Summary

गोल्ड neuronal कोशिकाओं की ऑप्टिकल उत्तेजना nanorod की सहायता

Published: April 27, 2015
doi:

Summary

This protocol outlines how to use the transient heating associated with the optical absorption of gold nanorods to stimulate differentiation and intracellular calcium activity in neuronal cells. These results potentially open up new applications in neural prostheses and fundamental studies in neuroscience.

Abstract

Recent studies have demonstrated that nerves can be stimulated in a variety of ways by the transient heating associated with the absorption of infrared light by water in neuronal tissue. This technique holds great potential for replacing or complementing standard stimulation techniques, due to the potential for increased localization of the stimulus and minimization of mechanical contact with the tissue. However, optical approaches are limited by the inability of visible light to penetrate deep into tissues. Moreover, thermal modelling suggests that cumulative heating effects might be potentially hazardous when multiple stimulus sites or high laser repetition rates are used. The protocol outlined below describes an enhanced approach to the infrared stimulation of neuronal cells. The underlying mechanism is based on the transient heating associated with the optical absorption of gold nanorods, which can cause triggering of neuronal cell differentiation and increased levels of intracellular calcium activity. These results demonstrate that nanoparticle absorbers can enhance and/or replace the process of infrared neural stimulation based on water absorption, with potential for future applications in neural prostheses and cell therapies.

Introduction

हाल के अध्ययनों से पानी (तरंगदैर्ध्य> 1400 एनएम) द्वारा अवरक्त प्रकाश के अवशोषण के साथ जुड़े क्षणिक हीटिंग तंत्रिका ऊतक एक और cardiomyocytes 2 में intracellular कैल्शियम यात्रियों में कार्रवाई क्षमता उत्पन्न करने के लिए इस्तेमाल किया जा सकता है कि प्रदर्शन किया है। अवरक्त प्रकाश के उपयोग के कारण संभावित महीन स्थानिक संकल्प, तंत्रिका कृत्रिम अंग में अनुप्रयोगों के लिए महान ब्याज उठाया गया है, आनुवंशिक रूप से करने के लिए प्रत्यक्ष ऊतक के साथ संपर्क, उत्तेजना कलाकृतियों के न्यूनतम, और जरूरत को हटाने की कमी (उत्तेजना के लिए पहले कोशिकाओं को संशोधित ) optogenetics में आवश्यकता के रूप में एक। इन लाभों के सब होने के बावजूद, हाल ही में विकसित थर्मल मॉडल लक्ष्य ऊतक / कोशिकाएं कई प्रोत्साहन साइटों और / या उच्च पुनरावृत्ति दरों 3,4 उपयोग किया जाता है जब संचयी हीटिंग प्रभाव से प्रभावित किया जा सकता है कि सुझाव दिया।

इन चुनौतियों के जवाब में, शोधकर्ताओं ने बाह्य absor का उपयोग करने की क्षमता को मान्यता दी हैतंत्रिका उत्तेजना के लिए सदस्यों के ऊतकों में अधिक स्थानीय हीटिंग प्रभाव उत्पन्न करने के लिए। हुआंग एट अल। दूर से एक रेडियो आवृत्ति चुंबकीय क्षेत्र के साथ 5 HEK 293 कोशिकाओं में तापमान के प्रति संवेदनशील TRPV1 चैनलों को सक्रिय करने के superparamagnetic फेराइट नैनोकणों का उपयोग करके इस सिद्धांत का प्रदर्शन किया। इस तकनीक (चुंबकीय क्षेत्र ऊतक के साथ अपेक्षाकृत कमजोर बातचीत) गहरी पैठ के लिए अनुमति दे सकता है, प्रतिक्रियाओं का ही नहीं बल्कि बायोनिक उपकरणों 5 में आवश्यक मिलीसेकंड durations के तुलना में, सेकंड की अवधि में दर्ज किए गए। इन विट्रो में काला सूक्ष्म कणों के साथ चूहे cortical न्यूरॉन्स की इसी तरह, फराह एट अल। प्रदर्शन किया बिजली की उत्तेजना। वे संभावित तेजी से पुनरावृत्ति दरों 6 के लिए अनुमति देता है, μJ की रेंज में μs और ऊर्जा के सैकड़ों के आदेश पर नब्ज durations का उपयोग कर उत्तेजना में सेल-स्तर परिशुद्धता दिखाया।

