bearbeiding og identifisere prøvene er effektiv og økonomisk i forhold til tradisjonelle metoder for prøvetaking 3,8,9, (5) akkumulerte exuviae representerer taxa som har sin opprinnelse fra et bredt spekter av mikrohabitater 10, (6) metoden er aktuelt i nesten alle akvatiske miljøer, inkludert bekker og elver, elvemunninger, lakes, dammer, rock bassenger, og våtmarker; og (7) SFPE kanskje være en mer følsom indikator på økosystemet helse siden de representerer enkeltpersoner som har fullført alle umodne stadier og hell dukket opp som voksne 11.

Den SFPE metoden er ikke en ny tilnærming for å samle informasjon om chironomid lokalsamfunn. Bruk av SFPE ble først foreslått av Thienemann 12 i begynnelsen av 1900-tallet. En rekke studier har brukt SFPE for taksonomiske undersøkelser (f.eks 13-15), biologisk mangfold og økologiske studier (f.eks 7,16-19), og biologiske vurderinger (f.eks 20-22). I tillegg har noen studier adressert ulike aspekter av sample design, utvalgsstørrelse og antall prøve hendelser som kreves for å oppnå ulike gjenkjennings nivåer av arter eller slekter (f.eks 8,9,23). Disse studiene tyder på at relativt høye prosenter av arter eller slekter kan oppdages med moderat effort eller utgifter i forbindelse med utvalgets behandling. For eksempel, Anderson og Ferrington 8 fastslått at basert på en 100-count subsample, var nødvendig 1/3 mindre tid til å plukke SFPE prøvene sammenlignet med dip-net prøver. En annen studie bestemt at 3-4 SFPE prøvene kan bli sortert og identifisert for hver dip-nettoutvalg og at SFPE prøvene var mer effektiv enn dip-net prøver på å oppdage arter som artsrikdom økt tre. For eksempel på områder med artsrikdom verdier av 15-16 arter, den gjennomsnittlige dip-net effektivitet var 45,7%, mens SFPE prøvene var 97,8% effektiv tre.

Viktigere er det at SFPE metoden er standardisert i den europeiske union 24 (kjent som chironomid pupal exuviae teknikk (CPET)) og Nord-Amerika 25 for økologisk vurdering, men metoden har ikke blitt beskrevet i detalj. En anvendelse av de SFPE metoden som er beskrevet av Ferrington, et al. <sopp> 3; Men det primære fokus for denne studien var å evaluere effektivitet, effekt, og økonomien i SFPE metoden. Formålet med dette arbeidet er å beskrive alle trinn i SFPE metoden i detalj, inkludert prøvetaking, laboratorie behandling, slide montering, og slekten identifikasjon. Målgruppen omfatter studenter, forskere og fagfolk interessert i å utvide tradisjonelle vannkvalitet overvåking innsats i sine studier.

Protocol

1. Utarbeidelse av felt Collection Supplies Bestem antall SFPE prøvene som skal samles basert på studiedesign og anskaffe en prøve jar (f.eks 60 ml) for hver prøve. Forbered to dato og lokalitets etiketter for hver prøve krukke. Plasser en på innsiden og påføre den andre på utsiden av glasset. Sikre at hver dato og lokalitet etiketten inneholder følgende informasjon: land, stat, fylke, by, vann kroppen, GPS-koordinater, dato og navn på person (er) å samle prøven. Saml…

Representative Results

Figur 1 illustrerer chironomid livssyklus; umodne stadier (egg, larve, puppe) vanligvis finner sted i eller nært forbundet med en vannmiljøet. Ved ferdigstillelse av larve livsfase, konstruerer larven en rørlignende husly og fester seg med silke sekreter til omkringliggende underlaget og pupation oppstår. Når det fremkallende voksen har modnet, frigjør puppe selv og svømmer til overflaten av vannet hvor den voksne kan komme ut av pupal exuviae. Den exuviae fylles med luft, og i kraft av et ytre v…

Discussion

De mest kritiske trinn for vellykket SFPE prøvetaking, plukking, sortering, slide montering, og identifisering er: (1) å finne områder med høy SFPE opphopning innenfor studieområdet under feltet samling (Figur 2A); (2) langsomt skanning innholdet i petriskål for deteksjon av alle SFPE under prøve plukking; (3) å utvikle den nødvendige fingerferdighet å dissekere cephalothorax fra magen under lysbilde montering (Figur 4A); og (4) å gjenkjenne viktige morfologiske tegnene chiro…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Midler til å komponere og publisere dette papiret ble gitt gjennom flere tilskudd og kontrakter til Chironomidae Research Group (LC Ferrington, Jr., PI) ved Institutt for entomologi ved University of Minnesota. Takk til Nathan Roberts for deling feltarbeid fotografiene som brukes som tall i videoen forbundet med dette manuskriptet.