बाह्य अवशोषक का उपयोग भी प्रेरित करने के लिए लागू किया गया हैइन विट्रो में morphological परिवर्तन। Ciofani एट अल। अल्ट्रासाउंड 7 से उत्साहित पीजोइलेक्ट्रिक बोरान नाइट्राइड नैनोट्यूब का उपयोग कर neuronal सेल परिणाम में एक ~ 40% वृद्धि देखी गई। इसी तरह, PC12 कोशिकाओं में endocytosed लोहे के आक्साइड नैनोकणों के कारण लोहे के आक्साइड 8 के साथ सेल आसंजन अणुओं की सक्रियता के लिए, एक खुराक पर निर्भर तरीके से neurite भेदभाव को बढ़ाने के लिए सूचित किया गया है।

हाल ही में, तंत्रिका उत्तेजना की सहायता के लिए बाह्य अवशोषक में ब्याज भी सोने के नैनोकणों के उपयोग (एयू एनपीएस) पर ध्यान केंद्रित किया है। एयू एनपीएस कुशलतापूर्वक plasmonic चरम पर लेजर प्रकाश को अवशोषित करने के लिए और गर्मी 9 के रूप में आसपास के वातावरण में फैलने की क्षमता है। – 10 उपलब्ध कण आकार के सभी के बीच, सोने nanorods की ऑप्टिकल अवशोषण (एयू एनआरएस) सुविधा (निर, 750-1,400 एनएम के बीच तरंगदैर्ध्य अवरक्त के पास) जैविक ऊतकों की चिकित्सीय खिड़की से मेल खाता है। इसके अलावा, शेष भाग मेंतंत्रिका उत्तेजना की, ext एयू एनआरएस के उपयोग अपेक्षाकृत अनुकूल biocompatibility और सतह functionalization विकल्पों में 11 की एक विस्तृत श्रृंखला उपलब्ध कराता है। हाल के अध्ययनों से भेदभाव पर एक उत्तेजक प्रभाव NG108-15 neuronal कोशिकाओं 12 में एयू एनआरएस के सतत लेजर जोखिम के बाद प्रेरित किया जा सकता है कि पता चला है। इसी तरह, intracellular कैल्शियम यात्रियों चर आवृत्तियों और नाड़ी के साथ संग्राहक लेजर विकिरण 13 लंबाई के बाद एयू एनआरएस साथ सुसंस्कृत neuronal कोशिकाओं में दर्ज किए गए। कोशिका झिल्ली विध्रुवण भी सर्पिल नाड़ीग्रन्थि न्यूरॉन्स 14 के प्राथमिक संस्कृतियों में एयू एनआरएस के NIR से लेजर रोशनी के बाद दर्ज की गई थी। विकिरणित एयू एनआरएस साथ विवो आवेदन में पहली अभी हाल ही में प्रदर्शित किया गया है। EOM और सहकर्मियों उनके plasmonic चरम पर एयू एनआरएस अवगत कराया और यौगिक तंत्रिका कार्रवाई क्षमता (CNAPs) के आयाम में छह गुना वृद्धि हुई है और चूहे sciatic नसों में उत्तेजना दहलीज में तीन गुना कमी दर्ज की गई। एनhanced प्रतिक्रिया एन.आर. plasmonic शिखर 15 की उत्तेजना से उत्पन्न स्थानीय हीटिंग प्रभाव के लिए जिम्मेदार ठहराया गया था।

वर्तमान में कागज, एयू एनआरएस साथ सुसंस्कृत NG108-15 neuronal कोशिकाओं में लेजर उत्तेजना के प्रभाव की जांच के लिए प्रोटोकॉल निर्दिष्ट कर रहे हैं। इन विधियों मानक जैविक तकनीक और सामग्री का उपयोग इन विट्रो में सेल आबादी चमकाना करने के लिए एक सरल, अभी तक शक्तिशाली, जिस तरह से प्रदान करते हैं। प्रोटोकॉल सुरक्षित संचालन और repeatable संरेखण की अनुमति देता है कि एक फाइबर युग्मित लेजर डायोड (एलडी) पर आधारित है। एयू एन.आर. नमूना तैयार करने और लेजर विकिरण के तरीकों आगे विशिष्ट संश्लेषण और संस्कृति प्रोटोकॉल क्रमशः, जाना जाता है प्रदान करने, अलग कण आकार और neuronal सेल संस्कृतियों के लिए बढ़ाया जा सकता है।

Protocol

1. एयू एनआरएस तैयारी नोट: एयू एनआरएस व्यंजनों 16 के एक नंबर के द्वारा संश्लेषित, या वाणिज्यिक विक्रेताओं से खरीदा जा सकता है। यूवी विज़ स्पेक्ट्रोस्कोपी के माध्यम से, 0.5-2 एनएम के एक संकल…

Representative Results

यहाँ वर्णित प्रोटोकॉल 1, 2, और 3 का उपयोग करके, भेदभाव पर एक उत्तेजक प्रभाव एयू एनपीएस के साथ सुसंस्कृत NG108-15 neuronal कोशिकाओं में मनाया गया लेजर के बाद (एयू एनआरएस, पाली (styrenesulfonate) एयू एनआरएस और सिलिका लेपित एयू एनआर…

Discussion

इस प्रस्तुति में उल्लिखित प्रोटोकॉल संस्कृति के लिए, अंतर और ऑप्टिकली बाह्य अवशोषक का उपयोग कर neuronal कोशिकाओं को उत्तेजित वर्णन कैसे। एनआर विशेषताओं (जैसे आयाम, आकार, plasmon अनुनाद तरंगदैर्ध्य और सतह के…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

लेखकों आंशिक रूप से शूटिंग के दौरान उसकी मदद के लिए शेफील्ड और सुश्री Jaimee मायने विश्वविद्यालय में इस शोध की मेजबानी होने के लिए यात्रा के वित्त पोषण के समर्थन के लिए NanoVentures ऑस्ट्रेलिया और प्रो जॉन घास की गांजी स्वीकार करना चाहते हैं।

Materials

Au NR Sigma Aldrich 716812
NG108-15 Sigma Aldrich 8811230
DMEM Sigma Aldrich D6546
FCS Life Technologies 10100147
L-glutamine Sigma Aldrich G7513
Penicillin/streptomycin Life Technologies 15140122
Amphotericin B Life Technologies 15290018
Formaldehyde Sigma Aldrich F8775
Triton X-100 BDH T8532
BSA Sigma Aldrich A2058
Anti-βIII-tubulin Promega G7121
TRITC-conjugated anti-mouse IgG antibody Sigma Aldrich T5393
DAPI Invitrogen D1306
Fluo-4 AM Invitrogen F14201
DMSO Sigma Aldrich 472301
Pluronic F-127 Invitrogen P6867
Equipment name Company Catalogue Number
UV-Vis spectrometer Varian Medical Systems Inc. Cary 50 Bio
Mini centrifuge Eppendorf Mini Spin
Sonic bath Unisonics Australia FPX 10D
Cell culture incubator Kendro Hera Cell 150
Cell culture centrifuge Hettich Rotofix 32A
Laser diode Optotech 780 nm single mode fibre – coupled LD
Optical fiber Thorlabs 780 HP
Power meter Coherent Laser Check
ImageJ http://rsb.info.nih.gov/ij/index.html
Epifluorescent microscope Axon Instruments ImageX-press 5000A
μ-slide well Ibidi 80826
Inverted confocal microscope Carl Zeiss Microscopy Ltd. LSM 510 meta-confocal microscope
Oscilloscope Tektronix TDS210