Materials

Ethanol Fisher Scientific S25309B  70-95%
Plastic wash bottles Fisher Scientific 0340923B
Sample jar Fisher Scientific 0333510B Glass or plastic, 60-mL recommended
Testing sieve Advantech 120SS12F 125-micron mesh size
Larval tray BioQuip 5524 White
Stereo microscope
Glass shell vials Fisher Scientific 0333926B 1-dram size
Plastic dropper Thermo Scientific 1371110 30 to 35 drops/mL
Fine forceps BioQuip 4524 #5
Petri dish Carolina 741158 Glass or plastic
Multi-well plate Thermo Scientific 144530 Glass or plastic
Glass microslides Thermo Scientific 3010002 3 x 1 in.
Glass cover slips Thermo Scientific 12-519-21G Circular or square
Euparal mounting medium  BioQuip 6372B
Pigma pen BioQuip 1154F Black
Probe BioQuip 4751
Kimwipes Kimberly-Clark Professional™ 34120

References

  1. Southerland, M. T., Stribling, J. B., Davis, W. S., Simon, T. P. . Biological Assessment and Criteria: Tools for Water Resource Planning and Decision Making. , 81-96 (1995).
  2. Merritt, R. W., Cummins, K. W., Resh, V. H., Batzer, D. P., Merritt, R. W., Cummins, K. W., Berg, M. B. . An Introduction to the Aquatic Insects of North America. , 15-37 (2008).
  3. Ferrington, L. C., et al. . Sediment and Stream Water Quality in a Changing Environment: Trends and Explanation. , 181-190 (1991).
  4. Ferrington, L. C., Balian, E. V., Lévêque, C., Segers, H., Martens, K. . Freshwater Animal Diversity Assessment in Hydrobiology. , 447-455 (2008).
  5. Ferrington, L. C., Berg, M. B., Coffman, W. P., Merritt, R. W., Cummins, K. W., Berg, M. B. . An Introduction to the Aquatic Insects of North America. , 847-989 (2008).
  6. Armitage, P. D., Cranston, P. S., Pinder, L. C. V. . The Chironomidae: Biology and Ecology of Non-Biting Midges. 572, (1995).
  7. Coffman, W. P. Energy Flow in a Woodland Stream Ecosystem: II. The Taxonomic Composition of the Chironomidae as Determined by the Collection of Pupal Exuviae. Archiv fur Hydrobiologie. 71, 281-322 (1973).
  8. Anderson, A. M., Ferrington, L. C., Ekrem, T., Stur, E., Aagaard, K. . Proceedings of 18th International Symposium on Chironomidae on Fauna norvegica. 31, (2011).
  9. Bouchard, R. W., Ferrington, L. C. The Effects of Subsampling and Sampling Frequency on the Use of Surface-Floating Pupal Exuviae to Measure Chironomidae (Diptera) Communities in Wadeable Temperate Streams. Environmental Monitoring and Assessment. 181, 205-223 (2011).
  10. Wilson, R. S. Monitoring the Effect of Sewage Effluent on the Oxford Canal Using Chironomid Pupal Exuviae. Water and Environment Journal. 8, 171-182 (1994).
  11. Wentsel, R., McIntosh, A., McCafferty, W. P. Emergence of the Midge Chironomus tentans when Exposed to Heavy Metal Contaminated Sediment. Hydrobiologia. 57, 195-196 (1978).
  12. Thienemann, A. Das Sammeln von Puppenhäuten der Chironomiden. Eine Bitte um Mitarbeit. Archiv fur Hydrobiologie. 6, 213-214 (1910).
  13. Anderson, A. M., Kranzfelder, P., Egan, A. T., Ferrington, L. C. Survey of Neotropical Chironomidae (Diptera) on San Salvador Island, Bahamas. Florida Entomologist. 97, 304-308 (2014).
  14. Coffman, W. P., de la Rosa, C. Taxonomic Composition and Temporal Organization of Tropical and Temperate Assemblages of Lotic Chironomidae. Journal of the Kansas Entomological Society. 71, 388-406 (1998).
  15. Brundin, L. Transantarctic Relationships and their Significance, as Evidenced by Chironomid Midges. With a Monograph of the Subfamilies Podonominae and Aphroteniinae and the Austral Heptagyiae. Svenska Vetenskapsakademiens Handlingar. 11, 1-472 (1966).
  16. Anderson, A. M., Ferrington, L. C. Resistance and Resilience of Winter-Emerging Chironomidae (Diptera) to a Flood Event: Implications for Minnesota Trout Streams. Hydrobiologia. 707, 59-71 (2012).