References

  1. Richter, C. P., Matic, A. I., Wells, J. D., Jansen, E. D., Walsh, J. T. Neural stimulation with optical radiation. Laser. Photonics Rev. 5 (1), 68-80 (2011).
  2. Dittami, G. M., Rajguru, S. M., Lasher, R. A., Hitchcock, R. W., Rabbitt, R. D. Intracellular calcium transients evoked by pulsed infrared radiation in neonatal cardiomyocytes. J. Physiol. 589 (6), 1295-1306 (2011).
  3. Thompson, A. C., Wade, S. A., Brown, W. G. A., Stoddart, P. R. Modeling of light absorption in tissue during infrared neural stimulation. J. Biomed. Opt. 17 (7), 075002-075002 (2012).
  4. Thompson, A. C., Wade, S. A., Cadusch, P. J., Brown, W. G., Stoddart, P. R. Modeling of the temporal effects of heating during infrared neural stimulation. J. Biomed. Opt. 18 (3), 035004 (2013).
  5. Huang, H., Delikanli, S., Zeng, H., Ferkey, D. M., Pralle, A. Remote control of ion channels and neurons through magnetic-field heating of nanoparticles. Nat. Nanotechnol. 5 (8), 602-606 (2010).
  6. Farah, N., et al. Holographically patterned activation using photo-absorber induced neural-thermal stimulation. J. Neural. Eng. 10 (5), (2013).
  7. Ciofani, G., et al. Enhancement of neurite outgrowth in neuronal-like cells following boron nitride nanotube-mediated stimulation. ACS Nano. 4 (10), 6267-6277 (2010).
  8. Kim, J. A., et al. Enhancement of neurite outgrowth in PC12 cells by iron oxide nanoparticles. Biomaterials. 32 (11), 2871-2877 (2011).
  9. Myroshnychenko, V., et al. Modelling the optical response of gold nanoparticles. Chem. Soc. Rev. 37 (9), 1792-1805 (2008).
  10. Choi, W. I., Sahu, A., Kim, Y. H., Tae, G. Photothermal cancer therapy and imaging based on gold nanorods. Ann. Biomed. Eng. 40 (2), 534-546 (2011).
  11. Zhan, Q., Qian, J., Li, X., He, S. A study of mesoporous silica-encapsulated gold nanorods as enhanced light scattering probes for cancer cell imaging. Nanotechnology. 21 (5), 055704 (2010).
  12. Paviolo, C., et al. Laser exposure of gold nanorods can increase neuronal cell outgrowth. Biotechnol. Bioeng. 110 (8), 2277-2291 (2013).
  13. Paviolo, C., Haycock, J. W., Cadusch, P. J., McArthur, S. L., Stoddart, P. R. Laser exposure of gold nanorods can induce intracellular calcium transients. J. Biophotonics. 7 (10), 761-765 (2014).
  14. Yong, J., et al. Gold-nanorod-assisted near-infrared stimulation of primary auditory neurons. Adv. Healthcare Mater. , (2014).
  15. Eom, K., et al. Enhanced infrared neural stimulation using localized surface plasmon resonance of gold nanorods. Small. , (2014).
  16. Juste, J., Pastoriza-Santos, I., Liz-Marzán, L. M., Mulvaney, P. Gold nanorods: Synthesis, characterization and applications. Coordination Chemistry Reviews. (17-18), 1870-1901 (2005).
  17. Shang, J., Gao, X. Nanoparticle counting: towards accurate determination of the molar concentration. Chem. Soc. Rev. 43 (21), 7267-7278 (2014).
  18. Sharma, V., Park, K., Srinivasarao, M. Shape separation of gold nanorods using centrifugation. Proc. Natl. Acad. Sci. 106 (13), 4981-4985 (2009).
  19. Kaewkhaw, R., Scutt, A. M., Haycock, J. W. Anatomical site influences the differentiation of adipose-derived stem cells for schwann-cell phenotype and function. Glia. 59 (5), 734-749 (2011).
  20. Brown, W. G. A., Needham, K., Nayagam, B. A., Stoddart, P. R. Whole cell patch clamp for investigating the mechanisms of infrared neural stimulation. JoVE. (77), (2013).
  21. Cadusch, P. J., Hlaing, M. M., Wade, S. A., McArthur, S. L., Stoddart, P. R. Improved methods for fluorescence background subtraction from Raman spectra. J. Raman Spectrosc. 44 (11), 1587-1595 (2013).
  22. Daud, M. F. B., Pawar, K. C., Claeyssens, F., Ryan, A. J., Haycock, J. W. An aligned 3D neuronal-glial co-culture model for peripheral nerve studies. Biomaterials. 33 (25), 5901-5913 (2012).
  23. Jung, S., et al. Intracellular gold nanoparticles increase neuronal excitability and aggravate seizure activity in the mouse brain. PLoS ONE. 9 (3), e91360 (2014).
  24. Salinas, K., Kereselidze, Z., DeLuna, F., Peralta, X., Santamaria, F. Transient extracellular application of gold nanostars increases hippocampal neuronal activity. J. Nanobiotechnology. 12 (1), 31 (2014).
  25. Ebbesen, C. L., Bruus, H. Analysis of laser-induced heating in optical neuronal guidance. J. Neurosci. Meth. 209 (1), 168-177 (2012).
  26. Iwanaga, S., et al. Location-dependent photogeneration of calcium waves in HeLa cells. Cell Biochem. Biophys. 45 (2), 167-176 (2006).
  27. Huang, X., Jain, P. K., El-Sayed, I. H., El-Sayed, M. A. Determination of the minimum temperature required for selective photothermal destruction of cancer cells with the use of immunotargeted gold nanoparticles. Photochem. Photobiol. 82 (2), 412-417 (2006).
  28. Connor, E. E., Mwamuka, J., Gole, A., Murphy, C. J., Wyatt, M. D. Gold nanoparticles are taken up by human cells but do not cause acute cytotoxicity. Small. 1 (3), 325-327 (2005).
  29. Isomaa, B., Reuter, J., Djupsund, B. M. The subacute and chronic toxicity of cetyltrimethylammonium bromide (CTAB), a cationic surfactant, in the rat. Arch. Toxicol. 35 (2), 91-96 (1976).
  30. Juste, J., Pastoriza-Santos, I., Liz-Marzán, L., Mulvaney, P. Gold nanorods: synthesis, characterization and applications. Coord. Chem. Rev. 249 (17-18), 1870-1901 (2005).
  31. Dreaden, E. C., Alkilany, A. M., Huang, X., Murphy, C. J., El-Sayed, M. A. The golden age: gold nanoparticles for biomedicine. Chem. Soc. Rev. 41 (7), 2740-2779 (2012).
  32. Huang, X., Jain, P. K., El-Sayed, I. H., El-Sayed, M. A. Plasmonic photothermal therapy (PPTT) using gold nanoparticles. Lasers Med. Sci. 23 (3), 217-228 (2008).
  33. Albert, E. S., et al. TRPV4 channels mediate the infrared laser-evoked response in sensory neurons. J. Neurophysiol. 107 (12), 3227-3234 (2012).
  34. Garcia-Elias, A., et al. Phosphatidylinositol-4,5-biphosphate-dependent rearrangement of TRPV4 cytosolic tails enables channel activation by physiological stimuli. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 110 (23), 9553-9558 (2013).
  35. Shapiro, M. G., Homma, K., Villarreal, S., Richter, C. -. P., Bezanilla, F. Infrared light excites cells by changing their electrical capacitance. Nat. Commun. 3 (736), (2012).
  36. Roggan, A., Friebel, M., Dörschel, K., Hahn, A., Müller, G. Optical properties of circulating human blood in the wavelength range 400-2500 nm. J. Biomed. Opt. 4 (1), 36-46 (1999).
  37. Byrnes, K. R., et al. Light promotes regeneration and functional recovery and alters the immune response after spinal cord injury. Lasers Surg. Med. 36 (3), 171-185 (2005).
  38. Wu, X., et al. 810 nm wavelength light: an effective therapy for transected or contused rat spinal cord. Lasers Surg. Med. 41 (1), 36-41 (2009).
  39. Grossman, N., Schneid, N., Reuveni, H., Halevy, S., Lubart, R. 780 nm low power diode laser irradiation stimulates proliferation of keratinocyte cultures: involvement of reactive oxygen species. Lasers Surg. Med. 22 (4), 212-218 (1998).
  40. Wong-Riley, M. T. T., et al. Photobiomodulation directly benefits primary neurons functionally inactivated by toxins – Role of cytochrome c oxidase. J. Biol. Chem. 280 (6), 4761-4771 (2005).
  41. Beauvoit, B., Kitai, T., Chance, B. Contribution of the mitochondrial compartment to the optical properties pf the rat liver: a theoretical and practical approach. Biophys. J. 67 (6), 2501-2510 (1994).
check_url/52566?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Paviolo, C., McArthur, S. L., Stoddart, P. R. Gold Nanorod-assisted Optical Stimulation of Neuronal Cells. J. Vis. Exp. (98), e52566, doi:10.3791/52566 (2015).

View Video