  17. Ferrington, L. C., Anderson, T. . Contributions to the Systematics and Ecology of Aquatic Diptera-A Tribute to Ole A. Saether. , 99-105 (2007).
  18. Bouchard, R. W., Ferrington, L. C. Winter Growth, Development, and Emergence of Diamesa mendotae (Diptera: Chironomidae) in Minnesota Streams. Environmental Entomology. 38, 250-259 (2009).
  19. Hardwick, R. A., Cooper, P. D., Cranston, P. S., Humphrey, C. L., Dostine, P. L. Spatial and Temporal Distribution Pattens of Drifting Pupal Exuviae of Chironomidae (Diptera) in Streams of Tropical Northern Australia. . Freshwater Biology. 34, 569-578 (1995).
  20. Wilson, R. S., Bright, P. L. The Use of Chironomid Pupal Exuviae for Characterizing Streams. Freshwater Biology. 3, 283-302 (1973).
  21. Raunio, J., Paavola, R., Muotka, T. Effects of Emergence Phenology, Taxa Tolerances and Taxonomic Resolution on the Use of the Chironomid Pupal Exuvial Technique in River Biomonitoring. Freshwater Biology. 52, 165-176 (2007).
  22. Ruse, L. Lake Acidification Assessed using Chironomid Pupal Exuviae. Fundamental and Applied Limnology. 178, 267-286 (2011).
  23. Rufer, M. R., Ferrington, L. C. Sampling Frequency Required for Chironomid Community Resolution in Urban Lakes with Contrasting Trophic States. Boletim do Museu Municipal do Funchal (História Natural) Supplement. 13, 77-84 (2008).
  24. . . CEN. 15196, 1-13 (2006).
  25. Ferrington, L. C. Collection and Identification of Surface Floating Pupal Exuviae of Chironomidae for Use in Studies of Surface Water Quality. Standard Operating Procedure No. FW 130A. , (1987).
  26. Saither, O. A. Glossary of Chironomid Morphology Terminology (Chironomidae Diptera). Entomologica Scandinavica Supplement. 14, 51 (1980).
  27. Pinder, L. C. V., Reiss, F., Wiederholm, T. . Chironomidae of the Holarctic region. Keys and Diagnoses Part 2. Pupa. 28, 299-456 (1986).
  28. Wiederholm, T. . Chironomidae of the Holarctic region – Keys and Diagnoses, Part 2, Pupae. 28, (1989).
  29. Merritt, R. W., Webb, D. W. . An Introduction to the Aquatic Insects of North America. , (2008).
  30. Wilson, R. S., Ruse, L. P., Sutcliffe, D. W. . A Guide to the Identification of Genera of Chironomid Pupal Exuviae Occurring in Britain and Ireland (including Common Genera from Northern Europe) and Their Use in Monitoring Lotic and Lentic Fresh Waters. , (2005).
  31. Egan, A. T. . Communities in Freshwater Coastal Rock Pools of Lake Superior, with a Focus on Chironomidae (Diptera). , (2014).
  32. Raunio, J., Heino, J., Paasivirta, L. Non-Biting Midges in Biodiversity Conservation and Environmental Assessment: Findings from Boreal Freshwater Ecosystems. Ecological Indicators. 11, 1057-1064 (2011).
  33. Kavanaugh, R. G., Egan, A. T., Ferrington, L. C. Factors affecting decomposition rates of chironomid (Diptera) pupal exuviae. Chironomus: Newsletter on Chironomidae Research. 27, 16-24 (2014).
  34. Anderson, A. M., Stur, E., Ekrem, T. Molecular and Morphological Methods Reveal Cryptic Diversity and Three New Species of Nearctic Micropsectra (Diptera: Chironomidae). Freshwater Science. 32, 892-921 (2013).
  35. Ekrem, T., Willassen, E. Exploring Tanytarsini Relationships (Diptera: Chironomidae) using Mitochondrial COII Gene Sequences. Insect Systematics & Evolution. 35, 263-276 (2004).
  36. Ekrem, T., Willassen, E., Stur, E. A Comprehensive DNA Sequence Library is Essential for Identification with DNA Barcodes. Molecular Phylogenetics and Evolution. 43, 530-542 (2007).
check_url/52558?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Kranzfelder, P., Anderson, A. M., Egan, A. T., Mazack, J. E., Bouchard, Jr., R. W., Rufer, M. M., Ferrington, Jr., L. C. Use of Chironomidae (Diptera) Surface-Floating Pupal Exuviae as a Rapid Bioassessment Protocol for Water Bodies. J. Vis. Exp. (101), e52558, doi:10.3791/52558 (2015).

View Video